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金属调控2型糖尿病相关蛋白胰岛淀粉样多肽聚集过程
作 者: 于冶萍
导 师: 李艳梅
学 校: 清华大学
专 业: 化学
关键词: 2型糖尿病 人胰岛淀粉样多肽(hIAPP) 细胞毒性 聚集 金属离子
分类号: R587.1
类 型: 硕士论文
年 份: 2010年
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内容摘要
胰岛中的淀粉样沉积是2型糖尿病的重要病理特征。人胰岛素多肽(hIAPP)是胰岛淀粉样沉积的主要组成部分,由37个氨基酸残基组成。研究表明hIAPP聚集成的纤维丝与胰岛β细胞功能缺失有关,而hIAPP诱导的细胞毒性机理主要包括可溶性寡聚体的形成、细胞膜破损、细胞膜通透性增大以及氧化压力。最新的证据表明,金属在淀粉样沉积的过程中起到重要的作用。Cu、Zn等金属离子在阿尔兹海默氏症等神经退行性疾病中有重要意义,金属离子可以与淀粉样蛋白结合并改变聚集机理。但是目前金属与hIAPP相互作用的机理仍不清楚。本工作主要研究了生命体系中常见的Cu、Ni、Zn等金属离子对hIAPP聚集过程和细胞毒性的影响,以及Ta表面诱导的hIAPP聚集机理。首先,本文发现了一个Cu诱导hIAPP形成具有细胞毒性的球形寡聚体的机理。Cu一方面抑制hIAPP纤维丝状聚集体的形成,另一方面诱导其聚集成为小尺寸球形寡聚体,从而增强hIAPP诱导的β细胞毒性。本文进一步利用Ni重现了Cu的这种影响,因为Ni与Cu在与蛋白结合的性质方面十分类似,却不产生任何氧化压力。研究发现,Ni也可以通过诱导毒性寡聚体的产生而提高hIAPP的细胞毒性。这些数据证明Cu诱导的hIAPP产生更大细胞毒性的主要原因不是氧化压力,而是毒性更大的球形寡聚体的产生。与Cu和Ni不同的是,Zn通过诱导hIAPP变成β折叠构象,从而对hIAPP的聚集过程有促进的作用。由于Zn缩短了hIAPP聚集的成核期,使得hIAPP由单体迅速的过度到细胞毒性较小的纤维状聚集体状态,毒性寡聚体及其他形式聚集中间体的存在时间被大大缩短,因此减小了hIAPP诱导的细胞毒性。本文还利用Ta金属表面研究了表面诱导的hIAPP聚集机理。结果发现hIAPP在溶液中聚集成的纤维丝具有三维的节状结构:纤维丝之间交联缠绕而形成更粗的成熟纤维丝,并进一步聚集成为聚集体团簇和淀粉样斑块。而Ta表面诱导的hIAPP机理与之不同:带负电荷的表面首先吸附hIAPP单体,然后聚集成为寡聚体并继续生长成为原纤维丝,寡聚体进一步结合在原纤维丝上,延长纤维丝的长度,进而形成没有节状结构的纤维丝。这些结果证明了金属诱导的细胞毒性的新机理,揭示了金属在2型糖尿病病理途径中的重要作用。
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全文目录
摘要 3-4 Abstract 4-10 第1章 引言 10-24 1.1 2 型糖尿病病理途径 11-13 1.1.1 胰岛素抵抗 11-12 1.1.2 胰岛β-细胞衰竭 12-13 1.2 胰岛淀粉样沉积 13-14 1.3 胰岛淀粉样多肽 14-16 1.4 胰岛淀粉样多肽、胰岛淀粉样沉积和2 型糖尿病 16 1.5 胰岛淀粉样沉积聚集机理 16-17 1.6 胰岛淀粉样沉积产生细胞毒性机理 17-20 1.7 Cu、Zn 与2 型糖尿病 20-21 1.7.1 金属离子与葡萄糖代谢 20-21 1.7.2 金属离子与氧化压力 21 1.8 国内外研究金属与胰岛淀粉样多肽关系的研究现状 21-23 1.8.1 Cu 抑制淀粉样蛋白聚集 22 1.8.2 Cu 产生氧化压力 22-23 1.9 本论文研究内容 23-24 第2章 Cu(II)对hIAPP 聚集过程及细胞毒性的影响 24-58 2.1 本章引论 24 2.2 实验部分 24-42 2.2.1 仪器、试剂及样品配制 24-26 2.2.2 实验原理及方法 26-42 2.2.2.1 细胞活力测定 26-27 2.2.2.2 细胞凋亡检测 27-29 2.2.2.3 金属离子的电子顺磁共振检测 29-30 2.2.2.4 蛋白分子质量的MALDI-TOF/MS 法检测 30-33 2.2.2.5 蛋白质的拉曼光谱检测 33-34 2.2.2.6 蛋白构象的圆二色谱光谱 34-35 2.2.2.7 多肽聚集的ThT 荧光检测 35-36 2.2.2.8 多肽的酪氨酸内源荧光检测 36 2.2.2.9 聚集形态的电镜检测 36-38 2.2.2.10 聚集形态的原子力显微镜检测 38 2.2.2.11 聚集体含量的动态光散射检测 38-39 2.2.2.12 蛋白质交联 39-40 2.2.2.13 蛋白质含量的凝胶电泳法检测 40-41 2.2.2.14 H2O2 生成量测定 41-42 2.3 实验结果 42-56 2.3.1 Cu(II)对hIAPP 细胞毒性的影响 42-43 2.3.2 Cu(II)对hIAPP 诱导的细胞凋亡的影响 43-45 2.3.3 Cu(II)与hIAPP 的结合 45-48 2.3.3.1 Cu(II)与hIAPP 的结合 45 2.3.3.2 Cu(II)与hIAPP 结合形成复合物 45-46 2.3.3.3 Cu(II)与hIAPP 的结合位点初探 46-48 2.3.4 Cu(II)对hIAPP 构象的影响 48-49 2.3.5 Cu(II)对hIAPP 聚集动力学的影响 49-51 2.3.6 Cu(II)对hIAPP 聚集形貌的影响 51-52 2.3.7 Cu(II)对hIAPP 聚集尺度的影响 52-54 2.3.8 Cu(II)与hIAPP 作用产生氧化压力 54-55 2.3.9 金属螯合剂对hIAPP 损伤细胞的保护作用 55-56 2.4 本章讨论 56-57 2.5 本章小结 57-58 第3章 Ni(II)对hIAPP 聚集过程及细胞毒性的影响 58-71 3.1 本章引论 58 3.2 实验部分 58-61 3.2.1 仪器、试剂及样品配制 58-60 3.2.2 实验原理及方法 60-61 3.2.2.1 蛋白分子质量的MALDI-TOF/MS 法检测 60 3.2.2.2 多肽聚集的ThT 荧光检测 60 3.2.2.3 多肽的酪氨酸内源荧光检测 60 3.2.2.4 聚集形态的电镜检测 60 2.2.2.5 聚集形态的原子力显微镜检测 60 3.2.2.6 蛋白质交联 60 3.2.2.7 蛋白质含量的凝胶电泳法检测 60 3.2.2.8 H2O2 生成量测定 60-61 3.2.2.9 细胞活力测定 61 3.3 实验结果 61-68 3.3.1 Ni(II)与hIAPP 的结合 61 3.3.2 Ni(II)对hIAPP 聚集动力学的影响 61-64 3.3.3 Ni(II)对hIAPP 聚集形貌的影响 64-65 3.3.4 Ni(II)对hIAPP 聚集尺度的影响 65-66 3.3.5 Ni(II)与hIAPP 作用不产生氧化压力 66-67 3.3.6 Ni(II)对hIAPP 细胞毒性的影响 67-68 3.4 本章讨论 68-69 3.5 本章小结 69-71 第4章 Zn(II)对hIAPP 聚集过程及细胞毒性的影响 71-79 4.1 本章引论 71 4.2 实验部分 71-73 4.2.1 仪器、试剂及样品配制 71-73 4.2.2 实验原理及方法 73 4.2.2.1 多肽聚集的ThT 荧光检测 73 4.2.2.2 多肽聚集的光散射检测 73 4.2.2.3 聚集形态的电镜检测 73 4.2.2.4 蛋白构象的圆二色谱光谱 73 4.2.2.5 细胞活力测定 73 4.3 实验结果 73-78 4.3.1 Zn(II)对hIAPP 聚集动力学的影响 73-75 4.3.2 Zn(II)对hIAPP 聚集形貌的影响 75-76 4.3.3 Zn(II)对hIAPP 构象的影响 76 4.3.4 Zn(II)对hIAPP 细胞毒性的影响 76-78 4.4 本章讨论 78 4.5 本章小结 78-79 第5章 Ta 表面诱导的hIAPP 聚集过程 79-99 5.1 本章引论 79-80 5.2 实验方法 80-82 5.2.1 仪器、试剂及样品配制 80 5.2.2 实验原理及方法 80-82 5.2.2.1 多肽聚集的ThT 荧光检测 80 5.2.2.2 聚集形态的电镜检测 80 5.2.2.4 聚集形态的原子力显微镜检测 80 5.2.2.5 石英晶体微天平 80-82 5.3 实验结果 82-97 5.3.1 溶液中hIAPP 的聚集动力学 82 5.3.2 溶液中hIAPP 的聚集形貌 82-87 5.3.3 Ta 表面诱导的hIAPP 的聚集动力学 87-91 5.3.4 Ta 表面诱导的hIAPP 的聚集形貌 91-94 5.3.5 Ta 表面诱导的hIAPP 的聚集机理初探 94-97 5.4 本章讨论 97-98 5.5 本章小结 98-99 结论 99-100 参考文献 100-116 致谢 116-117 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 117
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中图分类: > 医药、卫生 > 内科学 > 内分泌腺疾病及代谢病 > 胰岛疾病 > 糖尿病
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