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致鹅卵黄性腹膜炎大肠杆菌cya、crp双基因缺失突变株的构建及其相关功能性分析
作 者: 王锴
导 师: 朱国强
学 校: 扬州大学
专 业: 预防兽医学
关键词: 禽致病性大肠杆菌 λRed重组系统 cya、crp突变 生物学特性
分类号: S852.61
类 型: 硕士论文
年 份: 2010年
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内容摘要
鹅卵黄性腹膜炎(俗称蛋子瘟),多发于产蛋高峰期的种鹅群,该病死亡率较高并且可导致种蛋受精率和出雏率下降,它是家禽重要的细菌性传染病,病原为禽致病性大肠杆菌(Avian pathogenic Escherichia coli, APEC),且易与其它病原性细菌、病毒并发或混合感染,本病已严重影响到养鹅业的发展。由于APEC血清型众多,目前尚无商品化疫苗使用,并且伴随细菌耐药性问题的日趋严重,该病的药物控制越来越受到严格限制。如何致弱APEC病原菌,获取免疫原性能好、低或无毒性的活菌疫苗以有效抵抗APEC病原菌的感染已成为养鹅业迫在眉睫的问题。随着研究的深入,发现某些管家基因的缺失会引起细菌毒力的减弱,例如cya(adenylate cyclase)、crp(cAMP receptor protein)基因。这两个基因分别是编码合成cAMP的腺苷酸环化酶以及编码cAMP的受体蛋白CRP。cAMP与CRP是菌体转运和降解营养物质过程中的调控因子,cAMP受体蛋白CRP也是目前已知的大肠杆菌7个总调控蛋白中最为重要的一个,它调控了约50%的转录单位的起始。鉴于cya、crp基因的重要作用,其与致病因子的关系必然成为近来研究的一个热点。已有报道国外学者已在鼠伤寒沙门氏菌和APEC病原菌O2,O78血清型中成功构建cya、crp双基因缺失株,并在动物体内证实缺失株毒力的致弱,且保留了良好的免疫原性。本实验基于cya、crp基因的已知序列,利用λ噬菌体Red重组系统对致鹅卵黄性腹膜炎大肠杆菌优势血清型国内分离株G8107(血清型O2:K89)、G803(血清型O39:K89)、G8102(血清型未定),和大肠杆菌J5(脂多糖突变株)的cya、crp基因进行敲除,构建△cya△crp双突变株。其主要构建步骤为:首先PCR扩增出两翼与cya基因上下游序列同源,中间为氯霉素抗性基因的DNA片段,然后转化入G8107、G803、G8102和J5,在Red重组系统表达重组酶的帮助下,含氯霉素抗性基因的PCR产物通过其两侧的cya基因同源序列与禽大肠杆菌染色体上的cya基因发生同源重组,通过氯霉素抗性平板筛选得到阳性克隆,对筛选得到的阳性克隆再导入编码Flp重组酶的质粒pCP20,通过第二次重组去除抗性基因,结合PCR扩增和测序鉴定,从而证明△cya突变株G8107△cya、G803△cya、G8102△cya、J5△cya构建正确。在成功构建△cya突变株的基础上用相同的方法继续构建△cya△crp双基因突变株。在成功构建单突变株△cya与双突变株△cya△crp缺失株的基础上,比较分析了野生株和单突变株以及双突变株在糖酵解、生长速度、毒力致弱方面的生物学特性。突变株体外酵解试验表明,与野生株不同,其不能正常利用乳糖、麦芽糖、蔗糖;生长速度试验表明突变株明显低于野生株,这是由于细菌缺少在转运和降解营养物质过程中发挥调节作用的cya、crp基因,从侧面证实cya、crp基因的正确缺失。通过一日龄气管环接种雏鸡构建动物模型,检测突变株毒力试验,结果表明6日内最高剂量组(3×109CFU)中野生株、△cya突变株、△cya△crp双突变株的死亡率分别为60%、20%、0%,实验结果表明了双突变株毒力较大程度的减弱。本实验利用Red重组系统,成功构建了致鹅卵黄性腹膜炎大肠杆菌国内优势血清型分离株G8107、G8102、G803的△cya、△cya△crp突变株,并且证实了缺失株毒力的致弱。基因缺失减毒株的成功构建,为进一步深入研究禽致病性大肠杆菌管家基因cya、crp与其致病力相互作用的关系提供了一种新的方法,以及为研制禽致病性大肠杆菌活菌弱毒苗奠定基础。
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全文目录
中文摘要 4-6 Abstract 6-12 符号说明 12-13 文献综述 13-32 一、禽致病性大肠杆菌相关毒力基因 13-18 1.1 毒力岛 13 1.2 菌毛 13-14 1.3 摄铁系统 14-15 1.4 毒素 15 1.5 细菌抗宿主杀伤因子 15-16 1.6 管家基因 16-17 1.7 结论 17-18 二、Red 同源重组技术研究进展 18-25 2.1 Red 重组系统的结构及其重组机制 18-19 2.2 Red 同源重组类型 19-21 2.4 常用Red 同源重组系统相关质粒介绍 21-23 2.5 Red 同源重组基因敲除的策略及技术难点 23-24 2.6 Red 重组技术的应用前景展望 24-25 参考文献 25-32 研究一、致鹅卵黄性腹膜炎大肠杆菌cya、crp 双基因缺失突变株的构建 32-47 摘要 32-34 1. 材料 34-35 1.1 菌株、质粒 34 1.2 培养基和主要试剂 34-35 1.3 主要仪器 35 2. 方法 35-40 2.1 PCR 引物的设计 35-36 2.2 融合PCR 产物的制备和纯化 36-37 2.3 感受态细胞的制备及转化 37 2.4 电转化 37-38 2.5 质粒pKD46 的消除 38 2.6 第一次同源重组菌△cya::Cat 的PCR 鉴定 38-39 2.7 FLP 位点专一性重组 39 2.8 第二次重组菌△cya 的鉴定 39-40 2.9 禽致病性大肠杆菌△cya 突变株中crp 基因的缺失 40 3. 结果 40-44 3.1 融合PCR 产物的制备 40 3.2 第一次同源重组菌△cya::Cat 、△cya△crp::Cat 的PCR 鉴定 40-42 3.3 第二次重组菌△cya、△cya△crp 的鉴定 42-43 3.4 鉴定引物P3、P4;P7、P8 扩增△cya、△cya△crp 菌株染色体上序列分析 43-44 4. 讨论 44-46 参考文献 46-47 研究二、致鹅卵黄性腹膜炎大肠杆菌△cya△crp 双基因缺失突变株的相关功能性分析 47-59 摘要 47-48 1. 材料 48-49 1.1 菌株 48 1.2 实验动物 48 1.3 培养基 48 1.4 主要试剂及配制 48-49 1.5 仪器设备 49 2. 方法 49-51 2.1 细菌的生化鉴定 49 2.2 细菌生长曲线测定 49 2.3 突变株对鸡的致病力研究 49-51 3. 结果 51-55 3.1 细菌的生化鉴定 51 3.2 突变株的生长曲线测定 51-53 3.3 动物实验 53-55 4. 讨论 55-57 参考文献 57-59 致谢 59
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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 动物医学(兽医学) > 兽医基础科学 > 家畜微生物学(兽医病原微生物学) > 病原细菌
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