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cPL双抗体夹心ELISA检测犬急性胰腺炎方法的建立与应用
作 者: 陈宇驰
导 师: 侯加法
学 校: 南京农业大学
专 业: 临床兽医学
关键词: cPL 双抗体夹心ELIsA检测板 诊断 急性胰腺炎 犬
分类号: S858.292
类 型: 硕士论文
年 份: 2011年
下 载: 3次
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内容摘要
犬急性胰腺炎是临床上对犬危害较大的一种内科疾病,急性胰腺炎发病急、病程短、临床症状严重、难以治愈,甚至导致死亡。有很多急性病例由于未得到确切的诊断,耽误治疗而发展为慢性或亚慢性胰腺炎。病情反复发作,给患犬带来极大的痛苦,也给犬主带来了很多麻烦。因此,研制一种快速、准确诊断犬急性胰腺炎的方法具有重要的意义。本试验依据cPL检测犬胰腺炎的特异性、敏感性和准确性的特点,按照cPL的DNA序列重组cPL,并研制抗新西兰白兔的抗犬胰脂肪酶抗体(cPL-AB-N)和抗美国白兔的抗犬胰脂肪酶抗体(cPL-AB-A),利用cPL的免疫活性原理,成功地制备了检测cPL双抗体夹心ELISA检测板。并用倍比稀释的含有cPL标准溶液对所建立的ELISA检测板进行验证,结果表明,所建立的ELISA检测板检测所得的曲线与标准曲线基本吻合。然后,我们用cPL双抗体夹心ELISA检测板对40只健康犬的血清的cPL的浓度进行检测,其中除了样本T30的检测结果为365.6μg L-1外,其他的值均在文献报道的参考范围之内,故本试验选择与文献报道的参考范围一致,即健康犬血清中犬cPL的浓度的参考范围为2.2-119.2μg L-1。为cPL双抗体夹心ELISA检测板的临床应用提供了必要的参考依据。最后,我们使用所制得的cPL双抗体夹心ELISA检测板,并对照本试验所制定的参考范围,对40份来自于临床疑似犬急性胰腺炎的犬血清样本进行检测,只有一个样本(T38)的cPL含量在我们所建立的标准范围2.2-119.2μgL-1之内,其他39个样本的cPL含量均远远高于正常标准范围的上限,有24个血清样本的cPL含量已经超过了150.0μg L-1。有4个血清样本的cPL浓度为都已经超过了200μg L-1,有的甚至超过正常范围(2.2-119.2μg L-1)最高限的一倍还多。可依据犬血清中cPL含量的检测结果,然后结合患犬所表现出来的临床症状诊断是否患有胰腺炎。此试验为临床确诊犬急性胰腺炎提供了快速、准确的方法。本试验结果表明,使用ELISA检测板对cPL的浓度进行检测从而进行诊断犬急性胰腺炎是一种准确、方便、快捷的检测方式,值得在兽医临床上推广。
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全文目录
目录 4-8摘要 8-9ABSTRACT 9-11缩略语 11-12前言 12-13第一部份 文献综述 13-44 第一章 犬急性胰腺炎病因及病理发生 13-29 1 犬胰腺解剖结构 13 2 犬胰腺的生理功能 13-16 2.1 分泌消化酶 14 2.2 防止自体消化 14-15 2.3 胰腺分泌的调节 15-16 3 胰腺炎 16-29 3.1 犬急性胰腺炎的病因 16-20 3.1.1 营养,高脂蛋白血症,遗传因素 18-19 3.1.2 药物,毒素,高钙血症 19 3.1.3 导管堵塞 19-20 3.1.4 十二指肠反流,胰腺创伤和胰腺局部缺血 20 3.1.5 其他 20 3.2 犬急性胰腺炎的发病机制 20-27 3.2.1 "共同通道"学说与胰酶的异常激活 21-23 3.2.2 细胞因子的"瀑布效应"和全身炎症反应 23-25 3.2.3 胰腺微循环障碍 25-26 3.2.4 胰腺细胞凋亡 26 3.2.5 肠道细菌移位 26-27 3.3 急性胰腺炎时的病理改变 27-29 3.3.1 局部变化 27 3.3.2 全身变化 27-29 第二章 犬胰腺炎诊断概述 29-38 1 病史和临床症状 29 2 影像学检查 29-30 3 胰腺活检 30 4 实验室诊断 30-38 4.1 血液学检查 30 4.2 血液生化指标测定 30-38 4.2.1 淀粉酶(AMYLASE,AMY) 32-33 4.2.2 脂肪酶(LIPASE,LP) 33 4.2.3 犬胰脂肪酶免疫反应性(CANINE PANCREATIC LIPASE IMMUNOREACTIVITY,CPLI) 33-35 4.2.5 胰石蛋白(PANCREATIC STONE PROTEIN,PSP) 35 4.2.6 白细胞介素(INTERLEUKIN,IL) 35 4.2.7 肿瘤坏死因子(TUMOR NECROSIS FACTOR,TNF-A) 35-36 4.2.8 急性时相性蛋白(ACUTE PHASE PROTEIN,APP) 36 4.2.9 多形核粒细胞弹性蛋白酶(POLYMORPHONUCLEAR LEUKOCYTE ELASTASE,PMN-E) 36 4.2.10 胰蛋白酶原激活肽(TRYPSINOGEN ACTIVATION PEPTIDE,TAP) 36-37 4.2.11 磷脂酶A2(PHOSPHOLIPASE A2,PLA2) 37-38 参考文献 38-44第二部分 试验研究 44-77 第三章 CPL双抗体夹心ELISA检测板的建立与检测 44-57 1 材料与方法 45-49 1.1 材料 45-46 1.1.1 试验动物 45 1.1.2 试验样品 45 1.1.3 重组犬胰脂肪酶(RECOMBINANT CPL,RE-CPL) 45 1.1.4 主要试剂 45-46 1.1.5 主要仪器 46 1.2 方法 46-49 1.2.1 纯化犬胰脂肪酶(CANINE PANCREATIC LIPASE,CPL) 46 1.2.2 制备犬胰脂肪酶(CPL)标准浓度溶液 46 1.2.3 空白对照液 46 1.2.4 制作和纯化抗新西兰白兔的抗犬胰脂肪酶抗体(CPL-AB-N) 46-47 1.2.5 制作和生物素化抗美国白兔的抗犬胰脂肪酶抗体(CPL-AB-A) 47-48 1.2.6 建立测量犬胰脂肪酶免疫活性的ELISA方法 48-49 2 结果与分析 49-52 2.1 CPL的标准溶液 49-50 2.2 CPL-AB-N和CPL-AB-A 50 2.3 建立CPL双抗体夹心ELISA检测板 50 2.4 CPL双抗体夹心ELISA检测板的检测 50-52 3 讨论 52-57 3.1 纯化CPL制备犬胰脂肪酶标准浓度溶液 52 3.2 制作和纯化CPL-AB-N及生物素化CPL-AB-A 52-53 3.3 制作和验证ELISA检测板 53-54 3.3.1 制作双抗体夹心ELISA检测板 53 3.3.2 测定双抗体夹心ELISA检测板的反应条件 53 3.3.3 使用CPL的标准溶液检测双抗体夹心ELISA检测板 53-54 3.4 用ELISA检测犬血清中的CPL的优点 54-57 3.4.1 CPL的敏感度、特异度和准确度高 54 3.4.2 ELISA检测板检测CPL的特异性高 54-57 第四章 健康犬CPL双抗体夹心ELISA检测板的检测研究 57-65 1 材料与方法 57-58 1.1 材料 57-58 1.1.1 试验动物 57 1.1.2 主要试剂 57 1.1.3 主要仪器 57 1.1.4 阳性对照组和空白对照组 57-58 1.1.5 生物素化的抗犬胰脂肪酶抗体(CPL-AB-A) 58 1.2 方法 58 1.2.1 制备犬血清 58 1.2.2 使用双抗体夹心ELISA检测板进行检测 58 2 结果与分析 58-61 3 讨论 61-65 3.1 制备CPL溶液 61 3.2 建立犬胰脂肪酶抗体(CPL)的参考范围 61-62 3.3 CPL对诊断犬急性胰腺炎的诊断意义 62-65 3.3.1 双抗体夹心ELISA检测板的特异性 62 3.3.2 双抗体夹心ELISA检测板的方法简单易行 62-65 第五章 CPL双抗体夹心ELISA检测板的诊断研究 65-73 1 材料与方法 65-66 1.1 材料 65-66 1.1.1 试验样本 65 1.1.2 主要试剂 65 1.1.3 主要仪器 65 1.1.4 阳性对照组和空白对照组 65-66 1.1.5 生物素化的抗犬胰脂肪酶抗体(CPL-AB-A)的抗抗体 66 1.2 方法 66 1.2.1 制备犬血清 66 1.2.2 使用双抗体夹心ELISA检测板进行检测 66 2 结果与分析 66-69 2.1 检测样本、阳性对照组及空白对照组的检测结果 67-69 3 讨论 69-73 3.1 制备犬血清和CPL溶液 69 3.2 使用血清中CPL的浓度诊断急性胰腺炎 69 3.3 CPL双抗体夹心ELISA检测板的优点 69-73 3.3.1 CPL的敏感度、特异度和准确度高 69-70 3.3.2 ELISA检测板检测CPL的特异性高 70-73 参考文献 73-77全文总结 77-78创新之处 78-79致谢 79-80在读硕士期间发表文章和参加学术活动 80-81
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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 动物医学(兽医学) > 各种家畜、家禽、野生动物的疾 > 家畜 > 犬
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