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ATF4调节骨血管生成的作用和机制的研究
作 者: 朱珂
导 师: 肖国芝
学 校: 南开大学
专 业: 动物学
关键词: 血管生成 ATF4 成骨细胞 缺氧 HIF-1α VEGF 破骨细胞
分类号: R68
类 型: 博士论文
年 份: 2013年
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内容摘要
骨是密布血管的组织。越来越多的证据表明,在骨骼发育及骨受到损伤的再生过程中,血管生成对于骨的形成和修复至关重要。但是,调控骨中血管生成的机制并不完全清楚。转录激活因子4(ATF4)对于机体生命过程中的骨骼发育是必需的,但是ATF4在骨血管生成中的作用却不明确。在本文中,我们运用对比增强型灌注成像技术研究了野生型和Aft4敲除小鼠头盖骨和股骨中的血管生成情况,发现Aft4敲除的小鼠头盖骨和股骨中血管容积和数量显著降低。对小鼠的胫骨切片进行CD31的免疫组织化学染色,发现Aft4敲除的胫骨骨骺部位的外膜和骨干部位的内膜中CD31的阳性面积明显减少,表明血管面积和密度降低。Real-TimePCR结果显示,Aft4敲除的小鼠胫骨中Vegf及其三个异构体Vegf120, Vegf165和Vegf188的mRNA显著下降。免疫组织化学实验表明,Aft4敲除的小鼠中VEGF在骨小梁表面的成骨细胞中以及在骨质中的表达降低。但是,野生型和Aft4敲除小鼠的血清中VEGF的含量并没有变化。体外血管形成实验表明,Aft4敲除的跖骨中内皮细胞从跖骨的长出几近丧失,但当添加重组的VEGF蛋白时,内皮细胞恢复生长。ATF4的缺失影响了HIF-1α在骨小梁表面成骨细胞中的表达,但pVHL的表达没有受到影响。缺氧的情况下,在成骨细胞中过表达ATF4可以上调HIF-1α和VEGF的表达。机制上,ATF4的缺失可以增强HIF-1α的泛素化水平,降低HIF-1α蛋白的稳定性,但对于其mRNA的稳定性和蛋白质的翻译过程却没有影响。此外,在缺氧的条件下,ATF4的缺失增强了HIF-1α与脯氨酸羟基化酶(PHD1, PHD2和PHD3)的结合,增强了其402和564两个脯氨酸位点的羟基化水平,使更多的羟基化的HIF-1α走向蛋白酶体降解,由此降低了HIF-1α的蛋白水平。有意思的是,甲状旁腺激素相关蛋白(PTHrP)和RANKL——两个破骨细胞的激活剂,依赖ATF4并通过PKC信号通路促进破骨细胞的分化和骨吸收,使骨质中的VEGF释放,促进血管生成。同时,通过体内实验证明,间歇性缺氧处理小鼠后,野生型小鼠中HIF-1α和VEGF的表达增加,骨血管生成增强(CD31阳性面积增加),但ATF4缺失后,HIF-1α,VEGF以及CD31并没有变化,表明小鼠对缺氧环境的适应机制丧失。综合上述实验,我们证实在成骨细胞缺氧的条件下,ATF4是HIF/VEGF信号通路的主要调节因子,同时ATF4可以调控骨质中的VEGF释放,进而促进骨血管生成。
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全文目录
摘要 5-7 Abstract 7-13 第一章 引言 13-39 第一节 血管生成与骨发育 13-25 1.1.1 膜内成骨和软骨内成骨 13-14 1.1.2 促进血管生成的因子在早期骨发育中的作用 14-17 1.1.3 骨中的血管 17-18 1.1.4 骨细胞 18-20 1.1.5 调控成骨细胞分化的转录因子 20-25 第二节 破骨细胞与血管生成 25-29 1.2.1 破骨细胞对血管生成的促进作用 25-27 1.2.2 破骨细胞和血管生成 27-29 第三节 缺氧与骨发育 29-36 1.3.1 HIF和VEGF在骨发育中的作用 31-34 1.3.2 骨再生与疾病 34-36 第四节 转录激活因子ATF4 36-39 1.4.1 转录激活因子家族成员 36 1.4.2 ATF4的结构 36-37 1.4.3 ATF4的功能 37-38 1.4.4 本课题的提出 38-39 第二章 材料与方法 39-57 第一节 实验材料 39-44 2.1.1 药品试剂 39-40 2.1.2 实验所用抗体 40-41 2.1.3 实验所用仪器 41-42 2.1.4 实验所用液体试剂配方 42-44 2.1.5 Atf4基因敲除小鼠 44 第二节 实验方法 44-57 2.2.1 细胞培养 44 2.2.2 原代成骨细胞的分离 44-45 2.2.3 小鼠骨内血管microCT成像 45 2.2.4 跖骨血管生成分析(Metatarsal Angiogenesis Assay) 45-46 2.2.5 跖骨切片及TRAP染色 46 2.2.6 小鼠血清VEGF ELISA检测 46-47 2.2.7 破骨细胞活性检测 47 2.2.8 免疫组织化学(IHC) 47-48 2.2.9 腺病毒的富集及感染 48 2.2.10 RNA提取、反转录及Real-Time PCR 48-50 2.2.11 免疫印记(Western-blot) 50-51 2.2.12 体外转录和翻译 51-55 2.2.13 免疫共沉淀 55 2.2.14 细胞活性检测 55 2.2.15 缺氧实验 55-57 第三章 ATF4对骨血管生成的作用及机制的研究 57-120 第一节 Atf4基因的缺失影响小鼠骨血管的形成 57-64 3.1.1 Atf4基因敲除小鼠的骨中血管减少 57-58 3.1.2 microCT分析表明Atf4基因敲除小鼠头盖骨中血管容积和密度减少 58-59 3.1.3 microCT分析表明Atf4基因敲除小鼠股骨中血管容积和密度减少 59-60 3.1.4 Atf4基因敲除小鼠胫骨切片中CD31的阳性面积减少 60-64 第二节 Atf4基因的缺失使小鼠成骨细胞中VEGF的表达显著减低 64-68 3.2.1 Atf4基因敲除的小鼠骨中Vegf的mRNA水平降低 64-66 3.2.2 Atf4基因敲除的小鼠骨中VEGF的原位表达降低 66-67 3.2.3 Atf4基因敲除的小鼠血清中VEGF的含量没有改变 67-68 第三节 Atf4基因敲除小鼠的跖骨血管生成能力减弱,但可以被重组的人源VEGF恢复 68-73 3.3.1 Atf4敲除小鼠的跖骨血管生成能力显著下降 68 3.3.2 Atf4敲除后不影响小鼠跖骨的细胞存活能力 68-70 3.3.3 VEGF恢复Atf4敲除的跖骨的血管生成能力 70-72 3.3.4 FGF2对Atf4敲除的跖骨的血管生成能力没有恢复作用 72-73 3.3.5 Atf4敲除的跖骨培养基中VEGF的含量降低 73 第四节 ATF4可以调节骨中HIF-1α的表达 73-79 3.4.1 ATF4上调HIF-1α对Vegf启动子活性的激活 73-76 3.4.2 ATF4上调HIF-1α的表达 76-77 3.4.3 Atf4敲除后HIF-1α的原位表达降低 77-79 第五节 ATF4调控HIF-1α的稳定性 79-90 3.5.1 Atf4敲除后缺氧对HIF-1α的诱导减弱 79-81 3.5.2 缺氧条件下过表达ATF4能够上调HIF-1α 81-82 3.5.3 缺氧条件下过表达ATF4上调Vegf及Glut1的mRNA 82-85 3.5.4 缺氧条件下过表达ATF4不会影响Hif-1α的mRNA稳定性 85-86 3.5.5 缺氧条件下过表达ATF4提高HIF-1α蛋白的稳定性 86-87 3.5.6 缺氧条件下Atf4敲除的成骨细胞中HIF-1α蛋白的稳定性降低 87-88 3.5.7 缺氧条件下J押敲除的成骨细胞中HIF-la蛋白的稳定性降低 88-90 第六节 ATF4抑制HIF-1α的泛素化降解 90-99 3.6.1 ATF4抑制HIF-1α的泛素化 90-93 3.6.2 缺氧处理的成骨细胞中ATF4与HIF-1α存在相互作用 93-94 3.6.3 ATF4不影响PHD1,PHD2,PHD3的水平 94-96 3.6.4 ATF4降低PHD1,PHD2,PHD3与HIF-1α的结合 96-98 3.6.5 ATF4与PHD3相互作用,使PHD3对HIF-1α负调控减弱 98-99 第七节 Atf4敲除后,缺氧对小鼠骨血管生成的诱导能力减弱 99-105 第八节 ATF4通过激活破骨使VEGF从骨质中释放,调控血管生成 105-110 3.8.1 破骨细胞的激活剂通过ATF4调节血管生成 105-107 3.8.2 破骨细胞释放骨质中的VEGF 107-110 第九节 PKC信号通路通过ATF4调控破骨细胞的分化和活性,调节骨血管生成 110-120 3.9.1 PMA上调ATF4的表达 111-112 3.9.2 PMA促进跖骨的血管生成 112-114 3.9.3 PKC信号途径通过ATF4促进跖骨的血管生成 114-120 第四章 分析与讨论 120-124 参考文献 124-138 致谢 138-139 个人简历、在学期间发表的学术论文及研究成果 139
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中图分类: > 医药、卫生 > 外科学 > 骨科学(运动系疾病、矫形外科学)
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