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半夏蛋白纯化、表达及其活性研究
作 者: 周炜
导 师: 徐涛
学 校: 浙江理工大学
专 业: 生物化学与分子生物学
关键词: 半夏胰蛋白酶抑制剂 半夏凝集素 纯化 分泌表达 抗肿瘤
分类号: S567.239
类 型: 硕士论文
年 份: 2014年
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内容摘要
半夏(Pinellia ternata (Thunb.) Breit)为天南星科半夏属植物,以块茎入药,是一种传统中药,主要成分有蛋白、多糖、生物碱和有机酸等。半夏块茎有燥湿化痰、散结、降逆止呕等功效。研究表明半夏块茎具有抗早孕、抗肿瘤、抗虫、抗病毒、抗真菌、抗心律失常、促有丝分裂、降血脂和凝血等作用。半夏蛋白主要由半夏胰蛋白酶抑制剂和半夏凝集素组成。植物蛋白酶抑制剂和凝集素具备多种生物学功能活性,目前商业应用已经很广泛。本研究设计单步Trypsin-Sepharose4B亲和柱层析法来亲和分离纯化半夏胰蛋白酶抑制剂(Pinellia ternata tryspin inhibitor,PTTI)。通过半夏块茎组织匀浆、水提、硫酸铵梯度沉淀和Trypsin-Sepharose4B亲和柱吸附及洗脱,得到一种新的蛋白酶抑制剂。SDS-PAGE显示纯化的半夏蛋白酶抑制的分子量为20kDa左右,应属于植物Kunitz型植物蛋白酶抑制剂。利用猪胰脏胰蛋白酶作为反应酶,BAPNA作为酶反应底物,得到纯化的半夏蛋白酶抑制剂的抑制比活力为366.5±14.57U/mg,纯化倍数为8.6倍。硫酸-苯酚法测得该蛋白的多糖含量为12.84±0.64%,表明从半夏块茎中的分离得到的半夏抑制剂蛋白是一种糖蛋白。稳定性实验表明该抑制剂对温度和pH都相对稳定。半夏凝集素(Pinellia ternata agglutinin,PTA)是一种单子叶甘露糖结合型植物凝集素,是四个亚基组成的同源二聚体。本研究利用Mannose-Sepharose4B亲和柱建立一种新的植物凝集素分离方法,通过优化亲和分离条件,高通量纯化得到半夏凝集素PTA。通过半夏块茎组织匀浆、浸泡过夜、硫酸铵沉淀和离心,得到半夏总蛋白。半夏总蛋白分别溶于10%,15%,20%,25%和30%不同质量分数的NaCl溶液中处理,随后不同浓度NaCl溶液中的蛋白样品上样到Mannose-Sepharose4B亲和柱中用以吸附PTA,淋洗掉未结合的杂蛋白后,将PBS通入Mannose-Sepharose4B亲和柱中,发现可通过降低亲和柱中缓冲液的盐离子浓度从而将亲和吸附的PTA洗脱下来。含量测定表明当半夏总蛋白用25%NaCl溶液处理后可获得最大的纯化得率,为35.5mg/g半夏块茎。SDS-PAGE显示该方法分离得到的PTA分子量为12kDa左右且纯度很高,约97%。凝血实验表明PTA浓度为6μg/mL时可以明显凝集小鼠血细胞。本研究建立一种新的植物凝集素单步分离方法,不仅可用于甘露糖凝集素的分离,也可用于其他植物凝集素的分离。该方法与传统的植物凝集素分离方法相比,比如离子柱层析、凝胶过滤和猪甲状腺球蛋白亲和层析法,具有纯化得率高、产物纯度高、操作过程简单、经济花费少和产物无污染等特点,具有良好的工业应用前景。信号肽APSP可引导目的肽链穿过细胞内膜进入内膜与外膜的周质空间内,然后该信号肽序列被信号肽裂解酶特异性切除,获得末端保真性肽链,在一系列生化酶的作用下,重组肽链可形成二硫键并且正确折叠。本研究通过PTA的结构信息,以pta基因为模板,设计特异PCR引物,克隆得到编码半夏凝集素N端结构域肽链基因pta-n。根据大肠杆菌碱性磷酸酶信号肽核酸序列apsp,设计PCR引物,通过三步PCR法,将apsp核酸序列融合到pta-n的5’端,获得融合目的基因apsp-pta-n,以期实现PTA-N的分泌性表达。该目的基因经过限制性内切酶Nco Ⅰ和Xho Ⅰ双酶切后,产物片段与表达质粒酶连,构建得到重组表达质粒pET-28a-apsp-pta-n并转入到表达菌株E. coli BL21(DE3)获得工程菌株。该工程菌株经过IPTG诱导表达、超声波破碎与离心,获得细胞破碎上清液。Ni-NTA亲和柱用于重组蛋白PTA-N的纯化,SDS-PAGE用于证实目的蛋白的诱导表达与纯化结果。SDS-PAGE表明该目的蛋白可以可溶性表达并被Ni-NTA亲和柱纯化,纯化得率约为20mg/L。凝血与抑制实验表明PTA-N (6μg/mL)能凝结小鼠血细胞。抗真菌实验显示PTA-N对小麦赤霉菌Gibberella saubinetii具有生长抑制作用。抗肿瘤实验MTT法表明PTA-N对多种肿瘤细胞系有生长抑制作用,进一步的Hochest33342核染色和DNA片段化分析表明PTA-N处理人类肝癌肿瘤细胞Bel-7404后可形成凋亡典型的凋亡小体和梯状化核酸片段。这些结果证明PTA-N通过诱导Bel-7404发生凋亡而发挥抗肿瘤活性,这些结果也表明重组表达的PTA-N具有与天然PTA相似的生理功能。本研究根据PTA晶体结构信息,通过碱性磷酸酶信号肽与目的蛋白融合,构建分泌表达体系,实现半夏甘露糖结合凝集素在原核表达系统中的可溶性表达,为其他植物凝集素的表达提供一定参考。
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全文目录
摘要 8-10 Abstract 10-13 缩略语 13-18 第一章 文献综述 18-41 1.1 植物凝集素 18-26 1.1.1 植物凝集素的发现 18 1.1.2 植物凝集素的定义 18-19 1.1.3 植物凝集素的分类 19-20 1.1.4 植物凝集素的结构 20-21 1.1.5 植物凝集素的分离纯化 21-22 1.1.6 植物凝集素的生物活性 22-25 1.1.6.1 抗昆虫作用 22-23 1.1.6.2 抗真菌作用 23 1.1.6.3 抗肿瘤作用 23-24 1.1.6.4 抗病毒作用 24 1.1.6.5 生物固氮作用 24-25 1.1.7 植物凝集素的应用 25-26 1.2 植物蛋白酶抑制剂 26-28 1.2.1 植物蛋白酶抑制剂简介 26 1.2.2 植物蛋白酶抑制剂的分类 26 1.2.3 植物蛋白酶抑制剂的应用 26-28 1.3 半夏凝集素 28-35 1.3.1 半夏简介 28 1.3.2 半夏块茎成分研究 28-30 1.3.2.1 半夏多糖 28-29 1.3.2.2 生物碱 29 1.3.2.3 氨基酸类 29 1.3.2.4 半夏蛋白 29-30 1.3.2.5 有机酸类 30 1.3.2.6 挥发油类 30 1.3.3 半夏凝集素的发现 30-31 1.3.4 半夏凝集素生理活性 31 1.3.5 半夏凝集素晶体结构 31-33 1.3.6 半夏凝集素的克隆表达研究进展 33-34 1.3.7 半夏凝集素转基因植物研究 34-35 1.4 大肠杆菌可溶性表达外源蛋白策略 35-39 1.4.1 大肠杆菌表达系统特点 35-36 1.4.2 可溶性表达策略 36-39 1.4.2.1 培养条件的优化 36-37 1.4.2.2 分泌表达 37 1.4.2.3 信号肽结构与功能 37-38 1.4.2.4 分泌途径 38-39 1.5 本研究的目的与研究内容 39-41 1.5.1 研究目的 39-40 1.5.2 研究内容 40-41 第二章 半夏胰蛋白酶抑制剂的分离纯化 41-51 前言 41 2.1 材料与试剂 41-42 2.1.1 实验材料 41 2.1.2 主要仪器 41 2.1.3 主要试剂的配制 41-42 2.2 实验方法步骤 42-45 2.2.1 半夏胰蛋白酶抑制剂的分离纯化 42-43 2.2.2 SDS-PAGE 凝胶电泳检测 43-44 2.2.3 Native-PAGE 电泳检测 44 2.2.4 半夏胰蛋白酶抑制剂活力测定 44 2.2.5 PTTI 多糖含量测定 44-45 2.2.6 热稳定性与酸碱稳定性分析 45 2.3 实验结果与讨论 45-50 2.3.1 实验结果 45-48 2.3.1.1 硫酸铵沉淀结果 45-46 2.3.1.2 亲和纯化分离结果 46-47 2.3.1.3 多糖含量测定的标准曲线 47 2.3.1.4 PTTI 抑制活力测定结果 47 2.3.1.5 热稳定性与酸碱稳定性 47-48 2.3.2 讨论 48-50 2.4 本章小结 50-51 第三章 半夏凝集素纯化条件的优化 51-60 前言 51 3.1 实验材料和试剂 51-52 3.1.1 实验材料 51 3.1.2 主要仪器 51-52 3.1.3 主要试剂的配制 52 3.2 实验方法 52-54 3.2.1 硫酸铵沉淀总蛋白 52-53 3.2.2 Mannose-Sepharose 4B 亲和层析 53 3.2.3 凝血活性检测 53-54 3.3 实验结果 54-57 3.3.1 硫酸铵沉淀 54 3.3.2 亲和纯化条件优化 54-55 3.3.3 不同纯化方法的比较 55-56 3.3.4 凝血活性 56-57 3.4 讨论 57-59 3.5 本章小结 59-60 第四章 半夏凝集素 PTA-N 的可溶表达与活性鉴定 60-85 前言 60-61 4.1 实验材料和主要试剂 61-62 4.1.1 实验材料 61 4.1.2 主要试剂的配制 61-62 4.2 实验方法 62-71 4.2.1 重组蛋白 rPTA-N 的获得 62-69 4.2.1.1 引物序列设计 62 4.2.1.2 半夏凝集素 N 端结构域 pta-n 基因的克隆 62-65 4.2.1.3 载体片段的获得 65 4.2.1.4 apsp-pta-n 与 pET-28a 酶连 65-66 4.2.1.5 CaCl2法制备大肠杆菌感受态细胞 66 4.2.1.6 重组子的转化与鉴定 66-67 4.2.1.7 重组工程菌的获得 67 4.2.1.8 目的蛋白的诱导表达 67-68 4.2.1.9 目的蛋白 rPTA-N 的分离纯化 68-69 4.2.2 重组 rPTA-N 的活性鉴定 69-71 4.2.2.1 凝血活性分析 69 4.2.2.2 抗真菌活性分析 69 4.2.2.3 抗肿瘤活性分析 69-70 4.2.2.4 凋亡 Hochest33342 核染色检测 70 4.2.2.5 DNA 片段化检测细胞凋亡 70-71 4.3 结果 71-79 4.3.1 融合基因 apsp-pta-n 的融合与扩增 71-72 4.3.2 重组质粒的 PCR 与双酶切鉴定 72-73 4.3.3 目的蛋白的诱导表达与纯化 73-74 4.3.4 凝血活性分析 74-75 4.3.5 抗真菌活力分析 75 4.3.6 抗肿瘤活性分析 75-76 4.3.7 肿瘤细胞形态学观察结果 76-77 4.3.8 Hochest 33342 核染色结果 77-78 4.3.9 DNA 片段化分析结果 78-79 4.4 讨论 79-84 4.4.1 目的基因 apsp-pta-n 的融合与表达 79-81 4.4.2 重组 rPTA-N 与天然 PTA 的活性 81-84 4.5 本章小结 84-85 总结与展望 85-87 参考文献 87-94 攻读硕士期间的研究成果 94-96 致谢 96
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中图分类: > 农业科学 > 农作物 > 经济作物 > 药用作物 > 草本 > 多年生 > 其他
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