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Tetl基因在猪诱导多潜能干细胞特性维持中的作用研究
作 者: 范安然
导 师: 李子义
学 校: 吉林大学
专 业: 动物学
关键词: 诱导多潜能干细胞(iPS) Tet1 基因表达 甲基化 羟甲基化 猪
分类号: R457.7
类 型: 博士论文
年 份: 2013年
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内容摘要
过表达胚胎特异性转录因子Oct4、Sox2、Klf4、c-Myc,能将已分化的小鼠成纤维细胞重编程为多潜能状态,即诱导多潜能干细胞(iPS)。随后不同物种、不同组织来源的靶细胞iPS建系的研究相继开展,包括猪的iPS。最近发现TET家族蛋白(包括Tet1、Tet2、Tet3三个家族成员)能氧化5-甲基胞嘧啶(5mC)为5-羟甲基胞嘧啶(5hmC),从而促进DNA的主动去甲基化。Tet1在小鼠的胚胎干细胞(mES)中表达量很高,并已经被证明参与小鼠mES的维持。本实验通过诱导多潜能干细胞技术以及RNA干扰技术研究了Tet1基因在猪iPS(piPS)中的作用。结果显示:(1)鼠源的逆转录病毒递送系统Oct4、Sox2、Klf4、c-Myc,在猪胚胎成纤维细胞中仍然适用,可以将猪胚胎成纤维细胞(PEF)重编程为iPS,所得iPS克隆形态与人的ES相似,呈扁平状。piPS表达干细胞标记OCT4、SOX2、NANOG、REX1和SSEA4。piPS在体外能形成拟胚体,拟胚体中表达三胚层标记基因Afp、Bmp4、Gfap。将piPS注射到裸鼠皮下,能形成三个胚层起源的组织,包括外胚层起源的神经上皮,中胚层起源的血管、横纹肌,内胚层起源的滤泡样结构;(2)化学合成了Tet1的4种siRNA,其中2种siRNA能有效干扰Tet1表达。siRNA干扰Tet1表达后,piPS失去自我更新状态,开始分化并影响基因表达。Tet1表达下调后,谱系分化相关基因Pitx2、Hand1、Gata6和Lef1表达上升,多能性相关基因Lefty2、Klf2、Sox2表达下降,而Oct4、c-Myc、Klf4和Nanog的表达没有明显变化;(3)siRNA干扰Tet1表达后,Oct4、c-Myc启动子区域5mC含量明显上升,Sox2、Nanog启动子区域5mC含量没有变化,Klf4启动子区域5mC含量轻度上升;Tet1下调后,全基因组水平的5mC含量上升,而5hmC含量下降。
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全文目录
内容提要 5-6 中文摘要 6-9 Abstract 9-12 目录 12-15 英文缩写词表 15-16 前言 16-18 第一篇 文献综述 18-52 第1章 表观遗传修饰 18-28 1.1 发育中的表观遗传修饰 18-20 1.1.1 DNA 甲基化 18-19 1.1.2 组蛋白修饰 19-20 1.2 胚胎干细胞中的表观遗传修饰 20-22 1.3 ES 细胞中表观遗传景观 22-25 1.4 分化过程中表观遗传的动态变化 25-28 第2章 细胞重编程与 iPS 28-42 2.1 细胞重编程历史 28-31 2.1.1 核移植与动物克隆 28 2.1.2 多能干细胞系与融合杂交 28-29 2.1.3 转录因子与谱系转换 29-30 2.1.4 iPS 细胞 30-31 2.2 产生 iPS 细胞的技术 31-32 2.3 iPS 形成的可能机制 32-39 2.3.1 精英模型与随机模型 32-33 2.3.2 重编程的屏障 33-35 2.3.3 重编程因子在表观遗传重塑中的作用 35-37 2.3.4 拮抗与协同因子 37-39 2.4 iPS 细胞应用 39-42 2.4.1 iPS 细胞与细胞疗法 39-40 2.4.2 使用 iPS 细胞的药物开发 40-42 第3章 5-羟甲基胞嘧啶与 TET 家族 42-52 3.1 5-羟甲基化的发现和历史 42-43 3.2 TET 家族蛋白的发现及其结构 43-44 3.3 5hmC 检测技术和发展 44-46 3.4 TET 蛋白作用机制 46-48 3.5 TET 蛋白和 5hmC 在小鼠发育中的作用 48-52 3.5.1 TET 蛋白在原始生殖细胞和配子中的作用 48-49 3.5.2 TET 蛋白在合子中的作用 49 3.5.3 TET 蛋白在植入前、植入后胚胎和 ES 中的作用 49-50 3.5.4 TET 蛋白在出生后发育中的作用 50-51 3.5.5 TET 家族蛋白和 5hmC 在人类癌症中的作用 51-52 第二篇 实验研究 52-100 第1章 猪 iPS 诱导与鉴定 52-70 1.1 材料试剂 53-55 1.1.1 实验动物 53 1.1.2 主要仪器 53 1.1.3 主要耗材 53-54 1.1.4 主要试剂及配制方法 54-55 1.2 实验方法 55-60 1.2.1 小鼠原代胎儿成纤维细胞(MEF)分离培养 55-56 1.2.2 小鼠饲养层细胞(Feeder)制备 56 1.2.3 约克夏猪原代胎儿成纤维细胞(PEF)分离培养 56-57 1.2.4 逆转录病毒包装 57 1.2.5 诱导 PEF 重编程为 iPS 57-58 1.2.6 免疫荧光染色 58 1.2.7 拟胚体形成实验 58 1.2.8 畸胎瘤形成实验 58-59 1.2.9 HE 染色 59-60 1.2.10 嵌合体制备 60 1.3 结果 60-68 1.3.1 PEF 重编程为 iPS 60-61 1.3.2 猪 iPS 多能性标记表达及体外分化能力鉴定 61-63 1.3.3 畸胎瘤形成实验 63-65 1.3.4 嵌合体猪制备 65-68 1.4 讨论 68-69 1.5 小结 69-70 第2章 Tet1 下调对猪 iPS 基因表达的影响 70-86 2.1 材料试剂 70-72 2.1.1 实验动物 70 2.1.2 主要仪器 70-71 2.1.3 主要耗材 71 2.1.4 主要试剂及配制方法 71-72 2.2 实验方法 72-76 2.2.1 siRNA 转染猪 iPS 细胞系 72-73 2.2.2 流式细胞仪筛选阳性细胞 73 2.2.3 RNA 提取与 cDNA 合成 73-74 2.2.4 常规 PCR 与荧光定量 PCR 74 2.2.5 Western Blot 74-76 2.3 结果 76-82 2.3.1 Tet1 在猪 iPS 中的表达 76-78 2.3.2 siRNA 转染 iPS 78-79 2.3.3 siRNA 转染猪 iPS 后发生的形态学变化 79-80 2.3.4 siRNA 转染 iPS 后对谱系分化相关基因表达的影响 80-81 2.3.5 siRNA 转染 iPS 后对多能性相关基因表达的影响 81-82 2.4 讨论 82-84 2.5 小结 84-86 第3章 Tet1 下调对 iPS 的 DNA 甲基化状态的影响 86-100 3.1 材料试剂 86-87 3.1.1 实验动物 86 3.1.2 主要仪器 86-87 3.1.3 主要耗材 87 3.1.4 主要试剂及配制方法 87 3.2 实验方法 87-90 3.2.1 基因启动子区域 CpG 岛分析以及亚硫酸氢盐测序引物设计 87-88 3.2.2 甲基化分析:亚硫酸氢盐转化后 DNA 测序(BSP) 88 3.2.3 羟甲基化分析:糖基化酶切 PCR 88-89 3.2.4 Dot Blot 89-90 3.3 结果 90-96 3.3.1 多能性相关基因启动子区域 5hmC 检测 90-91 3.3.2 Tet1 下调后,多能性相关基因启动子区域甲基化状态 91-95 3.3.3 Tet1 敲低后,基因组水平上的 5mC 与 5hmC 状态 95-96 3.4 讨论 96-98 3.5 小结 98-100 结论 100-102 参考文献 102-130 导师简介 130-132 攻读博士期间发表论文情况 132-134 附录 134-136 致谢 136
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中图分类: > 医药、卫生 > 临床医学 > 治疗学 > 血液疗法 > 骨髓移植
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