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微生物转化法制备普瑞巴林手性中间体
作 者: 吴薇
导 师: 杨立荣;吴坚平
学 校: 浙江大学
专 业: 生物化工
关键词: 普瑞巴林 (S)-2-羧乙基-3-氰基-5-甲基已酸乙酯 假单胞菌 对映选择性 静息细胞
分类号: TQ463
类 型: 硕士论文
年 份: 2011年
下 载: 111次
引 用: 1次
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内容摘要
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普瑞巴林(Pregabalin),(S)-3-氨甲基-5-甲基己酸,是一种用于抗神经痛和癫痫症的辅助治疗的手性药物,其国际市场需求呈现较快增长之势。开展生物催化法制备普瑞巴林的研究,筛选拆分制备普瑞巴林的微生物,具有重要的应用前景和价值。(S)-2-羧乙基-3-氰基-5-甲基己酸乙酯((S)-CCMAE)是合成普瑞巴林的关键手性中间体。本文首先以外消旋体2-羧乙基-3-氰基-5-甲基己酸乙酯(CCMAE)为底物,从土壤中筛选得到一株具有自主知识产权的能够对映选择性水解(R)-CCMAE的假单胞菌(Pseudomonas) CGMCC No.4184。对其产酶条件及培养基进行了优化,使酶活从15.92 U/L提高到33.43 U/L。随后对假单胞菌CGMCCNo.4184静息细胞水解拆分底物的反应条件进行了研究,确定了较优反应条件为:30~35℃,pH 7.5-8.5。并成功利用微生物静息细胞转化法制备了ee值达99.8%的(S)-CCMAE,这与目前报道的生物拆分工艺均有所不同。研究还发现Tween-80和TritonX-100可明显提高对映选择率E值和酶活。最后利用海藻酸钠-PVA复合载体法制备了假单胞菌CGMCC No.4184的固定化细胞,对其技术参数和反应条件作了优化,并利用所制得的固定化细胞制备ee值99%以上的(S)-CCMAE。该固定化细胞能够较好地进行重复利用。本研究中筛选获得的高选择性R型水解酶可能是一种新酶,后续的基因克隆和表达、酶学性质研究工作正在进行中,为进一步改善酶的催化性能和拓展应用范围打下了良好的基础。
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全文目录
致谢 6-7 摘要 7-8 ABSTRACT 8-12 第一章 文献综述 12-28 1.1 绪论 12-14 1.1.1 普瑞巴林 12 1.1.2 普瑞巴林的市场前景 12-14 1.2 国内外研究进展 14-23 1.2.1 不对称合成法 14-17 1.2.2 外消旋体拆分法 17-22 1.2.3 普瑞巴林制备方法的比较 22-23 1.3 本课题的研究意义 23-24 1.4 本课题的研究意义 24-25 1.5 本课题的研究思路和内容 25-28 第二章 选择性水解CCMAE菌种的筛选及鉴定 28-40 2.1 前言 28 2.2 实验材料 28-30 2.2.1 土壤样品来源 28 2.2.2 培养基 28-29 2.2.3 试剂 29 2.2.4 仪器 29-30 2.3 菌种筛选 30-31 2.3.1 筛选方法 30 2.3.2 土样采集 30 2.3.3 富集培养 30-31 2.3.4 菌种的分离纯化 31 2.3.5 菌种初筛 31 2.3.6 菌种复筛 31 2.4 菌株鉴定 31-32 2.5 分析及计算方法 32-33 2.5.1 分析方法 32-33 2.5.2 转化率、ee值和对映体选择率E的计算方法 33 2.6 结果与讨论 33-37 2.6.1 菌株筛选结果 33-35 2.6.2 菌株鉴定结果 35-37 2.7 本章小结 37-40 第三章 菌株产酶条件的优化 40-50 3.1 前言 40 3.2 材料与方法 40-42 3.2.1 培养基组成 40 3.2.2 仪器试剂 40 3.2.3 培养条件 40 3.2.4 有效产酶部位的确定 40-41 3.2.5 酶活定义及测定 41 3.2.6 产酶条件优化 41-42 3.2.7 静息细胞转化底物 42 3.3 结果与讨论 42-49 3.3.1 有效产酶部位的确定 42-43 3.3.2 温度与初始pH对产酶的影响 43-44 3.3.3 不同碳源、氮源和金属离子对产酶的影响 44-45 3.3.4 Plackett-Burman试验 45 3.3.5 最陡爬坡试验 45-46 3.3.6 响应面法优化产酶条件 46-47 3.3.7 优化后假单胞菌CGMCC No.4184的生长-产酶曲线 47-48 3.3.8 静息细胞法拆分底物CCMAE的初步研究 48-49 3.4 本章小结 49-50 第四章 目标菌选择性水解CCMAE反应条件的研究 50-60 4.1 前言 50 4.2 材料与方法 50-52 4.2.1 培养基组成 50-51 4.2.2 仪器试剂 51 4.2.3 培养条件 51 4.2.4 静息细胞法转化底物 51 4.2.5 酶活定义及测定 51-52 4.3 结果与讨论 52-58 4.3.1 温度和pH对拆分效果的影响 52-53 4.3.2 不同表面活性剂剂和共溶剂对拆分效果的影响 53-55 4.3.3 不同底物浓度对拆分效果的影响 55-56 4.3.4 游离细胞稳定性研究 56-58 4.4 本章小结 58-60 第五章 固定化细胞拆分CCMAE的初步研究 60-76 5.1 前言 60-62 5.2 材料与方法 62-64 5.2.1 培养基组成 62 5.2.2 仪器试剂 62 5.2.3 培养条件 62 5.2.4 固定化细胞制备方法 62-63 5.2.5 酶活测定 63-64 5.2.6 机械强度测定 64 5.3 结果与讨论 64-74 5.3.1 不同固定化方法的比较 64-65 5.3.2 游离细胞与固定化细胞的比较 65-66 5.3.3 海藻酸钙-PVA复合载体制备固定化细胞的条件优化 66-71 5.3.4 固定化细胞转化条件的初步优化 71-74 5.3.5 固定化细胞的反复批式试验 74 5.4 本章小结 74-76 第六章 结论与展望 76-78 6.1 结论 76-77 6.2 建议 77-78 参考文献 78-88 作者简历 88
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中图分类: > 工业技术 > 化学工业 > 制药化学工业 > 有机化合物药物的生产
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