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人B淋巴细胞刺激因子的克隆、表达、纯化及活性研究
作 者: 梅晶晶
导 师: 张双全
学 校: 南京师范大学
专 业: 生物化学与分子生物学
关键词: 人B淋巴细胞刺激因子 绿色荧光蛋白 大肠杆菌 毕赤酵母 细胞增殖
分类号: Q789
类 型: 硕士论文
年 份: 2006年
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内容摘要
人B淋巴细胞刺激因子(hBAFF)是一种B淋巴细胞的共刺激因子,属TNF超家族成员。本文一方面利用巴斯德毕赤酵母(pichia pastoris)这一真核表达系统成功构建、表达了hBAFF蛋白;同时对毕赤酵母分泌表达得到的hBAFF进行SDS-PAGE、Western blotting、ELISA等方面的检测。另一方面将hBAFF基因通过柔性臂(Gly4Ser)2与增强型绿色荧光蛋白(EGFP)相连,通过大肠杆菌(E.coli)表达系统进行融合蛋白的表达;并对表达蛋白做Western blotting、荧光及B淋巴细胞增殖的活性测定。实验设计及结果如下: 1 EGFP-hBAFF融合蛋白的表达纯化及活性测定 将人B淋巴细胞刺激因子和增强型绿色荧光蛋白通过(Gly4Ser)2linker相连接,在大肠杆菌BL21(DE3)中诱导表达融合蛋白EGFP-hBAFF;并对该蛋白进行Ni2+-IDA亲和层析柱纯化,纯化的蛋白经检测具有EGFP的荧光活性和hBAFF的B淋巴细胞增殖活性。 2 hBAFF在毕赤酵母中的表达及产物鉴定 克隆得到hBAFF基因与穿梭载体pPIC9连接得到pPIC9-hBAFF重组质粒,线性化后电转酵母菌GS115中,挑选出阳性重组子进行诱导表达;并对表达条件优化,表达产物进行Western blotting、ELISA方面的检测。结果表明,当甲醇浓度为1%、诱导时间为72h、温度为20℃时hBAFF蛋白表达量最高。
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全文目录
摘要 6-7 Abstract 7-8 引言 8-9 第一部分 文献综述 9-30 一、人B淋巴细胞刺激因子(hBAFF)的研究进展 10-18 1 BAFF基因及蛋白结构 10-11 2 BAFF的表达 11-12 3 BAFF的受体 12 4 BAFF的生物学功能 12-14 5 BAFF刺激B细胞产生的胞内信号通路的研究 14 6 在疾病中的作用 14-15 参考文献 15-18 二、绿色萤光蛋白综述 18-22 参考文献 21-22 三、巴斯德毕赤酵母(pichia pastoris) 22-30 1 P.pastoris宿主菌 22-23 2 酵母表达载体 23-26 2.1 载体的结构特点 23-24 2.2 载体的类型 24-25 2.3 载体的选择标志 25-26 3 外源蛋白在毕赤酵母中的表达 26-27 3.1 异源蛋白在酵母中表达的一般步骤 26-27 3.2 重组蛋白的翻译后修饰 27 4 应用前景及局限性 27-29 参考文献 29-30 第二部分 实验内容 30-73 第一章 EGFP-hBAFF融合蛋白克隆表达、纯化鉴定及相关的活性研究 31-51 摘要 31-32 1 实验材料 32-33 1.1 实验材料和试剂 32 1.2 主要实验仪器 32 1.3 主要试剂配制 32-33 2 实验设计 33-34 3 实验方法 34-40 3.1 融合蛋白载体的构建 34-37 3.1.1 PCR合成EGFP/hBAFF基因 34-36 3.1.2 DNA的酶切、连接和转化 36-37 3.2 融合蛋白的表达、鉴定和纯化 37-40 3.2.1 融合蛋白表达 37-38 3.2.2 显微镜观察 38 3.2.3 融合蛋白western blotting鉴定 38-39 3.2.4 蛋白纯化 39-40 3.3 荧光光谱测定 40 3.4 融合蛋白活性测定 40 4 实验结果 40-46 4.1 表达载体构建 40-41 4.2 表达纯化融合蛋白 41-44 4.2.1 阳性菌株的蛋白表达 41-43 4.2.2 EGFP/hBAFF融合蛋白的纯化 43-44 4.3 EGFP/hBAFF融合蛋白荧光活性测定 44-45 4.4 融合蛋白活性测定 45-46 5 讨论 46-48 参考文献 48-50 Abstract 50-51 第二章 人B淋巴细胞刺激因子(hBAFF)在毕赤酵母(Pichia pastoris)中的表达和产物定 51-73 摘要 51-52 1 实验材料 52-54 1.1 实验材料和试剂 52 1.2 主要实验仪器 52 1.3.主要试剂配制 52-53 1.4 培养基的配制 53-54 2 实验设计 54-55 3 实验方法 55-63 3.1 PCR合成hBAFF基因 55-56 3.1.1 合成hBAFF基因引物序列 55 3.1.2 PCR反应体系 55-56 3.1.3 引物延伸条件 56 3.2 质粒pPIC9的提取与纯化 56 3.3 用Xho Ⅰ和EcoR Ⅰ酶切质粒pPIC9,并纯化回收 56-57 3.4 连接 57 3.5 转化 57-58 3.5.1 感受态细胞的制备 57 3.5.2 连接产物的转化 57-58 3.6 双酶切鉴定及测序 58 3.7 宿主菌的转化 58-60 3.7.1 质粒的提取 58 3.7.2 质粒的线性化 58 3.7.3 线性化质粒的纯化与鉴定 58 3.7.4 酵母GS115宿主感受态细胞的制备 58-59 3.7.5 电转化 59 3.7.6 PCR鉴定阳性克隆 59-60 3.7.7 重组菌株Mut表型鉴定 60 3.8 重组菌株的甲醇诱导表达 60 3.9 表达产物鉴定 60-61 3.9.1 SDS-PAGE鉴定 60 3.9.2 Western blotting鉴定 60-61 3.10 表达条件的优化 61-62 3.11 ELISA检测不同表达时间、不同温度的蛋白表达量 62-63 4 实验结果 63-67 4.1 hBAFF基因的扩增 63 4.2 重组表达载体的构建 63-64 4.3 电转化 64-65 4.4 hBAFF蛋白的诱导表达 65-67 4.4.1 不同诱导时间蛋白表达的SDS-PAGE 65 4.4.2 诱导72小时后表达上清的Western blotting检测 65-66 4.4.3 不同诱导时间和温度ELISA检测结果 66-67 4.5 真核与原核表达量的不同 67 5 讨论 67-69 参考文献 69-71 Abstract 71-73 全文总结 73-74 致谢 74-75 附1 75
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中图分类: > 生物科学 > 分子生物学 > 基因工程(遗传工程) > 基因工程的应用
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