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紫甘薯花色苷提取、膜分离及加工稳定性研究

作 者: 李金林
导 师: 涂宗财
学 校: 南昌大学
专 业: 粮食、油脂及植物蛋白工程
关键词: 紫甘薯花色苷 定量检测 酶解助提取 膜分离 稳定性
分类号: TQ914.1
类 型: 硕士论文
年 份: 2007年
下 载: 719次
引 用: 5次
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内容摘要


紫甘薯(purple sweet potato)属旋花科一年生草本植物,其富含抗氧化作用的天然色素,是一种提取花色苷较好的资源,引起了国内外的广泛关注。本论文以紫甘薯为原料,对紫甘薯花色苷检测方法、提取工艺、酶解助提取工艺、膜分离以及紫甘薯花色苷在加工过程中稳定性进行了研究,研究结果如下:本论文以亚硫酸钠为漂白剂,采用漂白法对紫甘薯花色苷进行定量检测,分别对检测pH值、检测波长λmax、吸光度线性范围、漂白剂用量、漂白时间进行了研究,结果表明:采用漂白法检测紫甘薯花色苷的最佳检测条件为:检测pH值为3、检测波长λmax为528nm、吸光度线性范围为0.2~2.9、漂白剂用量为3g/10mL、漂白时间为10min。以苋菜红为标样,绘制标准曲线,标准曲线线性回归方程为:y=42.767x+0.8947,其中,Y——苋菜红浓度,μg/g;X——吸光度。以此法检测,紫甘薯样品中花色苷含量为:368.53mg/100g。与乙醇和柠檬酸酸化乙醇相比,柠檬酸溶液对紫甘薯花色苷的提取效率较高,以柠檬酸溶液为提取剂,紫甘薯花色苷最佳提取条件为:提取次数为两次、提取温度60℃、提取时间1小时(第二次30min)、柠檬酸浓度2%、液固比40∶1,在此条件下进行紫甘薯花色苷的提取,得紫甘薯花色苷溶液色价为0.8013,花色苷提取率为93.9%。在进行酶解助紫甘薯花色苷提取研究发现:果胶酶不适用于紫甘薯花色苷的提取中,纤维素酶助紫甘薯花色苷提取的最佳酶解条件为:pH值4.5,酶解温度35℃,加酶量0.1%,底物浓度1∶5,酶解时间30min。紫甘薯花色苷粗提液经由100nm超滤膜过滤后杂质含量下降,花色苷含量得到提高,杂质的去除率达38%,花色苷的截流率为27.49%,花色苷含量由原来的32mg/g提高至37.42 mg/g。紫甘薯花色苷稳定性研究结果表明:紫甘薯花色苷在酸性条件下较稳定,并随着pH值上升花色苷稳定性先下降后上升,在pH 5时,稳定性最差。紫甘薯花色苷对温度敏感,温度越高对花色苷的破坏越大;在卫生允许范围内,限量金属离子:Pb2+对紫甘薯花色苷能起到一定稳定作用:Cu2+对紫甘薯花色苷具有增色作用;Fe3+对紫甘薯花色具有保护和破坏双重作用,总体看保护作用大于破坏作用;还原剂D—异抗坏血酸钠对紫甘薯花色苷有很大的保护作用;漂白剂亚硫酸钠和护色剂亚硝酸钠对紫甘薯花色具有破坏作用,甚至起漂白作用;防腐剂苯甲酸钠对紫甘薯花色苷稳定性没有不良影响。

全文目录


摘要  3-5
Abstract  5-7
目录  7-12
第1章 引言  12-27
  1.1 花色苷的概况  12-14
    1.1.1 花色苷来源  12-13
    1.1.2 花色苷的结构  13-14
  1.2 紫甘薯花色苷研究现状  14-22
    1.2.1 紫甘薯花色苷的提取  14-15
    1.2.2 紫甘薯花色苷的纯化  15-16
    1.2.3 紫甘薯花色苷组分及结构分析  16-17
    1.2.4 紫甘薯花色苷的功能性质  17-19
      1.2.4.1 抗氧化作用  17-18
      1.2.4.2 减轻肝功能障碍  18
      1.2.4.3 抗肿瘤功能  18
      1.2.4.4 抗突变活性  18-19
      1.2.4.5 紫甘薯花色苷的抗高血糖功能  19
    1.2.5 紫甘薯花色苷的定量分析  19-20
    1.2.6 紫甘薯花色苷研究开发意义  20-22
      1.2.6.1 紫甘薯花色苷开发的资源优势  21
      1.2.6.2 紫甘薯花色苷在色素中的优势  21-22
  1.3 膜分离技术在食品及医药行业中的应用概况  22-26
    1.3.1 膜的概述  22
    1.3.2 膜的分类  22-23
    1.3.3 膜反应的基本原理  23
    1.3.4 膜分离技术特点  23-24
    1.3.5 膜在分离纯化天然产物方面的应用  24
    1.3.6 膜分离技术用于食品工业中的应用概况  24-25
    1.3.7 在医药方面的应用  25-26
  1.4 本论文研究内容  26-27
第2章 紫甘薯花色苷检测方法的研究  27-39
  2.1 材料与仪器  27-28
    2.1.1 实验材料  27
    2.1.2 实验仪器和设备  27-28
  2.2 实验内容  28-31
    2.2.1 检测原理  28-29
    2.2.2 花色苷溶液的制备  29
    2.2.3 紫甘薯花色苷定量分析pH值的选择  29-30
    2.2.4 紫甘薯花色苷定量分析测定波长的选择  30
    2.2.5 紫甘薯花色苷吸光度线性范围的确定  30
    2.2.6 漂白剂浓度的确定  30
    2.2.7 漂白时间的确定  30-31
    2.2.8 苋菜红标准曲线的绘制  31
  2.3 结果与讨论  31-37
    2.3.1 紫甘薯花色苷定量分析pH值的确定  31-33
    2.3.2 紫甘薯花色苷紫外可见吸收光谱  33-34
    2.3.3 紫甘薯花色苷吸光度线性范围确定  34-35
    2.3.4 漂白剂用量的确定  35-36
    2.3.5 漂白时间的确定  36
    2.3.6 苋菜红标准曲线的绘制  36-37
  2.4 小结  37-39
第3章 紫甘薯花色苷提取工艺研究  39-53
  3.1 材料与仪器  39
    3.1.1 实验材料  39
    3.1.2 实验设备与仪器  39
  3.2 实验内容  39-42
    3.2.1 提取次数的选择  39-40
    3.2.2 提取剂的选择  40
    3.2.3 提取条件确定  40-41
      3.2.3.1 正交实验  41
      3.2.3.2 单因素实验  41
    3.2.4 检测方法  41-42
  3.3 结果与讨论  42-51
    3.3.1 提取次数的确定  42-43
    3.3.2 提取剂的选择  43-45
    3.3.3 提取条件确定  45-51
      3.3.3.1 正交实验  45-47
      3.3.3.2 单因素实验  47-51
        3.3.3.2.1 温度的影响  47-48
        3.3.3.2.2 提取时间的影响  48-49
        3.3.3.2.3 柠檬酸浓度的影响  49-50
        3.3.3.2.4 液固比的影响  50-51
  3.4 小结  51-53
第4章 酶解助紫甘薯花色苷提取研究  53-67
  4.1 材料与仪器  53-54
    4.1.1 实验材料  53-54
    4.1.2 实验设备与仪器  54
  4.2 实验内容  54-56
    4.2.1 缓冲溶液的制备  54
    4.2.2 纤维素酶助提取酶解条件研究  54-55
      4.2.2.1 正交实验  55
      4.2.2.2 单因素实验  55
    4.2.3 果胶酶助提取酶解条件研究  55-56
      4.2.3.1 正交实验  55-56
    4.2.4 检测方法  56
  4.3 结果与讨论  56-65
    4.3.1 纤维素酶助提取酶解条件研究  56-63
      4.3.1.1 正交实验  56-58
      4.3.1.2 单因素实验  58-63
        4.3.1.2.1 pH值的影响  58-59
        4.3.1.2.2 时间的影响  59-60
        4.3.1.2.3 温度的影响  60-61
        4.3.1.2.4 底物浓度的影响  61-62
        4.3.1.2.5 酶用量的影响  62-63
    4.3.2 果胶酶酶助提取酶解条件研究  63-65
      4.3.2.1 正交实验  63-65
  4.4 小结  65-67
第5章 膜分离纯化紫甘薯花色苷研究  67-73
  5.1 材料与仪器  67-68
    5.1.1 实验材料  67
    5.1.2 实验仪器和设备  67-68
  5.2 实验内容  68-69
    5.2.1 花色苷溶液的制备  68
    5.2.2 膜通量的测定  68
    5.2.3 紫甘薯花色苷的截留率及杂质去除率  68-69
  5.3 结果与讨论  69-72
    5.3.1 膜通量的测定  69-70
    5.3.2 母液固形物含量对膜通量的影响  70
    5.3.3 紫甘薯花色苷截留率及杂质去除率的检测  70-71
    5.3.4 膜过滤对花色苷溶液成分的影响  71-72
  5.4 小结  72-73
第6章 加工过程中紫甘薯花色苷稳定性研究  73-87
  6.1 材料与方法  73
    6.1.1 实验材料  73
    6.1.2 实验仪器和设备  73
  6.2 实验内容  73-76
    6.2.1 花色苷溶液的制备  73-74
    6.2.2 缓冲溶液的配制  74
    6.2.3 检测方法  74
    6.2.4 pH值对紫甘薯花色苷稳定性的影响  74
    6.2.5 温度对紫甘薯花色苷稳定性的影响  74-75
    6.2.6 Pb~(2+)对紫甘薯花色苷稳定性的影响  75
    6.2.7 Cu~(2+)对紫甘薯花色苷稳定性的影响  75
    6.2.8 Fe~(3+)对紫甘薯花色苷稳定性的影响  75
    6.2.9 添加剂D-异抗坏血酸钠对紫甘薯花色苷稳定性的影响  75-76
    6.2.10 Na_2SO_3对紫甘薯花色苷稳定性的影响  76
    6.2.11 苯甲酸钠对紫甘薯花色苷稳定性的影响  76
    6.2.12 NaNO+2对紫甘薯花色苷稳定性的影响  76
  6.3 结果与讨论  76-86
    6.3.1 pH值对紫甘薯花色苷稳定性的影响  76-79
      6.3.1.1 pH值对紫甘薯花色苷吸光特性的影响  76-77
      6.3.1.2 pH值对紫甘薯花色苷溶液颜色的影响  77-78
      6.3.1.3 pH值对紫甘薯花色苷稳定性的影响  78-79
    6.3.2 温度对紫甘薯花色苷稳定性的影响  79-80
    6.3.3 Pb~(2+)对紫甘薯花色苷稳定性影响  80-81
    6.3.4 Cu~(2+)对紫甘薯花色苷稳定性影响  81-82
    6.3.5 Fe~(3+)对紫甘薯花色苷稳定性影响  82-83
    6.3.6 D-异抗坏血酸钠对紫甘薯花色苷稳定性影响  83-84
    6.3.7 Na_2SO_3对紫甘薯花色苷稳定性影响  84-85
    6.3.8 苯甲酸钠对紫甘薯花色苷稳定性的影响  85
    6.3.9 NaNO_2对紫甘薯花色苷稳定性影响  85-86
  6.4 小结  86-87
第7章 结论与展望  87-90
  7.1 结论  87-88
  7.2 创新  88-89
  7.3 进一步工作的方向  89-90
致谢  90-91
参考文献  91-95
攻读学位期间的研究成果  95

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中图分类: > 工业技术 > 化学工业 > 其他化学工业 > 农产物化学加工工业 > 化学加工过程及设备 > 农产物化学加工
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