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壳聚糖修饰的Lysozyme-PLGA阳离子纳米药物的研究
作 者: 阎晓霏
导 师: 陈劲春
学 校: 北京化工大学
专 业: 制药工程
关键词: PLGA 壳聚糖 化学键合 纳米微球 阳离子纳米微球
分类号: R943
类 型: 硕士论文
年 份: 2009年
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内容摘要
PLGA微粒广泛用于蛋白,多肽核酸等生物大分子给药。由于PLGA毫微球表面缺乏可用于共价修饰的基团,所以难以在表面负载生物活性物质比如DNA、配体疫苗等等,不易于通过受体或抗体进行靶向给药。因此,许多人尝试用不同方法将PLGA表层包裹不同的聚合物以达到物理改性PLGA微球表面的目的,如阳离子表面修饰是基于PLGA表层负电荷而设计的,这种方式使PLGA的表面活化成为可能。将壳聚糖选做纳米微球表面修饰材料是因为他具有阳离子电荷,生物可降解,黏膜黏附性等特性。本试验通过二环己基碳二亚胺(DCC)将聚乳酸-羟基乙酸共聚物(polylactide-co-glycolide,PLGA)活化,又与溶菌酶进行化学键合,再采用单乳化-溶剂(O/W)挥发技术制备表面带正电荷的壳聚糖(CHS)PLGA纳米微球,尤其优化了纳米微球的制备条件。结果表明,微球粒径φ可控制在450±50nm之间,在pH=4时,纳米微球表面ζ电位最高为42.5mV。优化后的条件是:ρ(CHS)=3 mg/mL,ρ(PLGA)=5mg/mL,溶菌酶与PLGA的比例为0.2/1。优化条件后的纳米微球包封率为87.8%载药量为14.7%,而以W/O/W方法制备的毫微球,其他条件与本试验相同的情况下所得包封率仅为41.0%。SEM图像显示经CHS修饰的Lysozyme-PLGA的纳米微球形状规整。药物释放试验显示纳米微球在20d后释放达到70%,且释放曲线规整,而以往用W/O/W方法制备的纳米微球10d后释药达90%,缓释能力明显弱于本实验中所制备的纳米微球。
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全文目录
摘要 4-6 ABSTRACT 6-13 第一章 绪论 13-29 1.1 纳米给药系统概述 13-18 1.1.1 纳米粒的类型 13-14 1.1.1.1 纳米脂质体 13 1.1.1.2 固体脂质纳米粒(solid lipid nanoparticIe,SLN) 13-14 1.1.1.3 纳米囊(NC)和纳米球(NS) 14 1.1.1.4 聚合物胶囊 14 1.1.1.5 纳米药物 14 1.1.2 制备方法 14-15 1.1.2.1 超临界技术: 14 1.1.2.2 聚合法: 14-15 1.1.2.3 凝聚分散法: 15 1.1.2.4 高压均质法: 15 1.1.2.5 熔融分散法: 15 1.1.2.6 溶剂蒸发法: 15 1.1.2.7 乳化/溶剂扩散法: 15 1.1.3 纳米粒的载药和表面修饰 15-16 1.1.3.1 载药方法 15-16 1.1.3.2 表面修饰 16 1.1.4 生物降解聚合物长循环纳米粒 16-17 1.1.4.1 纳米粒体内过程 16 1.1.4.2 药物从纳米粒的释放 16 1.1.4.3 纳米粒对蛋白质及多肤类药物的输送 16-17 1.1.5 纳米粒胃肠道吸收的影响因素 17 1.1.5.1 胃肠道生理因素: 17 1.1.5.2 纳米粒的性质: 17 1.1.5.3 结构修饰: 17 1.1.5.4 吸引促进剂和分散介质: 17 1.1.6 纳米粒的应用 17-18 1.1.6.1 改善难溶性药物的口服吸收 17-18 1.1.6.2 靶向和定位释药 18 1.1.6.3 生物大分子的特殊载体 18 1.2 纳米药物的制备方法 18-25 1.2.1 纳米药物载体材料及类型 19-20 1.2.1.1 纳米药物载体材料 19-20 1.2.1.2 纳米药物载体的类型 20 1.2.2 纳米药物载体及纳米药物的制备方法 20-24 1.2.2.1 脂质体 20-21 1.2.2.2 乳液法 21-23 1.2.2.3 微乳液法 23 1.2.2.4 超声波法 23 1.2.2.5 渗析及溶剂挥发法 23-24 1.2.2.6 沉淀法 24 1.2.2.7 其他 24 1.2.3 结语 24-25 1.3 PLGA微球毫微球的研究进展 25-28 1.3.1 制备工艺的研究进展 25-26 1.3.1.1 乳化溶剂挥发法 25-26 1.3.1.2 喷雾干燥法 26 1.3.1.3 低温喷雾萃取法 26 1.3.2 应用研究进展 26-28 1.3.2.1 小分子药物载体 26-27 1.3.2.2 蛋白、多肽类药物载体 27 1.3.2.3 疫苗载体 27-28 1.3.3 结语 28 1.4 工作思路 28-29 第二章 溶菌酶纳米微球的包封率载药量及药物释放测定方法 29-37 2.1 材料与仪器 29 2.1.1 试验材料 29 2.1.2 实验仪器 29 2.2 方法与结果 29-35 2.2.1 溶菌酶稳定性研究 29-32 2.2.1.1 溶菌酶的背景知识介绍。 29-30 2.2.1.2 溶菌酶活性的简易检测方法 30-31 2.2.1.3 pH及温度对溶菌酶溶液的稳定性研究 31 2.2.1.4 光线对溶菌酶活性的影响 31-32 2.2.1.5 溶菌酶水溶液精密度测定 32 2.2.2 壳聚糖修饰的lysozyme-PLGA纳米微球(CHS-Lysozyme-PLGA-NP)中的溶菌酶含量测定 32-35 2.2.2.1 溶菌酶DMSO溶液紫外吸光度标准曲线 32-34 2.2.2.2 溶菌酶DMSO溶液精密度试验 34 2.2.2.3 加样回收率 34-35 2.3 结论 35-37 第三章 壳聚糖修饰的Lysozyme-PLGA阳离子纳米药物的制备 37-57 3.1 实验原料和仪器 37-38 3.1.1 实验原料 37 3.1.2 实验仪器 37-38 3.2 实验部分 38-40 3.2.1 CHS-Lysozyme-PLGA-NP的质量考察指标 38-40 3.2.1.1 外形观察 38 3.2.1.2 表面ζ电位和平均粒径φ 38-39 3.2.1.3 包封率与载药量 39-40 3.2.2 制备工艺的选择 40 3.2.2.1 单因素考察CHS-Lysozyme-PLGA-NP的处方与工艺 40 3.2.2.2 正交设计优化CHS-Lysozyme-PLGA-NP的处方与工艺 40 3.3 结果和讨论 40-53 3.3.1 各个因素对CHS-Lysozyme-PLGA-NP性能的影响 40-52 3.3.1.1 制备工艺的影响 41 3.3.1.2 搅拌速度对毫微球固化影响 41-42 3.3.1.3 表面活性剂浓度的选择 42-44 3.3.1.4 外水相CHS浓度的确定 44-46 3.3.1.5 油相中各个组分的含量确定。 46-48 3.3.1.6 外水相pH的选择 48-49 3.3.1.7 固化温度的选择 49-50 3.3.1.8 lysozyme与PLGA投药比例的选择 50-51 3.3.1.9 不同的乳滴形成方式对粒径的影响 51-52 3.3.2 验证优化工艺 52-53 3.3.2.1 CHS-Lysozyme-PLGA-NP的制备 52-53 3.3.2.2 优化后CHS-Lysozyme-PLGA-NP的质量评价 53 3.4 小结 53-57 第四章 壳聚糖修饰的Lysozyme-PLGA纳米微球的理化性质与体外释放研究 57-63 4.1 实验材料与仪器 57 4.1.1 实验材料 57 4.1.2 实验仪器 57 4.2 实验内容 57-62 4.2.1 CHS-Lysozyme-PLGA-NP的质量评价 58 4.2.1.1 形态观察 58 4.2.1.2 粒径分布及表面ξ电位 58 4.2.1.3 载药量包封率的测定 58 4.2.1.4 药物体外释放的测量 58 4.2.2 CHS-Lysozyme-PLGA-NP质量考察结果 58-62 4.3 小结 62-63 第五章 结论与展望 63-65 参考文献 65-71 致谢 71-72 研究成果及发表的学术论文 72-73 作者及导师简介 73-74 北京化工大学硕士研究生学位论文答辩委员会决议书 74-75
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中图分类: > 医药、卫生 > 药学 > 药剂学 > 制剂学
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