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鸭瘟病毒UL39基因的原核表达、转录与表达时相和亚细胞定位
作 者: 路国富
导 师: 程安春
学 校: 四川农业大学
专 业: 预防兽医学
关键词: 鸭瘟病毒 UL39基因 原核表达 转录及表达时相 亚细胞定位
分类号: S852.65
类 型: 硕士论文
年 份: 2013年
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内容摘要
以本实验室构建的鸭瘟病毒中国强毒株(Duck plague virus Chinese virulent strain, DPV-CHv)基因文库及测序信息为基础,对DPV UL39基因的分子特征进行了分析。根据DPV-CHv UL39基因序列(GenBank登录号为EU071042)设计并合成PCR引物,成功扩增了UL39基因;原核表达并纯化UL39基因编码的蛋白-核糖核苷酸还原酶大亚基(the large subunit of ribonucleotide reductase,R1);制备兔抗R1多克隆抗体;在DPV感染鸭胚成纤维细胞(Duck embryo fibroblast,DEF)中对DPV UL39基因的转录和表达时相、表达产物的定位分布进行了分析。1.鸭瘟病毒UL39基因分子特性分析DPV UL39基因大小为2433bp,编码810aa。该蛋白有4个潜在的糖基化位点,40个潜在的磷酸化修饰位点,无信号肽和跨膜区。与GenBank上20种α疱疹病毒的同源基因进行多序列比对并构建了系统进化树,结果表明:DPV-CHv和α疱疹病毒亚科马立克病毒属(Mardivirus genus)里R1蛋白的亲缘关系最近。2. DPV R1的原核表达及多克隆抗体制备将用高保真酶PCR扩增的UL39基因产物送宝生物工程(大连)有限公司进行T克隆并测序,构建重组质粒pMD20-T-UL39。用BamHI和Hind Ⅲ双酶切pMD20-T-UL39重组质粒,回收纯化目的片段产物,定向插入经BamHI与Hindlll双酶切的pET-32a(+)载体,构建重组表达质粒pET-32a/UL39,转化入Rosetta(DE3),用IPTG诱导表达发现R1蛋白以包涵体形式为主,大小为110kDa左右。对表达条件进行优化,确定最佳条件为终浓度为0.4mmol/L的IPTG在30℃水浴诱导表达6h。采用切胶回收和电透析的方法对R1进行纯化,获得的重组蛋白纯度较高。用纯化蛋白和弗氏佐剂混匀后对家兔进行免疫,制备兔抗DPVR1多克隆抗体,琼脂扩散试验效价达1:16-1:32。3.DPV体外感染DEF后UL39基因转录和表达时相分析通过FQ-PCR对DPV UL39基因在DEF中的转录时相检测结果表明:DPV感染DEF后的转录产物2-4h开始能检测到,36h能检测到的UL39mRNA达到高峰,48h开始下降。采用DNA和蛋白质合成抑制试验研究UL39基因的基因类型。采用Western-blot法对DPV UL39基因表达时相分析,DPV感染3-6h时R1表达量很少,36h时R1的表达量达到高峰。综合分析判断以上试验结果可以推断DPV UL39基因为立即早期基因。4.DPV体外感染DEF后UL39基因产物的定位分析间接免疫荧光法检测DPV感染DEF后R1蛋白在DEF中的定位,发现特异性荧光主要集中在胞核周围。
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全文目录
中文摘要 3-4 ABSTRACT 4-9 第一章 疱疹病毒UL39基因研究进展及选题目的和意义 9-16 一、疱疹病毒UL39基因及其编码蛋白的研究进展 9-15 1 Alpha疱疹病毒的特征和功能 9-13 1.1 Alpha疱疹病毒的特征 9-11 1.2 R1的功能 11-13 1.2.1 R1和R2的相互作用 11 1.2.2 HSV R1独特的N末端域的作用 11-12 1.2.3 R1的抗凋亡功能 12 1.2.4 HSV-1中以UL39为靶基因的siRNA效果 12 1.2.5 PRV和VZV的R1缺失株研究 12-13 1.2.6 R1的其他功能 13 2 Beta疱疹病毒中R1的特征和功能作用 13-14 3 Gamma疱疹病毒中R1的特征和功能作用 14-15 二、选题目的和意义 15-16 第二章 鸭瘟病毒UL39基因的分子特性分析 16-22 1 材料和方法 16-17 1.1 基因序列 16 1.2 方法 16-17 1.2.1 核苷酸序列分子特性分析 17 1.2.2 氨基酸序列分子特性分析 17 1.2.3 稀有密码子分析 17 2 结果 17-21 2.1 DPV UL39基因序列相似性搜索结果 17-18 2.2 根据UL39基因核苷酸序列推导的氨基酸序列分析结果 18 2.3 磷酸化位点预测结果 18-19 2.4 N-糖基化位点预测 19 2.5 跨膜区预测 19 2.6 信号肽切割位点预测 19-20 2.7 R1蛋白亚细胞定位分析结果 20 2.8 DPV UL39基因稀有密码子及Nc值分析 20 2.9 系统进化树分析 20-21 3 讨论 21-22 第三章 鸭瘟病毒UL39基因克隆、原核表达及多克隆抗体的制备 22-30 1 材料 22-23 1.1 试验动物 22 1.2 毒株、菌株、载体和细胞 22 1.3 主要试剂及配制 22-23 1.4 仪器 23 1.5 引物 23 2 实验方法 23-26 2.1 鸭胚成纤维细胞(DEF)的制备 23 2.2 鸭瘟病毒(DPV)的培养 23 2.3 DPV-CHv基因组的提取 23-24 2.4 PCR扩增UL39基因 24 2.5 pMD20-T-UL39质粒的构建和鉴定 24 2.6 pET32a(+)-UL39融合表达质粒的构建和鉴定 24 2.7 融合蛋白的诱导表达鉴定及条件优化 24-25 2.7.1 制备表达宿主菌感受态细胞 24 2.7.2 重组质粒转化表达宿主菌感受态细胞 24 2.7.3 重组蛋白的诱导表达 24-25 2.7.4 诱导表达条件的优化 25 2.8 融合表达蛋白的纯化及免疫兔子 25 2.9 多克隆抗体效价的测定 25-26 2.10 Western-blot检测 26 2.11 兔抗DPV UL39 IgG的纯化 26 3 结果 26-29 3.1 PCR扩增UL39基因 26 3.2 pMD20-T-UL39质粒的鉴定 26-27 3.3 pET32a(+)-UL39融合表达质粒的鉴定 27 3.4 融合蛋白的诱导表达鉴定及条件优化 27-28 3.5 融合表达蛋白的纯化 28 3.6 多克隆抗体效价的测定结果 28 3.7 兔抗DPV UL39 IgG的纯化结果 28-29 3.8 Western blot检测结果 29 4 讨论 29-30 第四章 DPV体外感染宿主细胞UL39基因转录、表达时相及药物抑制试验分析 30-37 1 试验材料 30 1.1 试剂及其配制 30 1.2 仪器 30 2 试验方法 30-33 2.1 FQ-RT-PCR检测DPV体外感染宿主细胞时UL39基因的转录情况 30-32 2.1.1 引物的设计与合成 30 2.1.2 引物的特异性检测 30-31 2.1.3 FQ-PCR标准曲线的构建 31 2.1.4 DEF的培养及总RNA的提取 31 2.1.5 RNA的完整性检测 31 2.1.6 去除总RNA中的基因组DNA 31 2.1.7 反转录并进行FQ-PCR检测 31-32 2.2 药物抑制试验确定UL39的基因类型 32 2.3 R1蛋白体外表达动力学研究 32-33 2.3.1 DEF的培养及细胞蛋白的提取 32 2.3.2 Western-blot检测 32-33 3 试验结果 33-35 3.1 DPV UL39基因转录时相分析 33-35 3.1.1 FQ-PCR引物特异性检测 33 3.1.2 FQ-PCR标准曲线的构建 33-34 3.1.3 RNA的完整性检测 34 3.1.4 样品检测和结果分析 34-35 3.2 药物抑制试验鉴定UL39基因类型 35 3.3 DPV R1蛋白表达时相结果分析 35 4 讨论 35-37 4.1 RQ-RT-PCR检测DPV UL39基因转录特征 35-36 4.2 更昔洛韦和放线菌酮抑制疱疹病毒核酸和蛋白合成 36 4.3 Western blot检测R1蛋白在感染DPV的DEF中的表达动力学 36-37 第五章 鸭瘟病毒UL39基因编码蛋白在DEF中的定位研究 37-40 1 试验材料 37 1.1 毒株和细胞 37 1.2 主要试剂及配制 37 1.3 仪器设备 37 2 试验方法 37-38 2.1 间接免疫荧光检测DPV UL39基因编码蛋白在DEF中的分布情况 37-38 2.2 结果判定标准 38 2.3 DPV UL39基因产物亚细胞定位的动态监测 38 3 结果 38-39 4 讨论 39-40 结论 40-41 参考文献 41-46 致谢 46-47 作者简介 47
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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 动物医学(兽医学) > 兽医基础科学 > 家畜微生物学(兽医病原微生物学) > 家畜病毒学
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