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平邑甜茶(M. hupehensis Rehd.)根系钙吸收调节与Ca~(2+)-ATPase特性研究
作 者: 李佳
导 师: 束怀瑞;杨洪强
学 校: 山东农业大学
专 业: 果树学
关键词: 根系 钙吸收 吲哚丁酸 蛋白激酶 Ca2+-ATPase 平邑甜茶
分类号: S661.1
类 型: 博士论文
年 份: 2004年
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内容摘要
本文以当年及二年生平邑甜茶(M. hupehensis Rehd.)为试材,在水培条件下研究了其根系 Ca2+吸收动力学特性、IBA 对其根系 Ca2+吸收和 Ca2+-ATPase 的调节以及Ca2+-ATPase 与平邑甜茶新梢钙含量的相关性,从信号传导角度研究了 IBA 调控钙素吸收的方式,结果如下: 1.根域 Ca2+浓度为 0.04~0.5 mmol/L 时,处理(100 μmol/L 的 IBA)和对照的幼苗根系 Ca2+吸收速率与 Ca2+浓度的关系符合米氏酶动力学模型;而钙浓度为0.5~5mmol/L 时,Ca2+吸收速率与 Ca2+浓度的关系无法用米氏方程拟合。IBA 提高了幼苗根系钙素吸收能力。 2.外源 Ca2+浓度及培养时间影响根系钙素吸收速率、根及叶片中的钙含量。试验过程中,高 Ca2+浓度处理的幼苗,根系 Ca2+吸收速率的增加值与其它处理相比表现为减小,叶片中钙含量增加幅度也减小;无钙处理的幼苗其地上部钙出现向下运送现象。 3.IBA 对根系 Ca2+吸收速率的促进作用与外源 Ca2+浓度及培养时间有关。与对照相比,100 μmol/L IBA 使在低 Ca2+浓度(0.03 mmol/L)营养液中培养 3 天的幼苗根系吸收速率增加 31.7%,培养在中等 Ca2+浓度的营养液中的幼苗根系 Ca2+吸收速率提高约50%,而在 3 mmol/L 的培养条件下,幼苗根系 Ca2+吸收速率仅提高 17.3%。继续在原培养液中培养平邑甜茶幼苗至 12 天,处理和对照的幼苗 Ca2+吸收速率均比处理 3 天时的高。100 μmol/L的IBA使得培养在低Ca2+浓度条件下的幼苗根系吸收速率提高了37.7%;中等浓度和高浓度钙条件下的幼苗根系吸收速率变化值相近,在 80%左右。高浓度的外源钙供应使根系吸收的钙在根部积累,从而影响根系对 Ca2+的继续吸收。中等浓度的Ca2+和生长素共用时根系 Ca2+吸收能力最强。 4.在不含 Ca2+的培养液中培养 3 天的幼苗,IBA 的加入使得根部的钙含量增加(约100μg/gDW),地上部的钙有向下运送的趋势。叶片中钙含量也有增加,但增加量(约48μg/gDW)较小。IBA 处理对培养 12 天的幼苗根和叶片含量的影响不显著。 在含有高浓度Ca2+的培养液中培养3天的幼苗,IBA的加入增加了根中的钙含量(约 1<WP=10>平邑甜茶根系钙吸收调节与 Ca2+-ATPase 特性研究增加 140%),叶片中的钙含量增加了 58%。培养 12 天时,叶片和根中的钙含量均比处理 3 天时的对应含量高。与对照相比,IBA 处理使根中钙含量增加,本试验中,根部钙含量为 9.5 mg/gDW 时,根吸收的钙在根中有较多的积累,叶片中钙含量降低,IBA 对植株整体钙素吸收的影响不大。 在中等浓度 Ca2+的培养液中培养 3 天的幼苗,IBA 处理与对照的叶片和根中钙含量均表现出显著性差异。IBA 处理的根中钙含量比对照的低,叶片中钙含量比对照的高。培养 12 天时,IBA 处理不影响叶片中钙含量,但影响根中钙含量,使其降低。培养 12天的幼苗叶片和根中的钙含量均比处理 3 天时的对应含量高。 低浓度 Ca2+条件下,培养 3 天的幼苗,IBA 处理的幼苗根中钙含量低于对照的根中钙含量,处理的叶片中钙含量高于对照的叶片中钙含量。培养 12 天的幼苗,处理对根和叶片中钙含量的影响同处理 3 天的。IBA 促进了根部钙的向上运送, IBA 对植株钙素营养更有意义。 5.外源 Ca2+浓度和 IBA 均影响根系 Ca2+-ATPase 活性,在 0~3 mmol/L Ca2+浓度范围内,随着Ca2+浓度的升高,根系Ca2+-ATPase 活性增强,长出新根后的根系Ca2+-ATPase活性则进一步增强。IBA 对根系 Ca2+-ATPase 活性有促进作用,而且这一作用在新根长出后更强。 6.平邑甜茶根系的总 Ca2+-ATPase 活性在发根高峰期和非发根高峰期差异不大。发根高峰期的根系内质网和液泡膜 Ca2+-ATPase 活性较质膜为高,非发根高峰期的根系内质网膜 Ca2+-ATPase 活性高于液泡膜和质膜。钙通道抑制剂 Nif 和 Ver 均影响植株的钙含量,进而影响根系 Ca2+-ATPase 活性,但却不能显著影响 IBA 对 Ca2+-ATPase 的激活作用;Ca2+-ATPase 抑制剂 EB 不影响植株的钙含量,可抑制 Ca2+-ATPase 活性。 7.100 μmol/L 的 IBA 使根系蛋白激酶和 Ca2+-ATPase 活性在 2~3 h 内升高数十倍,之后很快下降,蛋白激酶活性变化明显早于 Ca2+-ATPase;蛋白激酶抑制剂 Quercetin 不仅抑制苹果根系膜蛋白的磷酸化,也显著削弱 IBA 对 Ca2+-ATPase 的激活作用。在对 IBA的响应中,Ca2+-ATPase 是信号转导途径中的成员,IBA 通过蛋白磷酸化激活根系Ca2+-ATPase 而起作用。引起苹果根系膜蛋白磷酸化反应的蛋白激酶是丝氨酸/苏氨酸型蛋白激酶,磷酸化反应主要发生在丝氨酸残基上。 8.在含 100 μmol/L IBA 的培养液中培养 1、2、2.5、3 小时的平邑甜茶,其根系可溶性蛋白电泳条带不同。处理 2 小时和 2.5 小时的根系可溶性蛋白在 70KD 左右处均有一条带,前者的丰度高于后者,处理 1 小时和 3 小时的根系可溶性蛋白在此处没有带出 2<WP=11>山东农业大学博士学位论文现。4 个处理的其它可溶性蛋白条带出现的位置相同。 9.由根系提取的蛋白质粗提液,在 55%硫酸铵饱和度下沉淀,透析后依次过DEAE-52 柱和 SephacrylS-200 柱,收集并合并能检测到 Ca2+-ATPas
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全文目录
中文摘要 9-12 英文摘要 12-16 英文缩略表 16-18 1 前言 18-42 1.1 概述 18-19 1.2 植物钙素吸收 19-29 1.2.1 植物钙素吸收机制 19-21 1.2.2 细胞原生质膜上的钙转移系统及特性 21-25 1.2.3 植物体内钙的存在形式 25-26 1.2.4 果树的钙素吸收及调节 26-29 1.3 生长素的作用机理 29-31 1.3.1 生长素的种类及 IAA、IBA 的特性 29-30 1.3.2 生长素的作用机理 30-31 1.4 生长素的信号传导 31-37 1.4.1 生长素的信号传导途径 31-33 1.4.2 生长素的信号传导组分 33-37 1.5 植物体内的 Ca~(2+)-ATPase 及其特性 37-40 1.5.1 植物体内 Ca~(2+)-ATPase 的类型及生理功能 37 1.5.2 植物体内 Ca~(2+)-ATPase 的活性调节 37-39 1.5.3 植物体内 Ca~(2+)-ATPase 的基因表达调节 39-40 1.6 本研究的目的和意义 40-42 2 材料与方法 42-50 2.1 试验材料 42 2.1.1 植物材料 42 2.1.2 主要仪器 42 2.2 试验设计 42-45 2.2.1 IBA(根用)和不同浓度 Ca~(2+)对根系钙素吸收的影响 42-43 2.2.2 钙通道抑制剂和钙泵抑制剂对根系钙素吸收的影响 43 2.2.3 IBA 对平邑甜茶根系质膜和内膜 Ca~(2+)-ATPase 活性的影响 43 2.2.4 发根高峰和非发根高峰期的盆栽平邑甜茶根系 Ca~(2+)-ATPase 活性 43-44 2.2.5 IBA 促进根系钙素吸收的作用方式 44 2.2.6 IBA(叶用)对一年生平邑甜茶体内贮藏钙的调运 44 2.2.7 内质网 Ca~(2+)-ATPase 的提取、分离、纯化及其特性研究 44-45 2.3 试验方法 45-50 2.3.1 根系表面积及吸收液中 Ca~(2+)含量测定 45 2.3.2 总钙的测定(湿灰化法) 45 2.3.3 土壤理化性质分析 45 2.3.4 膜组分的制备及酶活性测定 45-47 2.3.4.1 膜组分的制备 45 2.3.4.2 可溶性组分的制备 45 2.3.4.3 膜蛋白质浓度的测定 45 2.3.4.4 H~+-ATPase 活性测定 45-46 2.3.4.5 Ca~(2+)-ATPase 活性测定 46 2.3.4.6 膜蛋白中磷酸化氨基酸残基的确定 46-47 2.3.4.7 膜蛋白激酶活性的测定 47 2.3.5 质膜、液泡膜、内质网膜的分离及部分纯化 47 2.3.5.1 质膜、液泡膜的分离及部分纯化 47 2.3.5.2 内质网膜的粗分离 47 2.3.6 钙形态分级 47 2.3.7 Ca~(2+)-ATPase 的粗分离及部分纯化 47-48 2.3.7.1 粗提取液的制备 47 2.3.7.2 硫酸铵沉淀 47-48 2.3.7.3 离子交换层析 48 2.3.7.4 Sephacryl S-200 分子筛层析 48 2.3.7.5 蛋白质纯度鉴定 48 2.3.8 蛋白质分子量的测定 48-50 2.3.8.1 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 48-49 2.3.8.2 蛋白质分子量测定 49-50 3 结果与分析 50-80 3.1 根域钙浓度对平邑甜茶根系钙吸收的影响 50-53 3.1.1 根系钙吸收动力学特性 50 3.1.2 钙浓度对幼苗根系钙吸收速率的影响 50-52 3.1.3 钙浓度对幼苗根及叶片中钙含量的影响 52-53 3.2 IBA 对平邑甜茶根系钙素吸收的调节 53-60 3.2.1 IBA 对幼苗根系钙吸收特征的影响 53-54 3.2.2 IBA 处理对幼苗根系钙吸收速率的影响 54-55 3.2.3 IBA 处理对幼苗根及叶片中钙含量的影响 55-58 3.2.4 IBA 处理和钙浓度对幼苗根系总 Ca2+-ATPase 活性的影响 58-60 3.2.4.1 不同钙浓度条件下的幼苗根系总 Ca2+-ATPase 活性 58-59 3.2.4.2 外源 IBA 处理对幼苗根系总 Ca2+-ATPase 活性的影响 59-60 3.2.4.3 IBA 对平邑甜茶根系质膜和内膜 Ca2+-ATPase 活性的影响 60 3.3 平邑甜茶根系 Ca~(2+)-ATPase 特性 60-67 3.3.1 不同发根期的根系 Ca~(2+)-ATPase 活性变化 60-62 3.3.2 根系 Ca~(2+)-ATPase 提取及部分纯化 62-65 3.3.2.1 硫酸铵饱和度的选择 62 3.3.2.2 离子交换层析和分子筛层析 62-65 3.3.3 根系 Ca~(2+)-ATPase 的特性分析 65-67 3.3.3.1 pH 值和温度对 Ca~(2+)-ATPase 活性的影响 65 3.3.3.2 Ca~(2+)-ATPase 的底物特异性 65-66 3.3.3.3 EB 对 Ca~(2+)-ATPase 活性的影响 66-67 3.4 IBA 对平邑甜茶根系 Ca~(2+)-ATPase 的调节 67-74 3.4.1 根系膜蛋白磷酸化 67-71 3.4.1.1 定量定性分析磷酸化氨基酸 67-69 3.4.1.2 根系膜蛋白磷酸化的氨基酸残基 69-71 3.4.2 IBA 影响 Ca~(2+)-ATPase 的作用方式 71-73 3.4.2.1 IBA 和 Quercetin 对根系膜组蛋白总激酶活性的影响 71 3.4.2.2 IBA 和 Quercetin 对根系膜组分 Ca~(2+)-ATPase 活性的影响 71 3.4.2.3 根系膜蛋白总激酶活性和 Ca~(2+)-ATPase 活性变化比较 71-72 3.4.2.4 蛋白激酶抑制剂对 IBA 作用效果的抑制 72-73 3.4.3 IBA 处理引起的根系膜可溶性组分的变化 73-74 3.5 Ca~(2+)-ATPase 与平邑甜茶新梢钙含量的相关性 74-80 3.5.1 钙通道与 Ca~(2+)-ATPase 抑制剂对植株钙含量的影响 74-76 3.5.1.1 外源 IBA 和不同抑制剂对根系钙素吸收的影响 74-75 3.5.1.2 外源 IBA 和不同抑制剂对根系 Ca~(2+)-ATPase 活性的影响 75-76 3.5.2 IBA 对新梢 Ca~(2+)-ATPase 活性及钙含量的影响 76-77 3.5.3 IBA 处理对新梢生长量及其相对钙含量的影响 77 3.5.4 IBA 对新梢中钙存在形态的影响 77-80 4 讨论 80-89 4.1 平邑甜茶根系钙素吸收受根部钙库的影响 80 4.2 IBA 促进根系钙素吸收的机制 80-82 4.3 Ca~(2+)-ATPase 的生理作用 82-84 4.4 IBA 通过蛋白磷酸化作用激活 Ca~(2+)-ATPase 84-86 4.5 毛细管电泳技术用于检测磷酸化氨基酸的优势 86-87 4.6 苹果树体钙素吸收调节的理论与实践意义 87-89 5 结论 89-90 6 参考文献 90-106 7 附录 106-108 8 致谢 108-109 9 攻读学位期间发表论文情况 109
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中图分类: > 农业科学 > 园艺 > 果树园艺 > 仁果类 > 苹果
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