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金丝慈竹AtCRN1同源基因BeCRN1的分离及遗传转化研究
作 者: 曹慧敏
导 师: 丁雨龙
学 校: 南京林业大学
专 业: 植物学
关键词: 金丝慈竹 克隆 BeCRN1 RACE 愈伤组织
分类号: Q785
类 型: 硕士论文
年 份: 2009年
下 载: 37次
引 用: 1次
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内容摘要
为了研究AtCRN1同源基因BeCRN1的功能并建立金丝慈竹遗传转化体系,本实验选用金丝慈竹作为原材料,进行以下各项研究:采用cDNA末端快速扩增(RACE)技术,在金丝慈竹叶片中分离得到BeCRN1;对BeCRN1进行生物信息学分析;植物双元表达载体pCHF3-BeCRN1构建与导入;采用组织化学法对金丝慈竹愈伤组织进行GUS基因瞬时表达检测金丝慈竹;愈伤组织的抗生素敏感性测试。结果表明:(1)所获得的cDNA全长为1646bp,带一短poly(A)尾巴。该cDNA包含1473bp长的开放阅读框(ORF),编码一个含有491个氨基酸残基的多肽,含有长度45bp的5′UTR和128bp 3′UTR。(2)NCBI BLAST序列分析表明,BeCRN1与水稻中的相关蛋白(EEC80574.1)一致性和相似性最高,分别为414/487 (85%)和446/487 (91%)。与拟南芥中的CRN1蛋白(NP196884.1)一致性为59%,相似性为75%。(3)构建了植物双元表达载体pCHF3-BeCRN1,并采用冻融法导入农杆菌GV3101工程菌中,为以后验证BeCRN1基因的功能奠定了基础。(4)采用组织化学法进行GUS基因瞬时表达检测表明,金丝慈竹愈伤组织可能有β-葡萄糖苷酸酶的本底活性,所以不适合利用本法进行筛选。(5)金丝慈竹愈伤组织的抗生素敏感性测试表明,卡那霉素、PPT和潮霉素都不适用于金丝慈竹抗性愈伤组织筛选。
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全文目录
致谢 3-4 摘要 4-5 Abstract 5-9 第一章 引言 9-21 1 植物的衰老 9-14 1.1 叶片衰老与叶绿素降解 9-11 1.2 叶绿素降解与滞绿 11-12 1.3 叶绿素降解代谢相关基因 12-13 1.4 AtCRN1 研究进展 13-14 2 RACE 技术概述 14-19 2.1 3’RACE 的原理 14-15 2.2 5’RACE 的原理 15-18 2.2.1 环化法 15 2.2.2 末端脱氧核糖核酸转移酶法 15-17 2.2.3 SMART 反转录酶法 17-18 2.3 RACE 技术应用现状 18-19 3 竹类植物转基因技术研究现状 19 4 研究目的和意义 19-21 第二章 AtCRN1 同源基因BeCRN1 的分离 21-39 1 材料和试剂 21 1.1 植物材料 21 1.2 菌种与载体 21 1.3 细菌培养基 21 1.4 生物试剂 21 2 实验内容与方法 21-31 2.1 金丝慈竹RNA 提取、检测以及定量 21-22 2.1.1 RNA 的提取 21-22 2.1.2 RNA 质量检测 22 2.1.3 RNA 定量 22 2.2 用RT-PCR 方法获得 BeCRN1 基因三段保守片段 22-26 2.2.1 cDNA 第一链合成和反转录 PCR(RT-PCR) 22-23 2.2.2 BeCRN1 基因三段保守片段的获得 23-26 2.3 用RACE 法扩增 BeCRN1 基因的3’末端序列 26-28 2.3.1 3’RACE ready cDNA 的合成 27 2.3.2 BeCRN1 3’端扩增的 PCR 体系 27-28 2.4 用RACE 法扩增 BeCRN1 基因的5’末端序列 28-30 2.4.1 第一链cDNA 的合成 29 2.4.2 Hybrid RNA 的分解 29 2.4.3 连接反应 29 2.4.4 两轮 PCR 扩增 29-30 2.5 cDNA 全长克隆 30-31 3 实验结果与讨论 31-39 3.1 引物寻找结果 31-32 3.2 金丝慈竹叶片总RNA 提取 32-33 3.2.1 RNA 质量检测结果 32-33 3.2.2 RNA 定量结果 33 3.3 BeCRN1 基因全长cDNA 序列的获得 33-39 3.3.1 三段保守序列的获得 33 3.3.2 3’RACE 结果 33-35 3.3.3 5’RACE 结果 35-36 3.3.4 全长序列的获得 36-39 第三章 BeCRN1 基因和蛋白序列的生物信息学分析 39-44 1 研究方法和内容 39 2 研究结果与讨论 39-44 2.1 BeCRN1 一级结构序列分析 39-40 2.2 BeCRN1 的亚细胞定位 40-41 2.3 BeCRN1 的多序列比对 41-42 2.4 BeCRN1 的系统进化树分析 42-44 第四章 植物表达载体pCHF3-BeCRN1 的构建 44-48 1 材料与试剂 44 1.1 菌株和质粒 44 1.2 培养基 44 1.3 主要试剂 44 2 实验内容与方法 44-47 2.1 植物表达载体pCHF3- BeCRNI 的构建 44-46 2.1.1 质粒pCHF3 的抽提 44-45 2.1.2 酶切质粒并回收大片段 45 2.1.3 带酶切位点的目的片段 BeCRN1 的获得 45 2.1.4 表达载体pCHF3- BeCRN1 的构建 45-46 2.1.5 将表达载体pCHF3- BeCRN1 转入 Top10 菌株 46 2.2 植物表达载体pCHF3-BeCRN1 转化 GV3101 46-47 2.2.1 农杆菌感受态制备 46 2.2.2 冻融法转化 GV3101 46-47 3 实验结果 47-48 第五章 金丝慈竹遗传转化初步研究 48-54 1 实验材料和试剂 48-49 1.1 植物材料 48 1.2 菌株和质粒 48 1.3 实验所用培养基 48-49 1.4 实验所用试剂 49 2 实验内容和方法 49-50 2.1 金丝慈竹遗传转化体系的建立 49 2.1.1 愈伤组织的诱导 49 2.1.2 愈伤组织的增殖 49 2.2 农杆菌LBA4404 浸染液的制备 49-50 2.3 农杆菌浸染金丝慈竹愈伤和共培养 50 2.4 GUS 基因表达的组织化学法检测 50 2.5 愈伤组织对不同抗生素的敏感性测试 50 3 实验结果与讨论 50-54 3.1 农杆菌侵染结果 50-51 3.2 抗生素敏感性测试结果 51-54 第六章 总结及展望 54-55 1 结论 54 2 论文不足之处 54 3 展望 54-55 附录 55-56 参考文献 56-61 详细摘要 61-64
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中图分类: > 生物科学 > 分子生物学 > 基因工程(遗传工程) > 转化及克隆
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