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小麦黄花叶病毒(WYMV)RNA2编码基因的功能研究
作 者: 向荣
导 师: 陈剑平;孙丽英
学 校: 浙江师范大学
专 业: 植物学
关键词: 小麦黄花叶病毒 原核表达 基因基因沉默抑制子 病毒致病性因子 亚细胞定位 蛋白互作
分类号: S435.121
类 型: 硕士论文
年 份: 2011年
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内容摘要
近年来,在我国冬小麦主要产区,由禾谷多黏菌传播的小麦黄花叶病日益严重。该病由小麦黄花叶病毒(Wheat yellow mosaic virus, WYMV)引起。WYMV属于马铃薯Y病毒科大麦黄花叶病毒属成员,其基因组由两条单链正义RNA组成,其中RNA1编码的蛋白有:P3、7K、CI、14K、Nla-VPg、NIb-VPg和CP, RNA2编码P1和P2蛋白,与已知马铃薯Y病毒属成员编码的HC-Pro具有相似的结构域。HC-Pro是研究最深入的病程蛋白之一,在病毒的复制、运输、移动、RNA沉默抑制和病毒致病性等方面有着重要的功能。本研究对WYMV P1和P2与马铃薯Y病毒属成员HC-Pro的功能进行了对比研究。通过对WYMV P1抗血清免疫分析,明确P1抗血清不与WYMV粒子反应,表明P1不直接参与病毒粒子的包装;利用农杆菌共浸润实验,明确WYMV P1和P2没有抑制同源基因诱导的RNA沉默;通过将WYMV P1, WYMV P2的N端P2N以及P1和P2N的复合蛋白P1P2N分别克隆到马铃薯X病毒(Potato virus X, PVX)侵染性克隆,摩擦接种本氏烟,结果表明WYMV P1和P2N对PVX症状的表达影响不大,而P1P2N能够轻微加重PVX的在本氏烟上的症状,HC-Pro(PVY)明显加重了PVX的症状;利用双分子荧光互补(BiFC)技术,在植物和昆虫细胞表达体系中研究表明WYMV P1可以进行自我互作,也与WYMV VPg特异性互作;通过亚细胞定位分析WYMV P1、VPg分别单独表达和一起表达时在细胞中的分布,发现P1可以改变VPg在亚细胞中的分布。根据上述研究结果,我们推测WYMV P1功能与马铃薯Y病毒属成员HC-Pro的功能特性有所不同,并发现WYMVP1可能通过调节VPg亚细胞分布,协助VPg而实现其功能。
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全文目录
摘要 5-6ABSTRACT 6-8目录 8-11缩写中英文对照 11-12文献综述 12-22 1.1 小麦黄花叶病 12-14 1.1.1 病害分布、症状、危害与防治 12-13 1.1.2 病害侵染循环 13-14 1.2 小麦黄花叶病毒(WYMV)分子生物学研究 14-17 1.2.1 基因组结构 14-15 1.2.2 WYMV编码主要蛋白的功能 15-17 1.2.2.1 P1蛋白 15-16 1.2.2.2 P2蛋白 16 1.2.2.3 VPg 16 1.2.2.4 HC-Pro 16-17 1.3 研究WYMV RNA2功能所采用实验技术 17-21 1.3.1 基因沉默 17-19 1.3.1.1 植物中基因沉默的病毒抑制 17-18 1.3.1.2 农杆菌介导转化 18-19 1.3.1.3 农杆菌共浸润的瞬时表达 19 1.3.2 BiFC及荧光定位 19-21 1.3.2.1 BiFC的原理 19-20 1.3.2.2 BiFC的操作方法 20-21 1.3.2.3 BiFC的研究应用 21 1.4 研究目的和意义 21-22第二章 材料与方法 22-34 2.1 实验材料 22-23 2.1.1 植物材料 22 2.1.2 菌种和载体 22 2.1.3 试剂和仪器 22-23 2.1.3.1 试剂 22 2.1.3.2 仪器 22-23 2.2 实验方法 23-34 2.2.1 ELISA检测 23-24 2.2.1.1 试剂及缓冲液 23 2.2.1.2 间接ELISA 23-24 2.2.2 植物总RNA的提取 24 2.2.3 RT-PCR 24-25 2.2.4 PCR产物纯化 25-26 2.2.5 连接反应 26 2.2.6 感受态细胞制备 26-27 2.2.6.1 大肠杆菌感受态细胞制备(CaCl_2法) 26-27 2.2.6.2 电转化感受态细胞制备 27 2.2.7 转化 27-28 2.2.7.1 热激转化 27 2.2.7.2 电转化 27-28 2.2.8 乙醇沉淀 28 2.2.9 阳性克隆的筛选和鉴定 28 2.2.10 质粒DNA少量提取 28-29 2.2.11 BD载体质粒提取 29 2.2.12 重组质粒的鉴定 29-30 2.2.13 酶切 30 2.2.14 载体末端去磷酸化 30 2.2.15 融合蛋白的诱导表达及检测 30-31 2.2.16 目的蛋白纯化和回收 31 2.2.17 Western-blotting 31-34 2.2.17.1 SDS-PAGE 31-32 2.2.17.2 Western-blotting检测 32-34第三章 原核表达WYMV P1融合蛋白制备抗血清及检测 34-40 3.1 材料与方法 34-35 3.1.1 实验材料 34 3.1.2 WYMV P1蛋白基因克隆与序列分析 34-35 3.1.3 原核表达质粒构建 35 3.1.4 WYMV-P1融合蛋白诱导表达及检测 35 3.1.5 目的蛋白纯化与回收 35 3.1.6 P1蛋白抗血清制备及检测 35 3.2 结果与分析 35-39 3.2.1 WYMV P1基因克隆与序列分析 35-36 3.2.2 原核表达质粒构建 36-37 3.2.3 pGEX 6P-1-P1融合蛋白的诱导表达及检测 37 3.214 目的蛋白回收与纯化 37-38 3.2.5 抗血清制备 38-39 3.2.6 P1蛋白的血清学检测 39 3.3 讨论 39-40第四章 小麦黄花叶病毒RNA2沉默抑制的研究 40-47 4.1 材料与方法 40-43 4.1.1 材料 40 4.1.1.1 植物材料 40 4.1.1.2 质粒和菌株 40 4.1.2 方法 40-43 4.1.2.1 WYMV RNA2基因克隆 40-41 4.1.2.2 重组质粒构建 41-42 4.1.2.3 重组质粒转入农杆菌 42 4.1.2.4 农杆菌浸润烟草 42-43 4.2 结果与分析 43-45 4.2.1 WYMV RNA2基因克隆 43 4.2.2 重组质粒构建 43-44 4.2.3 WYMV RNA2编码基因沉默抑制子能力的鉴定 44-45 4.3 讨论 45-47第五章 WYMV RNA2部分蛋白对PVX症状的影响 47-53 5.1 材料与方法 47-49 5.1.1 实验材料 47 5.1.2 实验方法 47-49 5.1.2.1 重组表达载体的构建 47-48 5.1.2.2 农杆菌介导pGR106的侵染体系 48-49 5.2 结果与分析 49-51 5.2.1 重组表达载体的构建 49-50 5.2.2. 嵌合体病毒接种烟草后症状表达 50-51 5.3 讨论 51-53第六章 WYMV P1蛋白在昆虫及植物细胞内的荧光定位 53-64 6.1 材料与方法 53-55 6.1.1 载体与菌种 53 6.1.2 主要试剂 53 6.1.3 方法 53-55 6.1.3.1 重组质粒的构建 53-54 6.1.3.2 重组穿梭质粒的构建 54-55 6.1.3.3 昆虫细胞的转染及共杆菌介导的转染 55 6.1.3.4 共聚焦显微镜观察 55 6.2 结果与分析 55-62 6.2.1 重组质粒的构建和鉴定 56 6.2.2 昆虫细胞中定位 56-59 6.2.2.1 P1蛋白的荧光定位 57 6.2.2.2 P1蛋白的自我互作 57-58 6.2.2.3 P1蛋白与WYMV RNA1编码的其他蛋白互作 58-59 6.2.3 烟草细胞中荧光定位 59-62 6.2.3.1 P1蛋白的荧光定位 59 6.2.3.2 VPg蛋白的荧光定位 59-60 6.2.3.3 P1蛋白的自我互作 60 6.2.3.4 P1蛋白与VPg蛋白的互作 60-61 6.2.3.5 WYMV-P1蛋白与WYMV-VPg植物细胞内共表达 61-62 6.3 讨论 62-64第七章 结论与展望 64-66 7.1 结论 64 7.2 展望 64-66参考文献 66-73附录 73-77在读期间发表的学术论文 77-78致谢 78-79
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中图分类: > 农业科学 > 植物保护 > 病虫害及其防治 > 农作物病虫害及其防治 > 禾谷类作物病虫害 > 麦类病虫害 > 病害
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