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水稻瘤矮病毒P8和Pns10基因在sf9昆虫细胞中的表达
作 者: 黄美英
导 师: 吴祖建
学 校: 福建农林大学
专 业: 微生物学
关键词: RGDV-P8 RGDV-Pns10 bac-to-bac杆状病毒表达系统 Sf9昆虫细胞
分类号: S435.111.4
类 型: 硕士论文
年 份: 2007年
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内容摘要
目的:利用bac-to-bac杆状病毒表达系统对RGDV-P8和RGDV-Pns10基因加以表达,得到RGDV-P8和RGDV-Pns10基因的真核表达产物,为RGDV-P8和RGDV-Pns10的功能研究奠定基础。方法:在RGDV-P8和RGDV-Pns10基因组片段的基础上设计引物,扩增得到RGDV-P8和RGDV-Pns10 ORF,将其克隆到供体质粒pFastBacTMHTb中,经PCR、酶切和测序鉴定后,将测序正确的质粒转化DH10Bac菌,经筛选、鉴定后,抽提并获取高纯度的重组穿梭载体Bacmid-RGDV-P8和Bacmid-RGDV-Pns10。用脂质体介导法将重组穿梭载体Bacmid-RGDV-P8和Bacmid-RGDV-Pns10转染Sf9昆虫细胞,获得重组病毒,并反复扩增后得到大量表达RGDV-P8和RGDV-Pns10蛋白的重组杆状病毒。用重组的杆状病毒再次感染sf9昆虫细胞得到RGDV-P8和RGDV-Pns10融合蛋白,对融合蛋白进行SDS-PAGE分析和Western-blot鉴定。结果:1.构建了携带RGDV-P8和RGDV-Pns10基因片段的重组供体质粒pfastbacHTb-RGDV-P8和pfastbacHTb-RGDV-Pns10,经双酶切鉴定和序列分析证实RGDV-P8和RGDV-Pns10基因已正确插入供体质粒的多克隆位点。2.构建了携带RGDV-P8和RGDV-Pns10基因片段的重组穿梭载体Bacmid-RGDV-P8和Bacmid-RGDV-Pns10,经PCR鉴定分析证实RGDV-P8和RGDV-Pns10基因已正确转座插入穿梭载体的转座位点。3.用bac-to-bac系统表达了RGDV-P8和RGDV-Pns10融合蛋白,并经SDS-PAGE、Western-blot分析鉴定,分子量约为48kD和38kD,与融合蛋白的理论分子量相符。结论:本研究成功地在杆状病毒-昆虫表达系统中表达了RGDV-P8和RGDV-Pns10蛋白,为RGDV-P8和RGDV-Pns10蛋白进一步的功能研究和实际应用奠定了良好的基础。
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全文目录
中文摘要 7-8 Abstract 8-9 1 前言 9-21 1.1 RGDV分布和症状 9 1.2 传毒介体及传毒特性 9-10 1.3 水稻瘤矮病的发病规律与防治措施 10-11 1.3.1 水稻瘤矮病的发病规律 10 1.3.2 水稻瘤矮病的防治措施 10-11 1.4 基因组结构与功能 11-17 1.4.1 RGDV粒体形态与特性 11-13 1.4.2 基因组结构与功能 13-17 1.5 杆状病毒表达系统研究概况 17-19 1.5.1 昆虫杆状病毒表达系统的研究和应用进展 17-18 1.5.2 杆状病毒表达系统的原理及特点 18-19 1.6 本研究的目的和意义 19-21 2 材料与方法 21-34 2.1 实验材料 21-23 2.1.1 供试病毒 21 2.1.2 试剂和酶类 21 2.1.3 载体和菌株 21 2.1.4 实验仪器 21-23 2.2 实验方法 23-34 2.2.1 RGDV双链RNA的抽提与纯化及定量 23 2.2.1.1 RGDV-dsRNA的提取与纯化 23 2.2.1.2 dsRNA的定量 23 2.2.2 P8和PNS10基因的扩增 23-25 2.2.2.1 引物设计与合成 23-24 2.2.2.2 cDNA合成 24 2.2.2.3 PCR扩增 24-25 2.2.2.4 PCR产物纯化 25 2.2.3 DNA克隆技术 25-26 2.2.3.1 目的片段与pMD18-T Vector的连接反应 25-26 2.2.3.2 大肠杆菌感受态细胞的简易制备(CaCl_2法) 26 2.2.3.3 连接反应物对宿主感受态细胞的转化 26 2.2.4 重组克隆的PCR筛选 26-27 2.2.5 质粒的少量提纯(碱法) 27-28 2.2.5.1 碱裂解法小量制备质粒DNA 27 2.2.5.2 P8和PNS10重组质粒的酶切鉴定 27-28 2.2.6 重组杆状病毒表达载体的构建 28 2.2.6.1 供体质粒的构建 28 2.2.6.2 序列测定 28 2.2.7 重组杆粒的获得与鉴定 28-30 2.2.7.1 DH10BAC感受态细胞的制备 28-29 2.2.7.2 转化 29 2.2.7.3 阳性重组子RGDV-P8-bacmid和RGDV-P10-bacmid杆粒的抽提 29-30 2.2.8 昆虫细胞的培养 30-31 2.2.8.1 Grace’s培养基的配制 30 2.2.8.2 细胞的复苏和传代 30 2.2.8.3 sf9细胞的冻存 30 2.2.8.4 血细胞计数板计数 30-31 2.2.8.5 sf9细胞的培养 31 2.2.9 重组BACMID DNA转染SF9细胞及重组病毒的收获 31 2.2.10 扩毒 31 2.2.11 重组病毒的PCR鉴定 31 2.2.12 目的蛋白的表达和表达产物的鉴定 31-34 2.2.12.1 感染 32 2.2.12.2 细胞收集 32 2.2.12.3 细胞裂解 32 2.2.12.4 蛋白的SDS-PAGE电泳 32 2.2.12.5 蛋白的western-blot鉴定 32-34 3 结果与分析 34-51 3.1 RGDV-DSRNA的提取及纯化 34 3.2 目的基因的克隆 34-37 3.2.1 基因组P8片段的PCR扩增及克隆 34-36 3.2.2 基因组PNS10片段的PCR扩增及克隆 36-37 3.3 重组转座载体的构建 37-39 3.4 重组转座载体的酶切分析 39 3.5 序列测定与分析 39-40 3.6 重组杆状病毒BAC-HTB的鉴定 40-41 3.7 转移载体杆粒制备 41 3.8 Sf9昆虫细胞生长曲线测定和培养 41-43 3.9 正常Sf9细胞形态和Bac-HTb转染后Sf9细胞的形态变化 43-44 3.10 重组蛋白的SDS-PAGE分析 44-48 3.11 重组蛋白的WESTERN-BLOT分析 48-51 4 讨论 51-54 4.1 杆状病毒表达系统 51-52 4.2 Sf9昆虫细胞的培养 52 4.3 HCV结构蛋白的表达 52 4.4 蛋白收获的时间 52-54 5 结论 54-55 参考文献 55-61 致谢 61
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中图分类: > 农业科学 > 植物保护 > 病虫害及其防治 > 农作物病虫害及其防治 > 禾谷类作物病虫害 > 稻病虫害 > 病害 > 侵(传)染性病害
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