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猪ATGL基因和FATP1基因5\'调控区的多态性及其与胴体和肉质性状的相关分析

作 者: 华绪川
导 师: 张金枝;徐宁迎
学 校: 浙江大学
专 业: 动物遗传育种与繁殖
关键词: ATGL基因 FATP1基因 脂肪性状 序列分析 PCR-RFLP 四引物ARMS-PCR 
分类号: S828
类 型: 硕士论文
年 份: 2010年
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内容摘要


脂肪性状是影响畜禽肉质的重要因素。脂肪甘油三酯水解酶(Adipose triglyceride lipase, ATGL)是脂肪动员过程中脂肪水解的限速酶,而脂肪酸转运蛋白1 (Fatty acid transport protein 1, FATP1)具有促进脂肪细胞吸收利用长链和极长链脂肪酸的功能,在脂肪沉积过程中发挥着重要的作用。本研究以ATGL基因FATP1基因为候选基因,在金华、岔路黑猪、皮特兰、杜洛克和大约克五个纯种猪群以及金皮F2代(金华×皮特兰)资源群体中对猪ATGL基因和FATP1基因5’调控区进行单核苷酸多态性(SNP)扫描并分析其与金皮F2代猪胴体和肉质性状的关系,主要结果如下:在ATGL基因的5’调控区发现存在A-253C→T以及A-845G→C和A-854T→C的连锁突变。生物信息学分析结果显示该序列可能存在启动子区域,并且A-845G→C突变导致部分潜在转录因子结合位点的产生或消失,提示这些SNP座位可能会影响ATGL基因的转录和表达。利用错配PCR-RFLP方法检测A-253C→T座位在不同猪种中的分布情况,结果发现A-253C→T座位在金华猪、岔路黑猪、皮特兰、杜洛克和金皮F2代猪中均存在多态性,且等位基因C的频率较高,为优势等位基因;但在大约克猪群中只有CC一种基因型。最小二乘分析显示,该座位CC基因型个体的胸腰结合处背膘厚和腰荐结合处背膘厚显著高于TT基因型个体,分别增加了11.41%和14.68%;而CC基因型个体的后腿脂肪重也显著高于CT和TT基因型个体。利用PCR-RFLP的方法对A-845G→C座位进行检测,结果发现,该座位在金华猪、岔路黑猪、杜洛克、大约克夏和金皮F2代猪群中均存在多态性,其中地方猪种中C等位基因的频率明显低于国外猪种,并且在金华猪群中没有检测到CC基因型,而在皮特兰猪群中只有GC一种基因型。相关分析显示,该座位GG基因型个体与GC基因型个体的肩部背膘厚、6-7肋背膘厚、平均背膘厚差异显著,分别增加了7.25%、9.06%、7.67%;在胸腰结合处背膘厚上,GG基因型个体比CC基因型个体增加了12.63%;在后腿脂肪重上,GG基因型个体比CC和GC基因型个体分别增加了11.27%和6.31%;而在眼肌面积上,GC基因型个体比GG基因型个体增加了10.29%。在FATP1基因的5’调控区发现主要存在F-586T→C、F-1026G→A和F-1240C→A三个突变座位。生物信息学分析结果显示,目的序列含有启动子、CpG岛、TATA box等调控基因转录和翻译的区域,并且F-1026G→A和F-1240C→A突变都会引起该序列转录因子结合位点的变化。利用PCR-RFLP的方法对F-586T→C座位进行检测,结果发现该座位只在皮特兰、杜洛克和金皮F2代猪群中存在多态性,且表现为较高频率的T等位基因;而在金华猪、岔路黑猪和大约克夏猪群中只有TT一种基因型。相关分析显示,该座位TT基因型个体的肩背膘厚、6-7肋背膘厚、胸腰结合处背膘厚、平均背膘厚和板油重显著高于CC基因型个体,分别增加了10.73%、11.92%、13.06%、9.43%和24.31%。利用PCR-RFLP的方法对F-1026G→A座位进行检测,结果发现该座位在金华猪、岔路黑猪、杜洛克、大约克夏和金皮F2代猪群中均存在多态性,但在杜洛克和大约克夏猪群中不存在AA基因型;而在皮特兰猪群中只有AG一种基因型。相关分析显示,该座位对猪6-7肋背膘厚的影响达到极显著水平(P=0.0075),GG基因型个体的6-7肋背膘厚比AA和AG基因型个体分别增加了13.86%和13.78%。利用四引物ARMS-PCR的方法检测F-1240C→A座位在不同猪种中的分布,结果发现该座位只在金华猪和金皮F2代猪群中存在多态性,并表现为较高频率的C等位基因;而在其它猪群中只有CC一种基因型,说明该SNP座位是金华猪所特有的。相关分析结果显示,该座位对猪肌内脂肪含量的影响达到了极显著水平(P=0.005),其中AA和AC基因型个体的肌内脂肪含量比CC基因型个体分别增加了42.81%和28.76%,而AA和AC基因型个体之间的差异不显著。以上研究结果表明,猪ATGL基因和FATP1基因5’调控区的多态座位对脂肪性状具有一定的影响,提示这两个基因可能是猪脂肪性状合适的候选基因。

全文目录


摘要  6-8
ABSTRACT  8-10
缩略词表  10-15
第一章 文献综述  15-35
  1 动物脂肪代谢及其调控机理的研究进展  15-18
    1.1 脂肪组织概述  15-16
    1.2 脂肪的动员和分解调节  16-17
    1.3 脂肪酸的转运及其调控  17-18
  2 脂肪甘油三酯水解酶(ATGL)基因研究进展  18-23
    2.1 ATGL的结构特征  19-20
      2.1.1 ATGL的基因结构  19
      2.1.2 ATGL的蛋白质结构  19-20
    2.2 ATGL的组织表达变化  20
    2.3 ATGL的生物学功能  20-21
    2.4 ATGL的作用机制及其调控  21-22
    2.5 小结和展望  22-23
  3 脂肪酸转运蛋白1(FATP1)基因研究进展  23-26
    3.1 FATP家族的成员和分布  23
    3.2 FATP1的分子结构  23-24
    3.3 FATP1的生物学功能  24-25
    3.4 FATP1的作用机制及其表达调节  25-26
  4 单核苷酸多态性  26-27
  5 PCR-RFLP技术  27-28
    5.1 PCR-RFLP标记分类  27
    5.2 PCR-RFLP标记的特点  27
    5.3 错配PCR-RFLP技术  27-28
  6 四引物ARMS-PCR技术  28-30
    6.1 四引物ARMS-PCR的技术原理  28-29
    6.2 引物设计原则和方法  29-30
    6.3 分型方法  30
    6.4 应用前景  30
  7 生物信息学及其在动物遗传育种中的应用  30-33
    7.1 生物信息学的产生和发展  31
    7.2 生物信息学的主要研究内容  31-32
      7.2.1 序列比对  31-32
      7.2.2 序列分析  32
      7.2.3 蛋白质结构预测  32
    7.3 前景与展望  32-33
  8 本研究所涉及种的介绍  33-34
    8.1 金华猪  33
    8.2 岔路黑猪  33
    8.3 皮特兰猪  33-34
    8.4 杜洛克猪  34
    8.5 大约克猪  34
  9 本研究的目的和意义  34-35
第二章 材料与方法  35-44
  1 实验材料  35-37
    1.1 实验动物  35
    1.2 试验试剂  35-36
      1.2.1 基因组DNA提取试剂  35
      1.2.2 PCR试剂  35
      1.2.3 酶切和电泳试剂  35-36
    1.3 溶液的配制  36-37
    1.4 琼脂糖凝胶的制备  37
    1.5 仪器设备  37
  2 试验方法  37-43
    2.1 基因组DNA的提取与检测  37-38
      2.1.1 基因组DNA的抽提  37-38
      2.1.2 基因组DNA的检测  38
    2.2 测序引物设计和PCR反应体系  38-40
      2.2.1 测序引物设计  38-39
      2.2.2 引物的溶解、稀释  39
      2.2.3 PCR反应体系  39-40
      2.2.4 琼脂糖电泳检测分析  40
    2.3 生物信息学分析  40
      2.3.1 多态座位的寻找  40
      2.3.2 序列分析  40
    2.4 PCR-RFLP和四引物ARMS-PCR反应条件  40-43
      2.4.1 基因分型引物设计  40-41
      2.4.2 PCR反应体系  41-42
      2.4.3 限制性内切酶的设计  42
      2.4.4 酶切反应条件  42-43
  3 统计分析  43-44
    3.1 基因型频率和基因频率计算  43
    3.2 Hardy-Weinberg平衡检验  43
    3.3 基因效应的统计分析  43-44
第三章 结果与分析  44-66
  1 基因组DNA提取结果  44
  2 候选基因目的序列  44-46
    2.1 ATGL基因5'调控区目的序列  44-45
    2.2 FATP1基因5'调控区目的序列  45-46
  3 测序引物PCR扩增结果  46-47
  4 生物信息学分析结果  47-55
    4.1 多态座位的寻找  47-49
      4.1.1 ATGL基因5'调控区的SNP座位  47-48
      4.1.2 FATP1基因5'调控区的SNP座位  48-49
    4.2 序列分析  49-50
      4.2.1 ATGL基因5'调控区序列分析  49
      4.2.2 FATP1基因5'调控区序列分析  49-50
    4.3 多态座位的转录因子结合位点预测  50-55
      4.3.1 ATGL基因SNP座位转录因子结合位点预测  50-52
      4.3.2 FATP1基因SNP座位转录因子结合位点预测  52-55
  5 多态性座位检测结果  55-57
    5.1 ATGL基因的多态座位检测结果  55-56
      5.1.1 A-253C→T多态座位检测结果  55
      5.1.2 A-845G→C多态座位检测结果  55-56
    5.2 FATP1基因的多态座位检测结果  56-57
      5.2.1 F-586T→C多态座位检测结果  56
      5.2.2 F-1026G→A多态座位检测结果  56-57
      5.2.3 F-1240C→A多态座位检测结果  57
  6 SNP与猪脂肪性状的相关分析  57-66
    6.1 ATGL基因多态座位对猪脂肪性状的影响  57-61
      6.1.1 ATGL基因各多态座位在不同猪种中的分布情况  57-59
      6.1.2 ATGL基因各多态座位与猪脂肪及其它性状的相关分析  59-61
    6.2 FATP1基因多态座位对猪脂肪性状的影响  61-66
      6.2.1 FATP1基因各多态座位在不同猪种中的分布情况  61-63
      6.2.2 FATP1基因各多态座位与猪脂肪及其它性状的相关分析  63-66
第四章 讨论  66-73
  1 候选基因的选择  66-67
  2 四引物ARMS-PCR分析方法的优化  67-68
  3 ATGL基因和FATP1基因5'调控区的多态性  68-70
  4 ATGL基因5'调控区多态性与猪脂肪性状等的相关分析  70-71
  5 FATP1基因5'调控区多态性与猪脂肪性状等的相关分析  71-73
第五章 小结  73-75
  1 本研究的主要结论  73-74
  2 本研究的特色与创新点  74
  3 本研究的不足之处  74-75
参考文献  75-80
致谢  80

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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 家畜 >
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