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卷枝毛霉脂肪酸脱饱和酶的克隆与表达

作 者: 刘小琳
导 师: 黄建忠
学 校: 福建师范大学
专 业: 微生物学
关键词: 卷枝毛霉 △9-脱饱和酶 △12-脱饱和酶 克隆与表达 启动子
分类号: Q78
类 型: 硕士论文
年 份: 2013年
下 载: 9次
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内容摘要


卷枝毛霉Mucor circinelloides作为一种产油脂丝状真菌,可用于多种不饱和脂肪酸的生产,具有重大的经济价值。为进一步探究卷枝毛霉的代谢途径和分子机理,本课题对Mucor circinelloides EIM-10的Δ12-脱饱和酶和Δ9-脱饱和酶基因进行克隆分析和表达。结果显示,Δ12-脱饱和酶和Δ9-脱饱和酶全长分别为1191bp和1359bp,编码397和453个氨基酸。序列比对显示,与Amylomyces rouxii (GenBank: AY995173.1)和Mucor circinelloides (GenBank:AF533361.1)具有94%的相似性。将Δ12-脂肪酸脱饱和酶基因连接到酵母表达载体pYES2.0,构建重组表达载体pYMCD12,转入酿酒酵母表达,培养过程中添加半乳糖诱导表达。提取总脂肪酸,GC-MS检测分析:在Δ12-脱饱和酶的催化下,pYMD12将内源油酸(C18:1)转化成亚油酸(C18:2),转化效率36.401%。为了提高表达量,本实验继续探究启动子MD6p和GAP对Δ12-脱饱和酶表达效率的影响。从毕赤酵母表达载体pGAPZa中克隆到GAP启动子,将GAP连接到pYMD12载体中,成功构建pYGAPMD12表达载体;用Δ12-脱饱和酶cDNA替换pYMD6pMD6表达载体中的Δ6-脱饱和酶基因,成功构建pYMD6pMD12表达载体。运用醋酸锂转化法将表达载体转化进酿酒酵母营养缺陷型菌株INVScl中,无需半乳糖诱导表达。提取总脂肪酸,GC-MS检测分析:相对pYMD12,pYMD6pMD12转化C18:1的转化率提高了18.432%,而pYGAPMD12转化C18:1的转化率提高了32.771%;另外pYMD6pMD12不将C16:1转化成C16:2,而pYGAPMD12可以转化C16:1,转化效率为32.943%。

全文目录


中文摘要  2-3
Abstract  3-5
中文文摘  5-7
目录  7-12
绪论  12-26
  一、亚油酸  12-15
    1.1 油酸的定义  12
    1.2 油酸的分布  12-13
    1.3 亚油酸的结构  13
    1.4 油酸的理化性质  13
    1.5 油酸的生物合成途径  13-14
    1.6 油酸的功能  14-15
  二、脂肪酸脱饱和酶  15-22
    2.1 脂肪酸脱饱和酶的分类  15-16
    2.2 脂肪酸脱饱和酶的结构  16
    2.3 脂肪酸脱饱和酶分子研究进展  16-17
    2.4 Δ12-脂肪酸脱饱和酶  17-19
    2.5 Δ9-脂肪酸脱饱和酶  19-20
    2.6 Δ6-脂肪酸脱饱和酶  20-21
    2.7 脂肪酸脱饱和酶的应用  21-22
  三、启动子  22-24
    3.1 启动子的定义  22
    3.2 原核启动子  22
    3.3 真核启动子  22-23
    3.4 脂肪酸脱饱和酶启动子  23-24
  四、本研究的目的意义与主要内容  24-26
    4.1 研究目的及意义  24
    4.2 主要内容  24-26
第一章 Δ9-脱饱和酶和Δ12-脱饱和酶基因克隆及分析  26-42
  第一节 材料与方法  26-33
    1 材料  26-27
      1.1 菌株和质粒  26
      1.2 主要试剂及培养基  26-27
      1.3 主要仪器  27
    2 方法  27-33
      2.1 Δ9-脱饱和酶和Δ12-脱饱和酶基因克隆  27-31
        2.1.1 DNA提取  27-28
        2.1.2 PCR扩增  28-29
        2.1.3 PCR产物回收  29-30
        2.1.4 载体的连接  30
        2.1.5 感受态细胞的制备  30
        2.1.6 大肠杆菌转化  30-31
        2.1.7 菌落PCR验证  31
        2.1.8 序列测定与分析  31
      2.2 Δ9-脱饱和酶和Δ12-脱饱和酶cDNA克隆  31-33
        2.2.1 RNA提取  31-32
        2.2.2 反转录  32
        2.2.3 第二链的合成  32-33
        2.2.4 PCR产物回收  33
        2.2.5 载体的连接  33
        2.2.6 大肠杆菌转化  33
        2.2.7 菌落PCR验证  33
        2.2.8 序列测定及分析  33
  第二节 结果与分析  33-40
    3.1 Δ9-脱饱和酶和Δ12-脱饱和酶DNA克隆  33-36
      3.1.1 DNA提取  33
      3.1.2 Δ9-脱饱和酶和Δ12-脱饱和酶克隆  33-34
      3.1.3 菌落PCR验证  34
      3.1.4 Δ9-脱饱和酶和Δ12-脱饱和酶DNA测序结果  34-36
    3.2 Δ9-脱饱和酶和Δ12-脱饱和酶cDNA克隆  36-40
      3.2.1 RNA提取  36-37
      3.2.2 Δ9-脱饱和酶和Δ12-脱饱和酶cDNA扩增  37
      3.2.3 菌落PCR验证  37-38
      3.2.4 Δ9-脱饱和酶和Δ12-脱饱和酶cDNA序列测序结果  38-40
  第三节 小结  40-42
第二章 脱饱和酶基因在酿酒酵母中的表达  42-54
  第一节 材料和方法  42-48
    1 材料  42-43
      1.1 菌株和质粒  42
      1.2 主要培养基及试剂  42-43
      1.3 主要仪器  43
    2 方法  43-48
      2.1 PYMD9和PYMD12质粒的构建  43-45
        2.1.1 cDNA与pYES2.0载体的连接  43-44
        2.1.2 大肠杆菌转化  44
        2.1.3 菌落PCR验证  44
        2.1.4 重组质粒的提取和双酶切验证  44-45
        2.1.5 序列测定与分析  45
      2.2 酿酒酵母工程菌的表达  45-47
        2.2.1 酿酒酵母感受态细胞的制备  45-46
        2.2.2 醋酸锂转化  46
        2.2.3 菌液PCR验证  46
        2.2.4 酿酒酵母工程菌的诱导表达  46-47
      2.3 重组表达产物的GC-MS分析  47-48
  第二节 结果与分析  48-52
    3.1 重组质粒菌落PCR验证  48
    3.2 重组质粒双酶切验证  48-49
    3.3 醋酸铿法转化酿酒酵母  49
    3.4 转化子菌液PCR验证  49-50
    3.5 酿酒酵母工程菌的诱导表达  50-51
    3.6 脂肪酸转换效率  51-52
  第三节 小结  52-54
第三章 启动子MD6p和GAP对Δ12-脱饱和酶表达效率的影响  54-66
  第一节 材料和方法  54-58
    1 材料  54-55
      1.1 菌株和质粒  54
      1.2 主要试剂培养基  54
      1.3 主要仪器  54-55
    2 方法  55-58
      2.1 表达载体pYGAPMD12和pYMD6pMD12的构建  55-58
        2.1.1 表达载体pYGAPMD12的构建  55-57
          2.1.1.1 GAP片段的克隆  56
          2.1.1.2 PCR产物回收  56
          2.1.1.3 表达载体的连接  56-57
          2.1.1.4 大肠杆菌转化  57
          2.1.1.5 菌落PCR验证  57
          2.1.1.6 双酶切验证  57
          2.1.1.7 序列测定  57
        2.1.2 pYMD6pMD12质粒的构建  57-58
          2.1.2.1 Δ12-脱饱和酶cDNA与表达载体的连接  57-58
          2.1.2.2 大肠杆菌转化  58
          2.1.2.3 菌落PCR验证  58
          2.1.2.4 双酶切验证  58
          2.1.2.5 序列测定及分析  58
      2.2 载体pYGAPMD12和pYMD6pMD12的表达  58
  第二节 结果与分析  58-64
    3.1 pYGAPMD12质粒构建  58-60
      3.1.1 GAP片段的克隆  58-59
      3.1.2 菌落PCR验证  59
      3.1.3 双酶切验证  59-60
      3.1.4 GAP序列测定  60
    3.2 pYMD6pMD12质粒的构建  60-61
      3.2.1 Δ12-脱饱和酶cDNA和pYMD12载体双酶切回收  60
      3.2.2 菌落PCR验证  60-61
      3.2.3 双酶切验证  61
    3.3 pYGAPMD12和pYMD6pMD12的表达及产物GC/MS分析  61-64
      3.3.1 醋酸锂法转化酿酒酵母  61-62
      3.3.2 转化子菌液PCR验证  62
      3.3.3 酿酒酵母工程菌的诱导表达  62-63
      3.3.4 脂肪酸转化效率  63-64
  第三节 小结  64-66
第四章 结论  66-68
参考文献  68-76
附录 主要符号对照表  76-78
攻读学位期间承担的科研任务与主要成果  78-80
致谢  80-81

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中图分类: > 生物科学 > 分子生物学 > 基因工程(遗传工程)
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