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Ahil基因突变导致Joubert综合征的相关疾病机理研究
作 者: 翁翎
导 师: 唐北沙; 李晓江
学 校: 中南大学
专 业: 临床医学
关键词: Joubert综合征 Abelson helper integration site-1(Ahi1) 亨廷顿-相关蛋白1(Hap1) CEND1/BM88 Ahi1基因敲除小鼠 神经生长
分类号: R748
类 型: 博士论文
年 份: 2013年
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内容摘要
Joubert综合征(Joubert syndrome, JBTS)是一种十分少见的常染色体隐性遗传神经系统发育迟滞疾病。研究发现,Abelson helper integration site-1(AHI1)基因突变可导致N-端Ahi1蛋白片段形成,并导致Joubert综合征。但是AHI1基因突变引起发育迟滞的机制尚不明确。本研究发现,亨廷顿-相关蛋白1(Hap1),一种对出生后幼鼠存活率起关键作用的蛋白,可与全长Ahi1蛋白相结合,而不能与N-端Ahi1蛋白片段结合。这一Ahi1-Hap1结合在神经分化过程中受到神经生长因子(NGF)的调控。NGF诱导Hap1A的去磷酸化,并降低其与Ahi1的结合,同时Hap1A在神经突起末端的分布增多。对小鼠脑组织蛋白的分析也表明,Ahi1在胞浆而非突触部分与磷酸化的Hap1A结合,提示Ahi1主要在神经元胞体发挥生理作用。对小鼠脑组织胞浆成分进行抗Ahi1抗体免疫共沉淀后的质谱分析发现,除Hap1外,Ahi1还与CEND1/BM88蛋白结合。CEND1/BM88是一种特异表达于神经元的蛋白,参与调控神经分化和神经发生,在出生后小鼠的脑组织中高度表达。在Ahil基因敲除小鼠的下丘脑组织中,Ahil蛋白的缺失导致CEND1/BM88水平下降,小鼠发育迟滞。而在N2a细胞中过表达Ahil则能稳定CEND1/BM88。此外,对Ahil基因敲除小鼠下丘脑神经元进行原代培养发现,神经元的突起较野生型减少,长度较短。而在该原代神经元中过表达CEND1/BM88则可促进其神经元突起生长。本研究的发现提示,在早期发育过程中,CEND1/BM88参与Ahil相关的下丘脑神经元分化。上述发现对于研究Jourbert综合征中出现的发育迟滞的相关病理机制提供了新的思路。图27幅,表3个,参考文献79篇。
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全文目录
摘要 4-6 Abstract 6-8 目录 8-12 第一章 磷酸化对Ahi1与Hap1A相互作用影响的机理研究 12-40 前言 12-13 第一节 神经营养因子对Hap1A磷酸化的影响研究 13-26 1 仪器与材料 13-16 1.1 研究对象 13 1.2 主要仪器与试剂 13-16 1.2.1 主要试验仪器 13 1.2.2 主要试剂与耗材 13-15 1.2.3 主要试剂的配置 15-16 2 实验方法 16-22 2.1 PC12细胞培养 16-18 2.1.1 培养条件 16-17 2.1.2 细胞传代 17 2.1.3 细胞冻存 17-18 2.1.4 细胞的冻融(复苏) 18 2.2 各种神经营养因子刺激 18 2.3 蛋白样品的制备 18 2.4 样品蛋白浓度测定 18-19 2.5 Western Blotting步骤 19-21 2.6 PC12细胞的免疫荧光步骤 21-22 3 结果 22-24 3.1 不同的神经营养因子通过不同的信号通路调节Hap1A的磷酸化 22-23 3.2 NGF处理后Hap1A和Ahi1在细胞中的分布 23-24 4 分析和讨论 24-25 5 结论 25-26 第二节 Hap1A磷酸化对Ahi1与Hap1A相互作用的影响研究 26-40 1 仪器与材料 26-30 1.1 研究对象 26 1.2 主要仪器与试剂 26-30 1.2.1 主要试验仪器 26-27 1.2.2 主要试验试剂与耗材 27-28 1.2.3 主要试剂的配置 28-30 2 实验方法 30-36 2.1 PC12细胞培养 30-31 2.1.1 培养条件 30 2.1.2 细胞传代 30-31 2.2 NGF刺激和细胞蛋白样品的制备 31 2.3 细胞转染 31-32 2.4 小鼠蛋白样品的制备 32 2.5 免疫共沉淀 32-33 2.6 亚细胞分离 33-34 2.7 Western Blotting步骤 34-35 2.8 PC12细胞的免疫荧光步骤 35-36 3 结果 36-38 4 分析和讨论 38-39 5 结论 39-40 第二章 Ahi1基因敲除小鼠模型的构建及行为学 40-58 第一节 Ahi基因敲除小鼠模型的构建 40-51 1 仪器与材料 40-44 1.1 研究对象 40 1.2 主要仪器与试剂 40-44 1.2.1 主要试验仪器 40-41 1.2.2 主要试验试剂与耗材 41-42 1.2.3 主要溶液的配置 42-44 2 实验方法 44-48 2.1 实验技术路线 44 2.2 Ahi1基因敲除小鼠基因型鉴定 44-46 2.2.1 小鼠基因组DNA的提取 44-45 2.2.2 引物设计 45 2.2.3 PCR反应体系(表2-1,表2-2) 45-46 2.2.4 rCR反应条件 46 2.2.5 PCR扩增产物检测 46 2.3 小鼠蛋白样品的制备 46-47 2.4 Western Blotting步骤 47-48 3 结果 48-49 4 讨论 49-50 5 结论 50-51 第二节 Ahi基因敲除小鼠模型的行为学研究 51-58 1 仪器与材料 51 1.1 研究对象 51 1.2 主要试验仪器 51 2 实验方法 51-53 2.1 小鼠体重及形态学观察 51 2.2 小鼠自主活动实验(Locomotor Activity) 51 2.3 小鼠强迫游泳实验(Forced Swim Test,FST) 51-52 2.4 小鼠悬尾实验(Tail Suspension Test) 52-53 2.5 小鼠滚轮实验(Rotarod Test) 53 2.6 统计方法 53 3 结果 53-56 4 讨论 56-57 5 结论 57-58 第三章 Ahi1通过调节其互作蛋白CEND1介导神经分化的研究 58-90 第一节 Ahi1互作蛋白的筛查 58-68 1 仪器与材料 58-61 1.1 研究对象 58 1.2 主要仪器与试剂 58-61 1.2.1 主要试验仪器 58-59 1.2.2 主要试验试剂与耗材 59-60 1.2.3 主要溶液的配置 60-61 2 实验方法 61-65 2.1 实验技术路线 61-62 2.2 小鼠蛋白样品的制备 62 2.3 免疫共沉淀 62-63 2.4 质谱分析 63 2.5 Western Blotting步骤 63-65 3 结果 65-67 4 讨论 67 5 结论 67-68 第二节 Ahi1 KO小鼠中CEND1表达量的检测 68-77 1 仪器与材料 68-71 1.1 研究对象 68 1.2 主要仪器与试剂 68-71 2 实验方法 71-74 2.1 小鼠蛋白提取 71 2.2 Western Blotting 71-73 2.3 小鼠标本取材及切片的制备 73-74 2.4 小鼠脑片的免疫荧光 74 3 结果 74-76 4 结论 76-77 第三节 Ahi1与CEND1相互作用及其对神经突起分化的影响 77-90 1 仪器与材料 77-81 1.1 研究对象 77 1.2 主要仪器与试剂 77-81 1.2.1 主要试验仪器 77-78 1.2.2 主要试剂与耗材 78-79 1.2.3 主要溶液的配置 79-81 2 实验方法 81-85 2.1 细胞培养条件 81 2.1.1 PC12细胞的培养条件 81 2.1.2 N2A细胞的培养条件 81 2.2 小鼠下丘脑原代神经元培养 81-82 2.3 细胞转染及NGF处理,Cend1半衰期实验 82 2.4 Western Blotting 82-84 2.5 细胞免疫荧光步骤 84-85 3 结果 85-88 3.1 Ahi1蛋白稳定Cend1水平 85 3.2 Cend1的表达能减轻Ahi1突变引起的神经元分化异常 85-88 4 讨论 88-90 结论 90-91 参考文献 91-98 综述 98-117 参考文献 106-117 攻读学位期间主要的研究成果 117-118 致谢 118-119
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中图分类: > 医药、卫生 > 神经病学与精神病学 > 神经病学 > 儿童神经病
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