学位论文 > 优秀研究生学位论文题录展示
赤丸芜菁BrCHS表达特性及启动子特性分析
作 者: 张荔
导 师: 李玉花
学 校: 东北林业大学
专 业: 发育生物学
关键词: CHS 启动子 UVA 功能分析 转基因烟草
分类号: S631.3
类 型: 硕士论文
年 份: 2011年
下 载: 20次
引 用: 0次
阅 读: 论文下载
内容摘要
查尔酮合成酶(CHS)是高等植物体内花色素合成途径中的第一个关键酶,它催化的反应是类黄酮合成途径中的重要步骤,CHS基因表达量的增加或减少都可能导致花色产生变异。目前的研究发现,UV-A可以特异诱导花青素合成依光型津田芜菁体内CHS基因的表达。为了研究在非依光型赤丸芜菁中CHS的光诱导表达特性和启动子的相关活性,本论文以非依光型花青素合成的赤丸芜菁为试验材料,克隆了BrCHS基因及启动子片段,对BrCHS拷贝数和表达特性进行了分析,并对获得的基因进行生物信息学分析,利用实时定量PCR技术分析非依光型花青素合成的赤丸芜菁中CHS基因在不同组织中和在UV-A光诱导下的表达模式,并转化烟草叶片对启动子进行分析,检测报告基因的表达活性。研究的主要结果如下:1赤丸芜菁CHS的克隆及拷贝数从赤丸芜菁中克隆了BrCHS的基因片段,将获得的1263bp BrCHS基因序列片段与GenBank中同源序列进行BLAST比对,结果表明该片段与GenBank中Brassica napus chalcone synthase (Chs) gene, exonl,2 and partia(登录号为GQ983005.1)的部分序列具有98%的同源性,其中含有两个外显子和一个内含子。Southern杂交结果表明,BrCHS基因在赤丸芜菁基因组中至少有四个拷贝,属于多基因家族。2.赤丸芜菁CHS的表达特性在检测的不同组织中,非依光型赤丸芜菁CHS在下根皮的表达最多,上根皮次之,叶子中最少。赤丸芜菁CHS在UV-A诱导下幼苗的表达特性说明,UV-A能够诱导BrCHS的表达,且在幼苗下胚轴的中间部位受诱导表达最明显,推测在该部位存在光特异诱导花青素合成的调控途径,说明存在着光诱导的组织特异性表达。3赤丸芜菁CHS基因5,非翻译区具有启动活性克隆了赤丸芜菁BrCHS的5’非翻译区,结果表明该片段与GenBank中Brassica rapa subsp. pekinensis clone KBrB008I08 (登录号为AC189212)的全长序列具有99%的同源性。生物信息学分析结果显示,该序列除了具有一般真核生物启动子结构所普遍具有的保守序列如CAATbox和TATAbox等保守序列外,找到了很多与光诱导相关的保守序列,如:ACE、ATCT-motif、BoxⅡ、G-Box、GATA-motif、GT1-motif、TCT-motif、Spl和chs-Unit 1 ml。通过农杆菌介导的遗传转化技术将BrCHS启动子重组体转化烟草,在稳定遗传的转基因烟草中定性分析启动子的活性,通过GUS组织化学染色法对CHS基因的表达情况进行了检测,结果表明克隆的BrCHS基因5’非翻译区序列具有启动子活性。
|
全文目录
摘要 4-5 Abstract 5-9 1 绪论 9-17 1.1 课题背景 9 1.2 花青素合成相关基因的研究及应用 9-10 1.2.1 花青素的化学结构和种类 9-10 1.2.2 花色素的生物合成途径及相关基因 10 1.3 植物启动子的研究进展 10-15 1.3.1 引言 10-11 1.3.2 植物启动子的多样性 11-12 1.3.3 植物启动子的基本结构 12-13 1.3.4 启动子的克隆方法 13-14 1.3.5 启动子的研究方法 14-15 1.4 植物CHS基因及其启动子的研究进展 15 1.5 实时荧光定量PCR技术 15-16 1.6 本研究的目的与意义 16-17 2 赤丸芜菁CHS基因的克隆及表达分析 17-34 2.1 引言 17 2.2 试验材料与试剂 17-18 2.2.1 试验材料 17 2.2.2 试验试剂 17-18 2.3 试验方法 18-26 2.3.1 赤丸芜菁总DNA的提取(CTAB法) 18 2.3.2 BrCHS基因片段的扩增 18-21 2.3.3 BrCHS基因保守序列引物设计 21 2.3.4 BrCHS基因的Southern杂交 21-24 2.3.5 BrCHS基因的表达特性分析 24-26 2.4 结果与分析 26-32 2.4.1 赤丸芜菁总DNA质量检测 26-27 2.4.2 PCR扩增BrCHS基因片段 27-28 2.4.3 赤丸芜菁BrCHS基因片段序列分析 28-29 2.4.4 赤丸芜菁BrCHS基因的Southern杂交分析 29-30 2.4.5 赤丸芜菁中CHS基因的表达特性分析 30-32 2.5 本章小结 32-34 2.5.1 讨论 32-33 2.5.2 小结 33-34 3 BRCHS基因启动子的克隆及活性分析 34-53 3.1 引言 34 3.2 材料及试剂 34-35 3.2.1 材料 34 3.2.2 试剂 34-35 3.3 试验方法 35-41 3.3.1 引物设计 35 3.3.2 PCR反应扩增含CHS启动子的序列 35-37 3.3.3 BrCHS基因启动子的表达载体构建 37-38 3.3.4 BrCHS启动子转化农杆菌 38-39 3.3.5 农杆菌介导的BrCHS启动子区的烟草遗传转化 39-40 3.3.6 转基因烟草的鉴定 40-41 3.3.7 转基因烟草的Gus组织化学染色分析 41 3.4 结果与分析 41-52 3.4.1 赤丸芜菁总DNA质量检测 41-42 3.4.2 PCR扩增BrCHS启动子片段 42 3.4.3 赤丸芜菁BrCHS启动子片段序列分析 42-44 3.4.4 赤丸芜菁CHS启动子区的序列分析 44-48 3.4.5 BrCHS基因启动子表达载体构建 48-49 3.4.6 BrCHS启动子转化农杆菌EHA105 49 3.4.7 转基因烟草植株的获得 49-50 3.4.8 烟草转基因株系的PCR检测 50 3.4.9 转基因烟草的Gus组织化学染色检测 50-51 3.4.10 讨论 51-52 3.5 小结 52-53 结论 53-54 参考文献 54-58 攻读期间发表的学术论文 58-59 致谢 59-60
|
相似论文
- 水稻茎叶特异表达基因启动子的筛选及分析,S511
- 猪BMP7基因启动子多态性及其与繁殖性状关联性分析,S828
- 超表达OsSsr1基因烟草的获得及其抗逆性分析,S572
- 产酶溶杆菌OH11菌株胞外酶调控相关基因ctp的克隆及功能分析,TQ925
- 水稻纹枯病菌三磷酸甘油醛脱氢酶基因的克隆及其遗传转化体系的构建,S435.111.42
- 荧光假单胞菌7-14生物膜突变株的筛选及tatC基因的克隆与功能初析,S432.4
- Pib结构基因在不同启动子驱动下的稻瘟病抗性,S435.111.41
- 水稻抗稻瘟病菌质膜蛋白的蛋白质组学分析,S511
- 短柄草磷转运蛋白基因的克隆与功能分析,S543.9
- 大豆GmFtsH基因的遗传转化及功能分析,S565.1
- 转小麦类蛋白激酶基因TA50-10烟草及其抗病性分析,S572
- 水稻Pib启动子中乙烯和茉莉酸响应元件的转基因分析,S511
- J亚型禽白血病病毒抗体检测方法的建立及LTR体外启动活性分析,S858.31
- 棉铃虫细胞色素P450基因CYP9A17v2启动子活性分析,S435.622
- 荧光假单胞菌7-14鞭毛蛋白合成基因flhA的克隆及功能分析,S476.1
- Pib基因启动子3’端缺失体的暗诱导特性分析,S511
- 藤稔葡萄花发育相关基因的克隆及表达分析,S663.1
- 不结球白菜抗坏血酸合成相关基因的克隆与表达及BcPMI2的功能分析,S634.3
- 苹果Flowering locus T (FT)基因及其启动子的克隆及表达分析,S661.1
- 镉胁迫诱导拟南芥MLH1基因启动子甲基化变化的分子诊断,X173
- 普通小麦中一类富含脯氨酸蛋白基因的克隆与功能分析,S512.1
中图分类: > 农业科学 > 园艺 > 蔬菜园艺 > 根菜类(直根类) > 芜菁
© 2012 www.xueweilunwen.com
|