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不同铬源对杜长大肥育猪生长、胴体组成、肉质的影响及机理研究

作　者: 和玉丹
导　师: 王敏奇
学　校: 浙江大学
专　业: 动物营养与饲料科学
关键词: 纳米级硅酸盐微粒吸附铬吡啶羧酸铬三氯化铬胴体组成肉质铬沉积生长激素
分类号: S828
类　型: 硕士论文
年　份: 2007年
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内容摘要

本课题以“杜长大”三元杂交肥育猪为研究对象,以三氯化铬(CrCl3)、吡啶羧酸铬(Chromium Picolinate, CrPic)及自行研制的纳米级硅酸盐微粒吸附铬(Chromium-bearing Nano-scale Silicate, CrNano)为材料,比较研究三种不同铬形式对肥育猪生长性能、胴体品质和肉质的影响,通过测定有关生理生化指标以及生长激素的动态分泌模式和脑垂体GHmRNA丰度的影响,进一步探讨铬的作用机理。饲养试验选择96头体重相近的肥育猪,随机分成4组,每组3个重复,每个重复8头,公母各半。第1组饲喂基础日粮,第2、3、4组分别在基础日粮的基础上以CrCl3、CrPic和CrNano形式添加200μg／kg铬。预试期7天,正试期40天。饲养试验结束后前一天,从各组中分别选取试验猪6头,早上饲喂相应日粮,1h后,于早8点到10点,间隔15分钟耳静脉采血一次,制备血清用于生长激素动态分泌模式研究。饲养试验结束后,分别从各组中选取体重接近的试验猪8头,共32头,称重,并按程序进行屠宰取样。饲养试验结果表明,CrNano组的料重比较对照组降低了4.87%(p>0.05),CrPic组料重比降低了4.58%(p>0.05),添加吡啶铬组的日增重提高了6.31%(p<0.05),各试验组对日采食量都没有产生显著影响。屠宰试验表明,CrNano组的胴体瘦肉率相对于对照组提高了10.55%(p<0.05),CrPic组和氯化铬组较对照组无显著差异。CrNano组、CrPic组和氯化铬组的脂肪率较对照分别降低了32.55%(p<0.05)、24.59%(p<0.05),背膘厚分别下降了24.32%(p<0.05)、10.27%(p<0.05),背最长肌面积分别增加20.21%(p<0.05),17.29%(p<0.05),氯化铬组与对照组相比上述指标未有显著差异。各试验组对猪的屠宰率、骨骼率、皮肤率均无显著影响。肉质分析显示：饲粮中添加不同形式的铬对肉色指标无显著影响,但是24小时滴水损失有下降趋势,CrNano组较对照组降低了25.78%(p>0.05)。三种不同形式铬源对肌肉中肌红蛋白含量均有显著提高,氯化铬组较对照组提高了10.02%(p<0.05),CrPic组提高了15.41%(p<0.05),CrNano添加组则提高了29.58%(p<0.05)。铬沉积量分析显示：CrNano组和CrPic组的全血中铬含量较对照组分别升高了134.83%(p<0.05)、86.06%(p<0.05),而氯化铬与对照组相比无显著差异。CrNano组、CrPic组和氯化铬组的背最长肌中铬含量分别为83.11ppb,58.96ppb和43.87ppb,较对照组分别提高了119.06%(p<0.05)、55.40%(p>0.05)、15.63%(p>0.05)。三种铬形式对腹脂中铬沉积均没有产生显著影响。对于内脏器官的铬沉积而言,以肾脏的铬浓度最高,其次是肝脏、心脏、脾脏、胰脏、肺脏。CrNano组、CrPic组和氯化铬组肾脏中铬含量较对照组分别提高了94.76%(p<0.05)、67.55%(p<0.05)、40.60%(p>0.05),肝脏中铬含量分别提高114.69%(p<0.05)、86.45%(p<0.05)、18.73%(p>0.05),心脏中铬沉积量分别较对照组提高了87.10%(p<0.05)、58.75%(p<0.05)、10.63%(p>0.05)。添加组的肺脏、脾脏和胰脏中铬的沉积量较对照组均有不同程度的提高,但并没有产生显著影响。按照国家食品卫生标准对铬在肉类和内脏中限量标准1mg／kg而言,本试验中猪肌肉和内脏的沉积都低于国家标准。血清生化分析显示：CrNano组、CrPic组的血清葡萄糖水平较对照组分别降低了32.17%(p<0.05)、36.4%(p<0.05),总蛋白(TP)水平分别提高了46.93%(p<0.05)、27.03%(p<0.05),而氯化铬组相对于对照组并无显著差异。CrNano添加组的血清中甘油三酯和胆固醇较对照组分别下降了37.82%(p<0.05)、30.96%(p<0.05),尿素氮含量下降了29.39%(P<0.05),游离脂肪酸上升了112.5%(p<0.05),高密度脂蛋白升高168.85%(p<0.05),脂肪酶上升了57.04%(P<0.05)。添加200ppb的CrPic对血清中甘油三酯、总胆固醇、尿素氮、高密度脂蛋白和脂肪酶均不表现显著差异。氯化铬添加组的甘油三酯降低45.71%(p<0.05),尿素氮降低26.85%(p<0.05),而总胆固醇、高密度脂蛋白、游离脂肪酸及脂肪酶等则并无显著差异。血清激素指标分析结果：添加200ppbCrNano使血清中的IGF-1比对照组升高了87.94%(p<0.05),胰岛素水平降低了39.36%(p<0.05)。CrPic添加组的胰岛素水平较对照组降低了37.58%(p<0.05),氯化铬组则差异不显著。而添加不同形式的铬对血清中的游离T3、T4以及皮质醇均未产生显著影响。生长激素动态分泌模式分析表明：CrNano组、CrPic组、CrCl3组的GH总体水平较对照组分别提高了42.62%(p<0.05)、36.58%(p<0.05)、28.02%(p<0.05)。CrNano组的GH最低水平较对照组提高了106.63%(p<0.05),CrPic组较对照提高了81.22%,但差异不显著,CrCl3组较对照组提高只有9.94%(p>0.05)。CrNano组、CrPic组、CrCl3组的GH峰值较对照组分别提高了27.18%(p<0.05)、26.60%(p<0.05)、18.74%(p>0.05)；峰持续时间较对照组分别提高了17.19%(p<0.05)、11.91%(p>0.05)、5.33%(p>0.05)。三个组的峰强度相对于对照组均有不同程度提高,但差异不显著。分子生物学试验结果表明：添加CrNano使GH的转录水平提高了47.63%,差异显著,CrPic组和CrCl3组也较对照组有不同程度提高,但差异不显著。

全文目录

目录  4-7
缩略词  7-9
摘要  9-12
SUMMARY  12-15
前言  15-17
第1章文献综述  17-30
  1.1 铬的理化性质  17-18
  1.2 铬的来源  18
  1.3 铬的吸收与代谢  18-20
    1.3.1 铬的吸收  18-19
    1.3.2 铬的转运及其在体内的分布  19
    1.3.3 铬的排泄  19-20
  1.4 铬的生物学功能及作用机理研究现状  20-22
    1.4.1 铬与糖代谢  20
    1.4.2 铬与脂代谢  20-21
    1.4.3 铬与蛋白质及核酸代谢  21
    1.4.4 铬与内分泌  21-22
  1.5 铬在猪生产中应用及研究现状  22-26
    1.5.1 铬的添加形式、添加剂量以及添加时间  22-25
    1.5.2 铬对猪生产性能的影响  25-26
      1.5.2.1 铬对生长性能的影响  25
      1.5.2.2 铬形胴体组成和肉质的影响  25-26
  1.6 铬的毒性及在畜产品中的沉积  26-27
  1.7 纳米技术在畜牧业上的应用  27-28
  1.8 本研究的目的和内容  28-30
第2章试验研究  30-57
  2.1 试验材料与方法  30-44
    2.1.1 试验材料  30
    2.1.2 试验方法  30-44
      2.1.2.1 饲养试验  30-31
      2.1.2.2 动态血样采集  31
      2.1.2.3 屠宰试验  31
      2.1.2.4 胴体分割  31-32
      2.1.2.5 样品收集和保存  32
      2.1.2.6 肉质测定  32-33
      2.1.2.7 背最长肌中肌红蛋白含量的测定  33
      2.1.2.8 皮下脂肪组织中HSL活性的测定  33-34
      2.1.2.9 全血、肌肉、腹脂、内脏中铬含量的测定  34-35
      2.1.2.10 血清相关生化指标的测定  35
      2.1.2.11 血清中相关激素水平的测定  35
      2.1.2.12 脑垂体中GHmRNA丰度的分析测定  35-44
    2.1.3 数据分析及统计  44
  2.2 试验结果  44-57
    2.2.1 肥育猪生长性能  44-45
    2.2.2 肥育猪内脏器官相对重量  45-46
    2.2.3 肥育猪胴体品质和肉质  46-47
    2.2.4 铬在体内的沉积  47-48
    2.2.5 皮下脂肪中激素敏感脂肪酶活性  48
    2.2.6 血清相关生化指标分析结果  48-50
    2.2.7 血清激素水平  50
    2.2.8 不同铬源对猪生长激素动态分泌模式及特征的影响  50-51
    2.2.9 GH和18S基因片段的克隆  51-53
      2.2.9.1 GH基因和18SrRNA基因RT-PCR产物电泳结果  51
      2.2.9.2 菌液DNA PCR检验结果  51-52
      2.2.9.3 GH和18SrRNA测序结果  52-53
    2.2.10 优化PCR反应体系的确定  53-55
      2.2.10.1 MgCl_2浓度对18SrRNA和GH基因扩增效率的影响  53-54
      2.2.10.2 循环数对GH和18SrRNA基因表达的影响  54-55
    2.2.11 不同铬源对GH基因MRNA丰度的影响  55-57
第3章讨论  57-66
  3.1 不同铬源对肥育猪生长性能的影响  57
  3.2 不同铬源对肥育猪胴体品质的影响  57-59
  3.3 不同铬源对肥育猪肉质的影响  59-60
  3.4 不同铬源对肥育猪糖代谢的影响  60-61
  3.5 不同铬源对肥育猪蛋白代谢的影响  61
  3.6 不同铬源对肥育猪脂肪代谢的影响  61-62
  3.7 不同铬源对肥育猪内分泌系统的影响  62-63
  3.8 不同铬源在体内脏器中沉积的影响  63-64
  3.9 不同铬源对GH脉冲性分泌的影响以及脑垂体中GHMRNA丰度的影响  64-66
小结  66
创新点  66-67
参考文献  67-75
附录一 pGEM-T vector  75-76
致谢  76

不同铬源对杜长大肥育猪生长、胴体组成、肉质的影响及机理研究

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