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核黄素生物合成抑制剂产生菌的筛选及研究
作 者: 姚青青
导 师: 裘娟萍;黄海婵
学 校: 浙江工业大学
专 业: 微生物学
关键词: 核黄素 生物合成抑制剂 活体筛选 假丝酵母 菌种鉴定
分类号: TQ460.1
类 型: 硕士论文
年 份: 2011年
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内容摘要
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核黄素(riboflavin)是辅因子FAD和FMN的前体物,人和动物除肠道细菌能少量合成外需从食物中获取,而许多微生物如革兰氏阴性致病细菌、病原酵母由于缺乏有效摄取体系,依赖自身内源合成。因此核黄素的生物合成可作为抑菌物质筛选新靶标。本研究旨在从土壤中活体筛选出能抑制核黄素生物合成的菌株,体外验证其抑制性能并进行菌种鉴定,确定活性物质合成的最优培养基和最优发酵条件,研究结果如下:(1)采用活体筛选模型,以核黄素产生菌假丝酵母(Candida famata)为指示菌,琼脂移块法初筛,管碟法和摇瓶发酵法复筛,获得一株能抑制假丝酵母核黄素合成的菌株Q210,对单位菌体量酵母的核黄素合成抑制率达57.63%。(2)构建假丝酵母核黄素体外酶合成反应体系,对菌株Q210抑制核黄素合成进行体外验证,结果显示菌株Q210活性产物对核黄素合成抑制率达93.62%。对该体系反应条件进行优化:酵母粗酶液最适反应温度为29℃,最适反应时间为30 min,置-30℃冰箱可储存45 d,酶活力保持在91.75%以上。(3)对菌株Q210进行形态、生理生化研究,结合16S rDNA序列分析,确定该菌为Bacillus subtilis。(4)对菌株Q210活性产物的理化性质进行研究。研究表明,该活性物质为胞内水溶性产物,在20℃~90℃及pH 2~12范围内能较稳定存在,置4℃冰箱可保存10天活性基本不变。蛋白酶K试验显示活性物质为多肽类或蛋白类物质。(5)对菌株Q210的基础发酵培养基和发酵条件进行研究。结果发现:菌株Q210最佳基础发酵培养基为改良碱性PDA培养基,最佳发酵时间为4 d,发酵条件正交试验优化结果为菌龄为60 h、装液量为40 mL、发酵初始pH为8.0和接种量为2%。
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全文目录
摘要 4-6 ABSTRACT 6-16 第一章 文献综述 16-33 1.1 核黄素生物合成途径及关键酶 16-18 1.2 关键酶的催化机制 18-19 1.2.1 LS 的催化机制 18 1.2.2 RS 的催化机制 18-19 1.3 关键酶的晶体结构 19-20 1.3.1 LS 的晶体结构 19-20 1.3.2 RS 的晶体结构 20 1.4 核黄素生物合成关键酶抑制剂的筛选模式 20-22 1.4.1 底物参与反应的高通量筛选法 20-21 1.4.2 以酶亲和力特性为基础的无底物参与的高通量筛选法 21-22 1.4.3 高通量筛选法的优缺点 22 1.5 近十年国内外核黄素生物合成关键酶抑制剂的研究进展 22-27 1.5.1 ARAP 结构类似物 22-24 1.5.2 LS 反应中间体类似物 24-25 1.5.3 lumazine 类似物 25-26 1.5.4 无结构相似性化合物 26-27 1.6 论文选题意义及主要内容 27-29 参考文献 29-33 第二章 核黄素生物合成抑制剂产生菌的活体筛选 33-48 2.1 前言 33-34 2.2 材料与方法 34-40 2.2.1 土样来源 34-35 2.2.2 菌株 35 2.2.3 主要仪器设备 35-36 2.2.4 主要药品与试剂 36 2.2.5 培养基 36-37 2.2.6 假丝酵母的斜面培养 37 2.2.7 假丝酵母的种子培养 37-38 2.2.8 假丝酵母的发酵培养 38 2.2.9 假丝酵母菌体的收集与洗涤 38 2.2.10 核黄素标准溶液的配制 38 2.2.11 土壤稀释液的制备 38 2.2.12 土壤微生物的分离 38 2.2.13 核黄素生物合成抑制剂产生菌的初筛方法 38-39 2.2.13.1 24 孔板琼脂移块法 38-39 2.2.13.2 平板琼脂移块法 39 2.2.14 核黄素生物合成抑制剂产生菌的复筛方法 39-40 2.2.14.1 发酵液预处理 39 2.2.14.2 管碟法 39 2.2.14.3 摇瓶发酵法 39-40 2.2.15 发酵液菌体浓度和核黄素含量测定方法 40 2.2.16 核黄素含量荧光测定法 40 2.3 结果与讨论 40-46 2.3.1 假丝酵母利用外源核黄素能力的研究 40-42 2.3.2 核黄素生物合成抑制剂产生菌的初筛 42-43 2.3.3 核黄素生物合成抑制剂产生菌的复筛 43-46 2.3.3.1 管碟法复筛 43-44 2.3.3.2 摇瓶发酵复筛核黄素合成抑制剂产生菌 44-46 2.4 本章小结 46 参考文献 46-48 第三章 核黄素体外酶合成反应体系的构建 48-60 3.1 前言 48 3.2 材料与方法 48-51 3.2.1 菌株 48-49 3.2.2 主要仪器 49 3.2.3 主要药品与试剂 49 3.2.4 假丝酵母培养基 49-50 3.2.5 假丝酵母的培养 50 3.2.6 假丝酵母粗酶液的提取 50 3.2.6.1 菌体的收集和洗涤 50 3.2.6.2 菌体的破碎 50 3.2.7 荧光法检测核黄素浓度标准曲线绘制 50-51 3.3 结果与讨论 51-58 3.3.1 荧光法检测核黄素浓度标准曲线绘制 51 3.3.2 核黄素体外酶合成反应体系的构建 51-54 3.3.2.1 反应体系中底物浓度的确定 51-52 3.3.2.2 假丝酵母粗酶液的提取 52 3.3.2.3 反应体系的构建 52-54 3.3.3 体外酶反应条件的研究 54-56 3.3.3.1 反应时间对体外酶合成核黄素的影响 54 3.3.3.2 反应温度对体外酶合成核黄素的影响 54-55 3.3.3.3 粗酶液储存时间对体外酶合成核黄素的影响 55-56 3.3.4 菌株Q210 活性产物对酵母粗酶液体外合成核黄素的影响 56-58 3.3.4.1 活性物质对核黄素的影响 56-57 3.3.4.2 活性物质对酵母粗酶液体外合成核黄素的影响 57-58 3.4 本章小结 58-59 参考文献 59-60 第四章 菌株Q210 的分类鉴定 60-75 4.1 前言 60 4.2 材料与方法 60-68 4.2.1 菌株 60-61 4.2.2 主要仪器设备 61 4.2.3 主要药品与试剂 61-62 4.2.4 培养基 62-64 4.2.5 菌株Q210 的斜面培养 64 4.2.6 菌株Q210 的种子培养 64 4.2.7 16S rDNA 鉴定 64-66 4.2.8 传统鉴定 66-68 4.2.8.1 形态观察 66-67 4.2.8.2 生理生化鉴定 67-68 4.3 结果与讨论 68-73 4.3.1 菌株Q210 16S rDNA 测序结果 68-69 4.3.2 16S rDNA 序列对比及系统进化树的构建 69-70 4.3.3 菌株Q210 的传统鉴定 70-73 4.3.3.1 形态观察 70-73 4.3.3.2 生理生化性状 73 4.4 本章小结 73-74 参考文献 74-75 第五章 菌株Q210 活性产物理化性质的研究 75-86 5.1 前言 75 5.2 材料与方法 75-79 5.2.1 菌种 75-76 5.2.2 主要仪器 76 5.2.3 主要药品 76 5.2.4 主要试剂 76-77 5.2.5 培养基 77 5.2.6 假丝酵母的培养 77 5.2.7 菌株Q210 的种子培养 77 5.2.8 菌株Q210 的发酵培养 77-78 5.2.9 发酵上清滤液的制备 78 5.2.10 菌体破碎上清滤液的制备 78 5.2.11 活性物质测定方法 78 5.2.11.1 管碟法 78 5.2.11.2 摇瓶发酵法 78 5.2.11.3 体外酶反应检测法 78 5.2.12 发酵液菌体浓度和核黄素含量测定方法 78-79 5.3 结果与讨论 79-84 5.3.1 活性物质存在位置的研究 79 5.3.2 活性物质的极性试验 79-80 5.3.3 活性物质的热稳定性试验 80-81 5.3.4 活性物质的酸碱稳定性试验 81-82 5.3.5 活性物质对蛋白酶K 的敏感性试验 82-83 5.3.6 冰箱储存时间对活性物质稳定性的影响 83 5.3.7 活性物质的硫酸铵盐析 83-84 5.4 本章小结 84 参考文献 84-86 第六章 菌株Q210 发酵条件的研究 86-94 6.1 前言 86-87 6.2 材料与方法 87-89 6.2.1 菌种来源 87 6.2.2 主要仪器 87 6.2.3 主要药品与试剂 87 6.2.4 培养基 87-88 6.2.5 假丝酵母的种子培养 88-89 6.2.6 菌株Q210 的种子培养 89 6.2.7 菌株Q210 的发酵培养 89 6.2.8 活性物质的体外酶反应检测法 89 6.3 结果与分析 89-93 6.3.1 Q210 发酵培养基的研究 89-91 6.3.1.1 培养基对菌株Q210 生长情况及菌落形态的影响 89-90 6.3.1.2 培养基对Q210 活性产物合成的影响 90-91 6.3.2 发酵时间对 Q210 活性产物合成的影响 91 6.3.3 Q210 菌株发酵条件的正交试验结果 91-93 6.3.4 正交试验验证结果 93 6.4 本章小结 93-94 参考文献 94-95 第七章 总结与展望 95-97 致谢 97-98 攻读学位期间发表的学术论文目录 98
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中图分类: > 工业技术 > 化学工业 > 制药化学工业 > 一般性问题 > 基础理论
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