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发情周期不同阶段牦牛子宫中生殖激素受体表达的研究
作 者: 阿依木古丽
导 师: 崔燕
学 校: 甘肃农业大学
专 业: 基础兽医学
关键词: 牦牛 发情周期 子宫 ERα PR FSHR LHR 实时荧光定量PCR法 免疫组织化学SP法 mRNA
分类号: S823
类 型: 博士论文
年 份: 2011年
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内容摘要
目的意义:牦牛是青藏高原特有牛种,生活在高寒、高海拔、低氧、冰封期长的严酷自然条件下。既可用于农耕,又可作为运输工具,还能提供一定量的乳、肉、毛绒等产品。牦牛较其它牛种性成熟晚,是一种典型的季节性发情动物。在牧草丰富的暖季发情,繁殖力低,通常两年一胎或三年两胎,一生产仔四到五头。由于受自然条件限制,相关研究较少,目前还未见到牦牛子宫中生殖激素受体相关的研究报道。为了深入研究牦牛生殖生理特性,探讨雌激素、孕激素、促卵泡激素和黄体生成素对牦牛发情周期子宫功能的调控机制,为进一步进行发情周期调控,提高其繁殖能力奠定理论基础。本实验进行了以下研究:实验方法:(1)分别取处于发情期、发情后期、间情期和发情前期的健康的母牦牛各4头,经颈部放血致死,肉眼检查内脏器官正常,尤其是生殖器官无异常后,迅速取出子宫,剪取子宫角标记后直接投入液氮中带回实验室进行mRNA的定量分析;另取子宫角用生理盐水冲洗3遍,40 g/L多聚甲醛磷酸缓冲液(pH=7.4)固定,带回实验室后置4℃固定24 h- 48 h。采用实时荧光定量PCR法和免疫组织化学SP法,分别检测发情周期不同阶段牦牛子宫中雌激素受体α(ERα)、孕激素受体(PR)、促卵泡素受体(FSHR)和黄体生成素受体(LHR)mRNA和蛋白质的表达情况。(2)选取健康、发育良好的性成熟未孕牦牛,颈部放血致死,迅速取出子宫,结扎两端,用冰冷无菌的不含钙、镁离子的PBS液(添加100 IU/mL青霉素,100μg/mL链霉素)保存,并置于冰盒中,3 h内带回实验室,采用I型胶原酶消化,离心分离和差速消化纯化的方法分离纯化上皮细胞和基质细胞,对其进行免疫细胞化学染色鉴定,绘制生长曲线,最后用MTT法测定不同浓度17β-雌二醇和孕酮对细胞增殖的影响。实验结果:(1)ERα蛋白免疫阳性产物主要定位于子宫腔上皮细胞、腺上皮细胞、基质细胞、血管内皮细胞及子宫肌层平滑肌细胞的核中,细胞质有少量表达;ERα在发情期牦牛子宫中表达都强,其中腺上皮表达最强;发情后期普遍下降,间情期表达最低,发情前期有所回升;牦牛子宫内膜和子宫肌层中ERαmRNA的表达都在发情前期最高,间情期最低;子宫肌层中ERαmRNA的表达普遍高于内膜中的表达。(2)PR蛋白免疫阳性产物主要定位于子宫腔上皮细胞、腺上皮细胞、基质细胞、血管内皮细胞及子宫肌层平滑肌细胞的细胞核中,少量存在于胞质;PR在发情期牦牛子宫中表达较强,其中腺上皮细胞和血管内皮细胞中表达较强,腔上皮和基质细胞中表达较弱;发情后期普遍下降,间情期表达最低,发情前期有所回升;牦牛子宫内膜中PR mRNA的表达在发情后期最高,间情期最低;肌层PR mRNA的表达则在发情前期最高,间情期最低;但整体而言,内膜中PR mRNA的表达显著低于肌层中的表达。(3)发情周期不同阶段牦牛子宫中均有FSHR蛋白和mRNA的表达,FSHR免疫阳性产物定位于子宫腔上皮细胞、腺上皮细胞、基质细胞、血管内皮细胞和子宫肌层平滑肌细胞的细胞质中;子宫中FSHR蛋白在发情期表达强度最强,发情后期下降,间情期表达显著降低,发情前期回升;而FSHR mRNA则在发情前期和发情期表达最强,发情后期下降,间情期表达显著降低并达最低值。(4)发情周期不同阶段牦牛子宫内膜及肌层平滑肌中均有LHR蛋白和LHR mRNA的表达;LHR蛋白免疫阳性产物定位于牦牛子宫内膜腺上皮细胞、基质细胞、血管内皮细胞、血管平滑肌细胞和肌层平滑肌细胞的细胞质中;腺上皮细胞、基质细胞和肌层平滑肌细胞中发情前期和发情期表达最弱,发情后期表达增加,间情期表达最强;子宫内膜血管平滑肌细胞中LHR的表达在发情期最强,间情期最弱;血管内皮中LHR在发情期和发情前期表达很强,发情后期和间情期显著下降。牦牛子宫内膜中LHR mRNA在发情前期表达最低,间情期表达显著升高并达最高值;子宫肌层平滑肌中,LHR mRNA在发情期表达最低,间情期表达最高。(5)1g/L胶原酶消化1 h,500 r/min离心10 min,经两代差速消化纯化获得的上皮细胞纯度为96 %,基质细胞纯度为93 %;各浓度17β-雌二醇均能促进上皮细胞和基质细胞的增殖,孕酮促进基质细胞增殖,但对上皮细胞的增殖有抑制作用,不同浓度的17β-雌二醇和孕酮共同作用均能显著促进基质细胞增殖,而对上皮细胞增殖的影响随混合液中孕酮浓度的增加而由促进转为抑制。结论:(1)发情周期不同阶段牦牛子宫中ERα、PR、FSHR和LHR mRNA和蛋白质都出现规律性的变化。表明,牦牛子宫功能的变化与ERα、PR、FSHR和LHR转率和翻译水平的调控有关。(2)本研究获得了高纯度的牦牛子宫内膜上皮细胞和基质细胞,雌激素能促进两种细胞的增殖,孕激素促进基质细胞增殖但抑制上皮细胞增殖。
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全文目录
中文摘要 4-6 Abstract 6-14 第一部分 文献综述 发情周期牛子宫的变化特点及相关激素对其调控的研究进展 14-40 1 哺乳动物发情周期的特点 14-17 1.1 哺乳动物发情周期的划分 14-15 1.2 牛发情周期的特点 15 1.3 牦牛发情周期的特点 15-16 1.4 牛发情周期生殖激素的变化特点 16-17 2 发情周期牛子宫结构的变化 17-20 2.1 子宫的基本结构 17-18 2.2 发情周期子宫的变化 18-20 3 激素对发情周期子宫功能的调控 20-26 3.1 雌激素对子宫的作用 20-22 3.2 孕激素对子宫的作用 22-24 3.3 黄体生成素的主要作用 24-25 3.4 促卵泡激素的主要作用 25-26 4 子宫中类固醇激素对受体的调节 26-28 参考文献 28-40 第二部分 实验研究 40-113 第一章 发情周期不同阶段牦牛子宫中ERα的表达变化 40-58 引言 40-41 1 材料和方法 41-46 1.1 实验材料 41-42 1.1.1 主要试剂 41-42 1.1.2 主要仪器 42 1.2 实验方法 42-46 1.2.1 供试牦牛的选择 42 1.2.2 取材 42 1.2.3 切片制备 42-43 1.2.4 免疫组织化学SP 法检测ERα的表达 43 1.2.5 引物设计与合成 43-44 1.2.6 mRNA 的提取及cDNA 的合成 44-45 1.2.7 荧光定量PCR 45-46 1.3 实验数据处理 46 2 结果 46-52 2.1 ERα在牦牛子宫中的定位 46 2.2 发情周期不同阶段ERα蛋白在牦牛子宫中的表达变化 46-48 2.3 发情周期不同阶段ERαmRNA 在牦牛子宫中的表达变化 48-52 2.3.1 总RNA 的检测 49 2.3.2 ERα和β-actin 基因PCR 产物的电泳检测 49 2.3.3 ERα和β-actin 实时定量PCR 扩增曲线和熔解曲线分析 49-50 2.3.4 实时定量PCR 标准曲线、表达效率及相关系数分析 50-51 2.3.5 发情周期不同阶段牦牛子宫内膜中ERαmRNA 的表达规律 51 2.3.6 发情周期不同阶段牦牛子宫肌层中ERαmRNA 的表达规律 51-52 3 讨论 52-54 3.1 ERα的作用机制 52-53 3.2 子宫中ERα表达情况及其与发情周期的关系 53-54 4 小结 54-55 参考文献 55-58 第二章 发情周期不同阶段牦牛子宫中PR 的表达变化 58-72 引言 58-59 1 材料与方法 59-60 1.1 实验材料 59 1.1.1 主要试剂 59 1.1.2 主要仪器 59 1.2 实验方法 59-60 1.2.1 免疫组织化学SP 法检测PR 的表达 59 1.2.2 引物设计与合成 59-60 1.2.3 mRNA 的提取及cDNA 的合成 60 1.2.4 荧光定量PCR 60 1.3 实验数据处理 60 2 结果 60-66 2.1 PR 在牦牛子宫中的定位 60-61 2.2 发情周期不同阶段PR 蛋白在牦牛子宫中的表达变化 61-63 2.3 发情周期不同阶段PR mRNA 在牦牛子宫中的表达变化 63-66 2.3.1 总RNA 的检测 63 2.3.2 实时定量PCR 产物的电泳分析 63 2.3.3 PR 和β-actin 实时定量PCR 扩增曲线和熔解曲线分析 63-64 2.3.4 实时定量PCR 标准曲线、表达效率及相关系数分析 64-65 2.3.5 发情周期不同阶段牦牛子宫内膜中PR mRNA 的表达规律 65 2.3.6 发情周期不同阶段牦牛子宫肌层中PR mRNA 的表达规律 65-66 3 讨论 66-68 3.1 PR 的作用机制 66-67 3.2 PR 在子宫中的表达及其与发情周期的关系 67-68 4 小结 68 参考文献 68-72 第三章 发情周期不同阶段牦牛子宫中促卵泡素受体的表达变化 72-84 引言 72 1 材料与方法 72-74 1.1 实验材料 72-73 1.1.1 主要试剂 72-73 1.1.2 主要仪器 73 1.2 实验方法 73-74 1.2.1 免疫组织化学SP 法检测FSHR 的表达 73 1.2.2 引物设计与合成 73 1.2.3 mRNA 的提取及cDNA 的合成 73 1.2.4 荧光定量PCR 73-74 1.2.5 实验数据处理 74 2 实验结果 74-79 2.1 FSHR 在牦牛子宫中的定位 74 2.2 发情周期不同阶段FSHR 在牦牛子宫中的表达变化 74-77 2.3 发情周期不同阶段FSHR mRNA 在牦牛子宫中的表达规律 77-79 2.3.1 总的RNA 检测 77 2.3.2 FSHR 和β-actin 基因PCR 产物的电泳检测 77 2.3.3 FSHR 和β-actin 实时定量PCR 扩增曲线和熔解曲线分析 77-78 2.3.4 实时定量PCR 标准曲线、表达效率及相关系数分析 78 2.3.5 发情周期不同阶段牦牛子宫中FSHR mRNA 的表达规律 78-79 3 讨论 79-81 3.1 FSHR 作用机制 79-80 3.2 FSHR 在子宫中的表达变化 80-81 4 小结 81 参考文献 81-84 第四章 发情周期不同阶段牦牛子宫中LHR 的表达变化 84-98 引言 84-85 1 材料和方法 85-86 1.1 实验材料 85 1.1.1 主要试剂 85 1.1.2 主要仪器 85 1.2 实验方法 85-86 1.2.1 免疫组织化学SP 法检测LHR 的表达 85 1.2.2 引物设计与合成 85 1.2.3 mRNA 的提取及cDNA 的合成 85-86 1.2.4 荧光定量PCR 86 1.3 实验数据处理 86 2 结果 86-91 2.1 LHR 在牦牛子宫中的定位 86 2.2 发情周期不同阶段LHR 蛋白在牦牛子宫中的表达 86-89 2.3 发情周期不同阶段牦牛子宫中LHR mRNA 的表达规律 89-91 2.3.1 总RNA 的检测 89 2.3.2 LHR 和β-actin 基因PCR 产物的电泳检测 89 2.3.3 LHR 和β-actin 实时定量PCR 扩增曲线和熔解曲线分析 89-90 2.3.4 实时定量PCR 标准曲线、表达效率及相关系数分析 90 2.3.5 发情周期不同阶段LHR mRNA 在牦牛子宫中的表达变化 90-91 3 讨论 91-93 3.1 LHR 作用机制 91-92 3.2 LHR 在子宫中的表达变化 92-93 4 小结 93-94 参考文献 94-98 第五章 牦牛子宫内膜细胞的分离培养及性激素对其增殖的影响 98-113 引言 98 1 材料与方法 98-103 1.1 实验材料 98-99 1.1.1 实验动物 98 1.1.2 仪器设备 98-99 1.1.3 主要试剂 99 1.2 实验方法 99-103 1.2.1 试剂配制 99-100 1.2.2 牦牛子宫内膜细胞的原代培养 100 1.2.3 细胞的纯化及传代培养 100-101 1.2.4 免疫细胞化学染色 101 1.2.5 MTT 法测定细胞的生长曲线 101-102 1.2.6 细胞核型分析 102-103 1.2.7 雌、孕激素对牦牛子宫内膜细胞增殖的影响 103 1.2.8 数据处理 103 2 实验结果 103-109 2.1 牦牛子宫内膜上皮细胞和基质细胞的形态特点 103-105 2.2 细胞的纯化及传代培养 105 2.3 免疫细胞化学染色 105-106 2.4 MTT 法测定细胞的生长曲线 106-107 2.5 核型分析 107-108 2.6 雌、孕激素对牦牛子宫内膜细胞增殖的影响 108-109 3 讨论 109-110 4 小结 110-111 参考文献 111-113 致谢 113-114 作者简介 114-116 导师简介 116-118
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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 家畜 > 牛
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