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NaCS-PDMDAAC微胶囊固定化红曲霉菌培养的研究
作 者: 张子儒
导 师: 姚善泾
学 校: 浙江大学
专 业: 生物化工
关键词: 红曲色素 NaCS-PDMDAAC微胶囊 细胞固定化 红曲霉菌 鼓泡塔反应器
分类号: TQ925
类 型: 硕士论文
年 份: 2004年
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内容摘要
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首先采用平板初筛—摇瓶复筛的筛选策略,从原始菌株筛选得到一株液态发酵下高产红曲色素的红曲霉菌菌株Monascus purpureus,摇瓶发酵时该菌株红曲色素产量为1.59(OD500)。然后针对Monascus sp.液态发酵的外部条件如供氧量和温度进行优化,确定最佳游离发酵条件,最后对发酵培养基的初始pH值、碳源和氮源进行进一步优化获得最佳的液体培养基组成,摇瓶发酵的红曲色素产量从优化前的1.59(OD500)提高到1.93(OD500)。 采用纤维素硫酸钠(NaCS)—聚二甲基二烯丙基氯化铵(PDMDAAC)微胶囊对红曲霉菌进行了固定化培养试验。由于培养环境的变化,考察了红曲霉菌微囊化对摇瓶培养条件的影响,然后在该优化条件下连续进行6批培养。结果表明,红曲霉菌可以很好地在NaCS-PDMDAAC微胶囊中生长和产红曲色素。在与游离培养细胞的比较表明,微囊化培养的糖耗时间会远远少于游离培养,红曲色素的浓度在前3批略低于游离培养,但一旦达到稳定后,就会高于游离培养,最高红曲色素产量为2.49(OD500)。同时发现,微囊化培养时红曲霉菌的菌体浓度远大于游离培养,达到13.4g·L-1。 设计了一个高25cm,低面半径为3.5cm的鼓泡塔反应器,在与传统发酵罐和摇瓶的对比中,鼓泡塔反应器减少剪切应力对胶囊的破坏,同时增加了氧的供应能力,适合微囊化红曲霉菌的培养。 对微囊化红曲霉菌的鼓泡塔反应器培养条件进行优化,选择最佳的初始糖浓、胶囊装载量和通气速率。在连续十五批的分批培养中,第一批发酵时,囊内的菌体不断生长,并没有受到微胶囊的限制,因此相比前面游离培养和微囊化摇瓶培养,葡萄糖消耗最快,红曲色素产量也为最高。随着一批又一批发酵的进行,除了囊内菌浓继续增加外,发酵周期也不断缩短,稳定后的红曲色素产量已经达到游离培养时的2倍,而生物量达到游离培养的3倍。这说明鼓泡塔反应器能够满足足够多生物量的红曲霉菌对氧的需求,最后红曲色素的平均产率为0.158(OD500·h-1),为游离培养时产率的10倍左右。
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全文目录
目录 3-6 摘要 6-7 Abstract 7-8 第一章 文献综述 8-24 1.1 固定化技术 8-15 1.1.1 固定化技术概论 8-9 1.1.2 生物微胶囊技术 9-13 1.1.2.1 生物微胶囊及其制备方法 10-11 1.1.2.2 常用的生物微胶囊 11-12 1.1.2.3 生物微胶囊固定化技术的应用 12-13 1.1.3 NaCS-PDMDAAC微胶囊 13-15 1.1.3.1 概述 13-14 1.1.3.2 NaCS-PDMDAAC微胶囊细胞培养中的应用 14-15 1.2 红曲霉菌和红曲霉菌的各种生理活性物质 15-16 1.2.1 酶类 15 1.2.2 药用活性物质 15-16 1.2.3 抗菌成份 16 1.3 红曲色素及其生产 16-22 1.3.1 红曲在国内外的发展现状 16-17 1.3.2 红曲色素的化学组成 17-19 1.3.3 红曲色素的性质 19-20 1.3.4 红曲色素的生产 20-22 1.3.4.1 三种不同的红曲色素生产方法 20-21 1.3.4.2 红曲色素生产方法的研究进展 21-22 1.4 红曲霉菌固定化生产红曲色素 22-23 1.5 课题意义及研究内容 23-24 第二章 游离红曲霉菌液态发酵 24-38 2.1 实验材料与仪器 24-25 2.1.1 菌种 24 2.1.2 培养基 24 2.1.3 仪器设备 24-25 2.2 实验方法 25-27 2.2.1 分析方法 25-27 2.2.2 实验方法 27 2.3 实验结果与讨论 27-37 2.3.1 菌种筛选 27-28 2.3.2 溶氧量对红曲霉菌生长和红曲色素产量的影响 28-29 2.3.2.1 摇瓶装液量 28-29 2.3.2.2 摇床转速 29 2.3.3 温度对红曲霉菌红色素产量的影响 29-30 2.3.4 培养基的优化 30-33 2.3.4.1 培养基初始pH值对红曲色素产量的影响 30-31 2.3.4.2 不同葡萄糖浓度下红曲霉菌的游离培养 31-33 2.3.5 不同酵母提取物浓度下红曲霉菌的游离培养 33-35 2.3.6 不同NaNO_3浓度下红曲霉菌的游离培养 35-37 2.4 本章小结 37-38 第三章 微囊化红曲霉菌发酵 38-51 3.1 实验材料与仪器 38-39 3.1.1 菌种 38 3.1.2 培养基 38 3.1.3 仪器设备 38-39 3.2 实验方法 39-42 3.2.1 分析方法 39-41 3.2.2 培养方法 41-42 3.3 微胶囊的制备 42-44 3.3.1 制备方法 42 3.3.2 制备装置 42-44 3.4 试验结果与讨论 44-50 3.4.1 微囊化红曲霉菌的摇瓶培养条件优化 44-47 3.4.1.1 摇床转速对微囊化红曲霉菌红色素生产的影响 44-45 3.4.1.2 微胶囊装载量对微囊化红曲霉菌红色素生产的影响 45 3.4.1.3 初始糖浓对微囊化红曲霉菌红色素产量的影响 45-47 3.4.2 微囊化红曲霉菌在摇瓶中的连续培养 47-50 3.4.2.1 微囊化培养与游离培养的比较 47-48 3.4.2.2 微囊化红曲霉菌的分批重复培养 48-50 3.5 本章小节 50-51 第四章 微囊化红曲霉菌的鼓泡塔反应器培养 51-64 4.1 实验材料与仪器 51-53 4.1.1 菌种 51 4.1.2 培养基 51 4.1.3 仪器设备 51-52 4.1.4 鼓泡塔反应器 52-53 4.2 实验方法 53-54 4.2.1 分析方法 53 4.2.2 培养方法 53-54 4.3 微胶囊的制备 54 4.4 结果与讨论 54-63 4.4.1 鼓泡塔反应器的供氧性能 54-55 4.4.2 不同微胶囊装载量对红色素产量的影响 55 4.4.3 初始糖浓对红色素产量的影响 55-57 4.4.4 不同通气速率对红色素产量的影响 57-58 4.4.5 微囊化红曲霉菌鼓泡塔培养与游离和微囊化摇瓶培养的比较 58-60 4.4.6 微囊化红曲霉菌的鼓泡塔反应器连续培养 60-62 4.4.7 微囊化红曲霉菌的动力学研究 62-63 4.5 本章小结 63-64 第五章 结论 64-65 参考文献 65-69 致谢 69
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中图分类: > 工业技术 > 化学工业 > 其他化学工业 > 发酵工业 > 酶制剂(酵素)
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