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生物法合成辛伐他汀
作 者: 朱丽平
导 师: 任宇红
学 校: 华东理工大学
专 业: 微生物与生化药学
关键词: 辛伐他汀 酰基转移酶LovD 发酵条件 生物催化条件
分类号: R914
类 型: 硕士论文
年 份: 2011年
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内容摘要
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辛伐他汀是一种重要的降血脂药物,可经洛伐他汀合成。辛伐他汀能够显著降低心血管疾病或冠心病的发病率和死亡率,其毒副作用小,药物耐受性好,是降低体内胆固醇的首选药物之一。传统的生产工艺以洛伐他汀为原料,经化学法合成得到辛伐他汀;随着现代生物学的发展,辛伐他汀的生物合成受到越来越多的重视。本研究中,通过诱导E.coli工程菌种合成酰基转移酶LovD,催化DMB-S-MMP (alpha-dimethylbutyryl-S-methyl-merca-ptopropionate)及洛伐他汀水解产物Monacolin J进行转酰基作用,从而经一步生物催化合成得到辛伐他汀。通过对E.coli工程菌种发酵培养基和发酵条件进行优化,确定该菌株的适宜产酶条件为:接种量为4%,诱导起始菌浓为0.7(OD 600),IPTG浓度为0.2 mmol/L,在20℃下诱导20h。经优化后,酰基转移酶LovD的表达水平为100mg/L;酶活为263U/L,同优化前使用LB培养基相比,提高了将近5倍。在此基础上,对经发酵所得粗酶液的生物催化条件进行优化,确定最佳催化条件为:用pH为9.0的HEPES缓冲液重悬发酵所得菌体,在超声破碎并离心后得到粗酶液中加入底物Monacolin J和DMB-S-MMP,其终浓度分别为3 mmol/L和6 mmol/L; 25℃,200 r/min催化反应24 h。所得辛伐他汀浓度为1.3 g/L,产率为90.1%。本文从生物学角度出发,由洛伐他汀水解得到Monaconlin J,再利用LovD催化转酰基反应便可以得到辛伐他汀,有利于辛伐他汀的生物合成研究。
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全文目录
摘要 5-6 Abstract 6-11 第一章 综述与导言 11-24 1.1 概述 11 1.2 降血脂药物研究概况 11-12 1.2.1 他汀类 11-12 1.2.2 烟酸类 12 1.2.3 胆固醇吸收抑制剂 12 1.3 辛伐他汀产品简介与市场销售情况 12-13 1.3.1 辛伐他汀产品简介 12-13 1.3.2 辛伐他汀的市场销售情 13 1.4 辛伐他汀药理概述 13-15 1.4.1 药代动力学 13 1.4.2 药理作用 13-15 1.4.3 临床应用 15 1.5 辛伐他汀的合成概述 15-18 1.5.1 间接甲基化法 15-17 1.5.2 直接甲基化法 17 1.5.3 Monacolin J与侧链2,2-二甲基丁酰氯合成法 17-18 1.6 微生物转化的研究进展 18-23 1.6.1 概述 18 1.6.2 微生物转化反应的特点 18-19 1.6.3 微生物转化反应的影响因素 19 1.6.4 微生物转化的主要方法 19-20 1.6.5 他汀类药物的微生物转化 20-23 1.7 本课题的研究背景与意义 23-24 第二章 材料与方法 24-32 2.1 实验材料 24-28 2.1.1 菌种 24 2.1.2 培养基 24-25 2.1.3 常用试剂及耗材 25-27 2.1.4 常用仪器与设备 27-28 2.2 主要试剂的配制方法 28-29 2.3 常用实验方法 29-32 第三章 Monacolin J和DMB-S-MMP合成 32-36 3.1 引言 32 3.2 实验材料与仪器 32 3.3 实验方法 32-34 3.3.1 Monacolin J钠盐的制备 32-33 3.3.2 DMB-S-MMP的制备 33-34 3.3.3 Monacolin J和DMB-S-MMP的结构确认 34 3.4 结果与讨论 34-35 3.4.1 Monacolin J钠盐的制备 34-35 3.4.2 DMB-S-MMP的制备 35 3.5 小结 35-36 第四章 酰基转移酶LovD的发酵条件优化 36-48 4.1 引言 36 4.2 实验材料与仪器 36-38 4.3 实验方法 38-41 4.3.1 种子液的制备 38 4.3.2 辛伐他汀钠盐溶液的制备 38 4.3.3 酰基转移酶LovD发酵条件的优化 38-39 4.3.4 粗酶液的制备 39 4.3.5 酰基转移酶LovD表达检测和含量测定 39-40 4.3.6 酰基转移酶LovD酶活测定方法 40-41 4.4 结果与讨论 41-47 4.4.1 酰基转移酶LovD表达 41-42 4.4.2 酰基转移酶LovD发酵条件的优化 42-47 4.4.2.1 发酵培养基的确定 42-43 4.4.2.2 诱导温度的确定 43 4.4.2.3 接种量的确定 43-44 4.4.2.4 装液量的确定 44-45 4.4.2.5 诱导起始菌浓的确定 45-46 4.4.2.6 IPTG浓度的确定 46-47 4.4.2.7 诱导总时间的确定 47 4.3 小结 47-48 第五章 辛伐他汀的生物转化条件优化 48-59 5.1 引言 48 5.2 实验材料与仪器 48 5.3 实验方法 48-51 5.3.1 种子液的制备 48 5.3.2 摇瓶发酵培养 48 5.3.3 粗酶液的制备 48 5.3.4 辛伐他汀钠盐溶液的制备 48-49 5.3.5 静息细胞的制备 49 5.3.6 辛伐他汀含量测定与产率计算 49 5.3.7 辛伐他汀的生物转化条件优化 49-51 5.4 结果与讨论 51-58 5.4.1 辛伐他汀标准曲线的绘制 51 5.4.2 辛伐他汀生物转化条件优化 51-58 5.4.2.1 辛伐他汀的生长转化、静息细胞转化和粗酶液转化 51-52 5.4.2.2 底物Monacolin J浓度对辛伐他汀产率和产量的影响 52-53 5.4.2.3 温度对辛伐他汀产率的影响 53 5.4.2.4 pH对辛伐他汀产率的影响 53-54 5.4.2.5 缓冲液种类对辛伐他汀产率的影响 54-55 5.4.2.6 DMSO对辛伐他汀产率的影响 55-56 5.4.2.7 转化时间对辛伐他汀产率的影响 56-58 5.5 小结 58-59 第六章 结论与展望 59-61 6.1 结论 59 6.2 展望及存在问题 59-61 参考文献 61-66 致谢 66
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中图分类: > 医药、卫生 > 药学 > 药物基础科学 > 药物化学
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