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云南温泉栖热菌热稳定性普鲁兰酶高产菌株筛选的初步研究
作 者: 刘涛
导 师: 陈朝银
学 校: 昆明理工大学
专 业: 生物化工
关键词: 云南热泉 栖热菌 普鲁兰酶
分类号: Q939.99
类 型: 硕士论文
年 份: 2005年
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内容摘要
栖热菌是地热高温菌的典型代表,是高温生物学基础性研究和应用性研究的重点菌群,与水热环境关系密切,呈世界性分布,除各地地热温泉外,人工水热环境如热水管道及自热的堆肥,海底火山门附近都曾分离到栖热菌株,栖热菌的应用开发也取得了很大的进展,最具代表性的就是产自栖热菌的Taq酶应用于PCR反应,带来分子生物学的巨大发展。云南水热活动区数量为全国第一,其中腾冲又居云南之首,而且它是中国大陆上唯一的火山地热区。全县有95个水热显示区,活动强度高,其中蕴含的微生物资源也非常丰富。 普鲁兰酶(Pulullanase)是淀粉酶的一种,能专一性的水解曲霉多糖(Pullulan),淀粉,支链淀粉和相应的低聚糖中的α-1,6糖苷键的一种脱枝酶(Abdullab et al, 1960)。普鲁兰酶既能分解支链淀粉产生还原糖,也能水解普鲁兰多糖产生还原糖,在淀粉深加工、啤酒酿造等多种工业中具有广泛的应用。目前已经发现很多种微生物都能分解支链淀粉产生普鲁兰酶,如芽孢菌、产气气杆菌、放线菌、栖热菌等。工业应用的普鲁兰酶多是由芽孢菌等微生物产生的,目前世界上只有丹麦的NOVO公司得到的芽孢杆菌所产生的普鲁兰酶具有广泛的应用。栖热菌普鲁兰酶的研究只处于起步状态,只有国外少数科研机构进行过初步的研究,筛选得到的栖热菌菌株普鲁兰酶活力并不高,只有1u/ml左右,很难应用于工业生产。国内对普鲁兰酶的研究只局限于江南大学、兰州大学、中国科学院微生物研究所和江苏生物研究所等少数高校和科研单位,研究只局限于筛选高活力菌株,对所得到的菌株进行诱导、诱变,对发酵条件进行优化等方面。筛选得到的菌株只有芽孢菌,产气气杆菌等,到目前酶的活力还比较低,最高检测到的活力只有8.8u/ml,工业应用前景还很渺茫。 本研究从云南高温热泉中筛选得到60株非芽孢菌菌株,对这些菌株产普鲁兰酶性状进行了筛选,分别检测了各菌株的α—淀粉酶、β—淀粉酶、异淀粉酶和普鲁兰酶活性,得到了一株普鲁兰酶初始酶活力比较高的菌株WQBGR2-3,初始酶活力达到0.069u/ml,该菌株WQBGR2-3为产红色色素、非芽孢的革兰氏阴性杆菌,该细菌在平板上能形成圆形、边缘平整、半透时,长杆状单一分布或者形成链状,无鞭毛,没有运动性。针对该菌株进行了生理生化实验,包括淀粉水解实验,过氧化氢酶实验等35个指标,根据对细菌WQBGR2-3的形态观察和生理生
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全文目录
第一章 引言 10-20 1.1 栖热菌 10-13 1.1.1 栖热菌种群的发现及鉴定 10-11 1.1.2 栖热菌耐高温酶 11-13 1.2 普鲁兰酶的种类及研究现状 13-20 1.2.1 普鲁兰酶的种类 13-14 1.2.2 微生物普鲁兰酶 14-16 1.2.3 栖热菌普鲁兰酶 16-18 1.2.4 异淀粉酶 18-20 第二章 云南热泉栖热菌普鲁兰酶菌株筛选 20-44 2.1 材料与方法 20-26 2.1.1 材料与试剂 20-21 2.1.2 实验仪器 21 2.1.3 培养基 21-22 2.1.3.1 环境样品分离培养基 21-22 2.1.3.2 MD液体培养基 22 2.1.3.3 保藏培养基 22 2.1.4 菌种的分离和保藏方法 22 2.1.5 产普鲁兰酶菌株初筛 22-23 2.1.6 普鲁兰酶产生菌复筛 23-26 2.1.6.1 普鲁兰酶检测 23-24 2.1.6.2 α-淀粉酶检测 24-25 2.1.6.3 β-淀粉酶检测 25-26 2.1.6.4.异淀粉酶检测 26 2.2 结果与讨论 26-42 2.2.1 温泉样品中疑似菌株的分离纯化结果 26-30 2.2.2 普鲁兰酶平板初筛结果 30-31 2.2.3 普鲁兰酶复筛 31-42 2.2.3.1 非芽孢菌普鲁兰酶活力检测 31-35 2.2.3.2 疑似菌株普鲁兰酶活力检测结果分析 35-36 2.2.3.3 疑似菌株其它淀粉酶活力检测 36-40 2.2.3.3.1 α—淀粉酶检测及标准曲线 36-37 2.2.3.3.2 β—淀粉酶检测及标准曲线 37-38 2.2.3.2.3 异淀粉酶检测及标准曲线 38-40 2.2.3.4 疑似菌株其它淀粉酶检测结果 40 2.2.3.5 检测结果讨论 40-42 2.3 小结 42-44 第三章 云南热泉高温菌WQBGR2-3菌株高产热稳定性普鲁兰酶诱导及发酵条件优化 44-59 3.1 前言 44 3.2 材料与方法 44-46 3.2.1 材料和仪器 44 3.2.2 培养基 44-45 3.2.3 实验方法 45-46 3.2.3.1 WQBGR2-3普鲁兰酶诱导实验 45 3.2.3.2 生长曲线与生长过程中普鲁兰酶的积累 45 3.2.3.3 优化试验前的单因素实验 45 3.2.3.4 二次正交组合响应表面实验设计 45-46 3.3 结果与讨论 46-57 3.3.1 诱导实验结果分析 46-47 3.3.2 生长曲线及酶活力曲线测定结果 47-48 3.3.3 优化实验的单因素实验结果 48-49 3.3.4 二次三因素实验结果 49-55 3.3.5 实验过程中其它问题分析 55-57 3.4 小结 57-59 第四章 云南热泉高温菌WQBGR2-3的普鲁兰酶分离纯化及酶学性质的初步研究 59-66 4.1 材料与方法 59-60 4.1.1 材料 59 4.1.1.1 菌种 59 4.1.1.2 试剂与仪器 59 4.1.2 实验原理与方法 59-60 4.1.2.1 丙酮沉淀 59-60 4.1.2.2 鞣酸沉淀 60 4.1.2.3 凝胶层析 60 4.1.2.4 酶的pH、温度曲线及酶的热稳定性研究 60 4.2 结果与讨论 60-65 4.2.1 丙酮沉淀过程的监测及结果分析 61-62 4.2.2 鞣酸沉淀结果分析 62 4.2.3 凝胶层析分离蛋白质及结果分析 62-63 4.2.4 酶的pH、温度曲线及热稳定性研究结果 63-65 4.3 小结 65-66 第五章 菌株WQBGR2-3的生理生化试验及初步鉴定 66-69 5.1 所需仪器试剂 66 5.2 实验方法 66-67 5.2.1 菌落形态观察 66 5.2.2 WQBGR2-3的生理生化实验 66-67 5.2.2.1 过氧化氢酶实验 66-67 5.2.2.2 动力实验 67 5.2.2.3 淀粉水解实验 67 5.3 结果与讨论 67-69 第六章 结论 69-71 参考文献 71-76 致谢 76-77 附录及附表 77
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中图分类: > 生物科学 > 微生物学 > 应用微生物学 > 其他应用微生物学
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