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海洋低温石油降解菌的筛选及其降解机理
作 者: 张月梅
导 师: 祖国仁
学 校: 大连工业大学
专 业: 微生物学
关键词: 石油烃 生物降解 低温石油降解菌 16S rDNA分子鉴定 影响因素 低温降解特性
分类号: X172
类 型: 硕士论文
年 份: 2010年
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内容摘要
石油的开采、运输和使用对环境造成了严重的污染,其中海洋的石油污染尤为严重,在我国北方地区,尤其北黄海和渤海海域,一年中有近5个月处于低温期,海水温度也多在15℃以下,而中温微生物在该温度下,代谢活动缓慢,不利于污染环境修复,本文从北极沉积物样品中筛选能低温降解石油烃的低温菌,以期为海洋石油烃污染的低温生物修复技术应用奠定基础。本文对从北极沉积物样品中筛选到的3株低温降解菌进行降解率试验;用形态学观察、生理生化试验和16S rDNA测序的方法对3株低温降解菌进行鉴定并构建系统发育树;通过生物摇床进行影响因素试验,确定最适营养条件和生长条件;通过柴油低温降解GC-MS图谱研究它们的降解特性;以汽油、机油、燃料油和原油这几种海上常见溢油为唯一碳源,对这3株菌以及混合菌群的降解率进行测定,研究它们对其它油品的作用。主要获得以下结果:经鉴定海洋低温石油降解菌BJ1、BJ9和BJ19均属于假交替单胞菌属(Pseudoalteromonas)。BJ1、BJ9和BJ19以及混合菌群的最适降解温度分别为:15℃,15℃,20℃,15℃;它们的最适降解pH值为:7~8;它们的最适降解初始油浓度分别为:2.5g/L,2.5g/L,10g/L,10g/L;它们的最适降解初始盐度范围是3.5%~7%;最适初始氮源浓度分别为:3g/L,4g/L,3g/L,4g/L;最适初始磷源浓度分别为:3g/L,2g/L,2g/L,2g/L。BJ1、BJ9和BJ19以及混合菌群对柴油中烷烃的降解效果要比芳烃的降解效果好,在30d内对柴油的降解率分别为68.01%、67.93%、59.52%和73.21%;对芳香烃的降解率分别为33.04%、20.44%、16.99%和13.21%。混合菌群对芳烃的降解效果比单个菌群的降解效果要差,BJ1对烷烃和芳烃的降解都较高并且降解性能稳定。以汽油、机油、燃料油和原油这几种海上常见溢油为唯一碳源,BJ1、BJ9、BJ19和混合菌群对汽油和机油降解效果明显,而对燃料油和原油降解效果较差。海洋低温石油降解菌低温降解特性的研究,将为我国低温海域石油烃污染物的清除,提供有效的生物修复技术方法。
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全文目录
摘要 4-5 Abstract 5-7 缩略词表 7-12 第一章 文献综述 12-24 1.1 石油污染物的产生及危害 12-13 1.1.1 石油污染物的来源 12 1.1.2 石油污染物带来的危害 12-13 1.2 海洋环境中石油污染物的修复技术 13-17 1.2.1 物理化学方法的应用 13 1.2.2 生物修复在海洋石油污染治理中的应用 13-15 1.2.3 影响生物修复的非生物因素 15-17 1.2.3.1 石油烃的种类和组成 15-16 1.2.3.2 石油烃物理状态 16 1.2.3.3 温度和 pH 值 16 1.2.3.4 氧和营养物质 16-17 1.3 国内外石油降解菌研究现状 17-19 1.3.1 降解石油的微生物种类 17-18 1.3.2 优势菌的高效降解性能研究 18-19 1.4 石油降解微生物的降解机理 19-21 1.4.1 微生物对烃的摄取 19 1.4.2 烷烃及芳香烃的降解机理 19-20 1.4.3 嗜冷性细菌低温降解机理及应用 20-21 1.5 气相色谱/质谱(GC-MS)方法分析微生物对石油烃各组分的降解效果 21 1.6 海洋低温石油降解微生物对多环芳烃降解效果的研究 21-23 1.6.1 细菌对 PAHs 的生物降解 22 1.6.2 以 PAHs 作为唯一的碳源和能源的代谢机理 22 1.6.3 PAHs的共代谢机理 22-23 1.7 低温石油降解菌的应用前景及展望 23-24 第二章 实验材料与方法 24-37 2.1 实验材料与仪器 24-26 2.1.1 优良菌源 24 2.1.2 实验用油 24 2.1.3 试剂 24-25 2.1.4 实验仪器设备 25 2.1.5 主要培养基 25-26 2.2 实验方法 26-37 2.2.1 海洋低温石油烃降解菌的逐级驯化 26-27 2.2.2 海洋低温石油烃降解菌的筛选与分离 27 2.2.3 红外测定残油方法 27-28 2.2.4 菌种的保存 28 2.2.5 菌种的初步鉴定 28-30 2.2.5.1 菌种形态学特征 28 2.2.5.2 菌种生理生化特性 28-30 2.2.6 海洋低温石油烃降解菌株的 16s rDNA 的分子学鉴定与系统发育树的构建 30-32 2.2.6.1 培养菌 30 2.2.6.2 细菌总基因组 DNA 的提取 30 2.2.6.3 16S rDNA 的 PCR 扩增 30-31 2.2.6.4 PCR 产物的纯化与回收 31-32 2.2.6.5 目的 DNA 与载体连接 32 2.2.6.6 16S rDNA 序列测定 32 2.2.7 海洋低温石油降解菌生长曲线的测定 32-33 2.2.8 单一菌株与混合菌比较实验 33 2.2.9 不同温度对菌株生长及石油烃降解率的影响 33 2.2.10 不同 pH 值对石油烃降解率的影响 33 2.2.11 不同初始油浓度值对石油烃降解率的影响 33 2.2.12 不同盐度对石油烃降解率的影响 33-34 2.2.13 不同营养盐对石油烃降解率的影响 34 2.2.13.1 不同氮源浓度对石油烃降解率的影响 34 2.2.13.2 不同磷源浓度对石油烃降解率的影响 34 2.2.14 培养天数对石油烃降解率的影响 34 2.2.15 气相色谱/质谱(GC-MS)方法分析微生物对石油烃各组分的降解效果 34-36 2.2.15.1 培养基及培养条件 34 2.2.15.2 样品前处理 34 2.2.15.3 GC-MS 条件 34-35 2.2.15.4 定性方法 35-36 2.2.15.5 降解率计算方法 36 2.2.16 海洋低温石油降解菌的碳源广谱性研究 36 2.2.17 海洋低温石油降解微生物对海洋常见几类油污的降解分析 36-37 2.2.17.1 仪器与方法 36-37 第三章 结果与讨论 37-60 3.1 海洋低温石油降解菌的分离与筛选 37 3.2 菌株的初步鉴定结果 37-43 3.2.1 菌种形态学特征 37-38 3.2.2 菌种生理生化特性 38-39 3.2.3 16S rDNA 序列扩增以及切胶回收结果 39-40 3.2.4 16S rDNA 的序列分析与系统发育树的构建 40-43 3.2.4.1 16S rDNA 的序列分析 40 3.2.4.2 系统发育树的构建 40-43 3.3 海洋低温石油烃降解菌的降解率影响因素的研究 43-50 3.3.1 海洋低温石油降解菌生长曲线的测定 43-44 3.3.2 单一菌株与混合菌比较实验 44 3.3.3 不同温度对石油烃降解率的影响 44-45 3.3.4 不同 pH 值对石油烃降解率的影响 45-46 3.3.5 不同初始油浓度值对石油烃降解率的影响 46-47 3.3.6 不同盐浓度对石油烃降解率的影响 47-48 3.3.7 不同营养盐对石油烃降解率的影响 48-49 3.3.7.1 不同氮源浓度对石油烃降解率的影响 48 3.3.7.2 不同磷源浓度对石油烃降解率的影响 48-49 3.3.8 培养天数对石油烃降解率的影响 49-50 3.4 气相色谱/质谱(GC-MS)方法分析微生物对石油各组分的降解效果 50-58 3.4.1 海洋低温石油降解微生物对柴油中总石油烃降解效果的研究 50-51 3.4.2 海洋低温石油降解微生物对石油中正构烷烃降解效果的研究 51-52 3.4.3 海洋低温石油降解微生物对多环芳烃降解效果的研究 52-58 3.4.3.1 海洋低温石油降解微生物对多环芳烃总烃降解效果的研究 52-53 3.4.3.2 海洋低温石油降解微生物 BJ1、BJ9 和 BJ19 对多环芳烃中萘族降解效果的研究 53-56 3.4.3.3 不同混合菌群对多环芳烃降解效果的研究 56-57 3.4.3.4 海洋低温石油降解菌 BJ1 对多环芳烃各组分降解效果的研究 57-58 3.5 海洋低温石油降解菌的碳源广谱性研究 58 3.6 海洋低温石油降解微生物对海洋常见几类油污的降解分析 58-60 第四章 结论 60-61 参考文献 61-66 致谢 66-67 发表的论文 67-68 附录 A 68-69 附录 B 69-70 附录 C 70-71 附录 D 71
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中图分类: > 环境科学、安全科学 > 环境科学基础理论 > 环境生物学 > 环境微生物学
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