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山羊关节炎脑炎病毒分子检测技术研究
作 者: 孙跃辉
导 师: 黄金海
学 校: 天津大学
专 业: 食品科学
关键词: 山羊关节炎脑炎病毒 基因组 环介导等温扩增技术 P25蛋白 免疫印迹 酶联免疫吸附试验
分类号: S858.27
类 型: 硕士论文
年 份: 2010年
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内容摘要
由山羊关节炎脑炎病毒(CAEV)引发的山羊关节炎脑炎(CAE)是世界养羊业中破坏力最强、经济学意义最重要的病毒性传染病。本研究对CAEV89-GB1026株进行了全基因组克隆和序列测定,分析了CAEV的分子特性;应用环介导等温扩增技术,建立了CAEV快速检测方法;同时通过构建衣壳蛋白P25的原核表达载体,获得高纯度的重组表达蛋白,初步建立了CAEV感染羊抗体监测的ELISA方法。采用PCR的方法,扩增出覆盖CAEV全基因组的5个cDNA片段,分别将其克隆到pGEM-T easy载体,经序列测定、拼接获得了CAEV89-GB1026株的全基因组序列。该毒株基因组全长9065nt,包括一段453nt的5’LTR、3个结构基因(gag、pol和env)、2个调节蛋白编码基因(rev和tat)、1个辅助蛋白编码基因(vif)和一段308nt的3’LTR。序列比较结果显示,该毒株与甘肃分离株相似性为99.6%,与意大利分离毒株的相似性仅为73.0%~73.5%。依据gag基因对国内外分离株同源关系分析表明,该毒株属于小反刍动物慢病毒B亚群B2亚型,Gag蛋白中存在多个与MVV相同的抗原表位。在p25基因的高保守区设计了5条引物,应用LAMP扩增技术建立了CAEV快速检测方法。采用LAMP实时浊度仪对扩增反应进行检测,可在36min内检测数个拷贝的质粒,灵敏度相当常规PCR的100倍。分别应用琼脂糖凝胶扩散实验(AGID)、常规PCR和LAMP对68份临床样品进行了检测,阳性率分别为38.2%, 41.2%和50%。该方法可用于细胞培养物、感病动物全血和外周血淋巴细胞中CAEV原病毒DNA的特异性检测。应用生物信息学方法对衣壳蛋白P25和P25融合蛋白的生化特性进行分析,设计了不同的原核表达载体。将p25基因克隆至原核表达载体pGEX-6P-1,在E.coli BL21细胞中可溶性表达,经GST亲和层析获得重组蛋白GST-P25。将p25基因克隆至原核表达载体pET28a,将重组质粒转化E.coli BL21(DE3)诱导表达,通过包涵体变性、复性的方法获得重组蛋白His-P25。应用免疫印迹两种重组蛋白的抗原性进行分析,重组蛋白可与CAEV阳性血清特异性地结合,表明重组蛋白具有良好的抗原性,并以His-P25为抗原,建立了检测CAEV抗体的间接ELISA。
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全文目录
中文摘要 3-4 ABSTRACT 4-10 第一章 文献综述:山羊关节炎脑炎病毒研究进展 10-31 1.1 历史与现状 10-11 1.2 病原学 11-18 1.2.1 分类地位和形态学特征 11 1.2.2 理化与生物学特征 11-12 1.2.3 病毒的生物学周期 12-13 1.2.4 CAEV 的分子生物学特征 13-18 1.3 流行病学特点 18-20 1.3.1 易感动物 18-19 1.3.2 传播途径 19 1.3.3 流行特点及其影响因素 19 1.3.4 流行情况 19-20 1.4 致病性 20-22 1.4.1 临床症状 20-21 1.4.2 组织病理变化 21 1.4.3 致病机理 21-22 1.5 免疫特性 22-24 1.6 诊断 24-28 1.6.1 初步诊断 24-25 1.6.2 病毒的分离与鉴定 25 1.6.3 病原的检测技术研究进展 25-26 1.6.4 抗体检测技术研究进展 26-28 1.6.5 鉴别诊断 28 1.7 防治 28-29 1.7.1 加强引种管理 28 1.7.2 加强饲养管理 28-29 1.8 公共卫生学意义 29-30 1.8.1 CAEV 与食品安全 29 1.8.2 CAEV 与HIV 29-30 1.9 存在的问题 30 1.10 研究的目的与意义 30-31 第二章 CAEV89-GB1026 株全基因组序列测定与分子特性分析 31-65 2.1 实验材料 31-35 2.1.1 毒株 31 2.1.2 载体与菌株 31 2.1.3 主要试剂 31 2.1.4 细胞培养所用溶液及其配制 31-32 2.1.5 DNA 提取用试剂及配制 32-33 2.1.6 大肠杆菌感受态细胞制备及转化、诱导用溶液 33 2.1.7 质粒DNA 小量提取用溶液 33-34 2.1.8 琼脂糖凝胶电泳所用溶液 34 2.1.9 分析用序列 34-35 2.2 方法 35-40 2.2.1 胎山羊滑膜(GSM)细胞的培养及传代 35-36 2.2.2 CAEV 的增殖 36 2.2.3 CAEV 感染的GSM 细胞中总DNA 的提取 36 2.2.4 引物设计 36-37 2.2.5 CAEV 全基因组片段的PCR 扩增 37 2.2.6 目的片段的纯化与回收 37-38 2.2.7 PCR 产物的克隆与序列测定 38-40 2.2.8 序列的拼接与分析 40 2.3 结果与分析 40-62 2.3.1 CAEV 的增殖 40-41 2.3.2 CAEV89-GB1026 全基因组序列的克隆 41 2.3.3 CAEV89-GB1026 全基因组序列解析 41-42 2.3.4 5’-LTR 分析 42-44 2.3.5 结构蛋白分析 44-56 2.3.6 调节蛋白分析 56-59 2.3.7 3’-LTR 分析 59-60 2.3.8 同源性分析 60-62 2.4 讨论 62-64 2.4.1 CAEV 全基因组克隆和分析 62-63 2.4.2 遗传进化分析 63-64 2.5 小结 64-65 第三章 CAEV 环介导等温扩增(LAMP)检测方法的建立 65-77 3.1 材料 65-66 3.1.1 毒株及血清 65 3.1.2 待检样品 65 3.1.3 主要试剂 65-66 3.2 方法 66-69 3.2.1 引物设计 66 3.2.2 检测样品的处理 66-67 3.2.3 琼脂糖凝胶扩散实验 67 3.2.4 DNA 的提取 67 3.2.5 LAMP 反应和结果判定 67-68 3.2.6 LAMP 的灵敏性实验 68 3.2.7 PCR 检测 68-69 3.3 结果 69-75 3.3.1 LAMP 引物的筛选 69-70 3.3.2 LAMP 灵敏性实验 70 3.3.3 LAMP 定量试验 70-71 3.3.4 样品处理方法的确定 71-72 3.3.5 样品检测结果 72-75 3.4 讨论 75-76 3.4.1 CAEV LAMP 检测方法的建立 75 3.4.2 关于LAMP 检测方法 75-76 3.5 小结 76-77 第四章 CAEV 衣壳蛋白P25 的原核表达与纯化 77-95 4.1 材料 77-80 4.1.1 载体与菌株 77 4.1.2 主要试剂 77-80 4.2 方法 80-86 4.2.1 P25 蛋白特性的生物信息学分析 80 4.2.2 引物的设计与合成 80 4.2.3 P25 原核重组表达载体的构建 80-82 4.2.4 重组表达菌的诱导表达 82 4.2.5 SDS-聚丙烯凝胶电泳 82-83 4.2.6 表达蛋白的纯化 83-84 4.2.7 Western blot 分析 84-85 4.2.8 ELISA 检测方法的初步建立 85-86 4.3 结果 86-92 4.3.1 CAEV P25 蛋白及拟表达重组蛋白的特性分析 86-88 4.3.2 重组表达载体的鉴定 88-89 4.3.3 重组菌的诱导表达和纯化 89-90 4.3.4 重组蛋白的特异性鉴定 90 4.3.5 ELISA 检测方法的初步建立 90-92 4.4 讨论 92-94 4.4.1 衣壳蛋白P25 的重组表达 92-93 4.4.2 CAEV 感染的ELISA 检测方法的建立 93-94 4.5 小结 94-95 第五章 结论 95-96 参考文献 96-107 附录1 缩略词表 107-108 附录2 主要仪器 108-109 附录3 主要生化试剂 109-110 附录4 CAEV89-GB1026(Shanxi)株全基因组解析 110-116 发表论文和科研情况说明 116-117 致谢 117
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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 动物医学(兽医学) > 各种家畜、家禽、野生动物的疾 > 家畜 > 山羊
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