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尼帕病毒性脑炎诊断与免疫防制技术的研究
作 者: 王喜军
导 师: 申之义;步志高
学 校: 内蒙古农业大学
专 业: 预防兽医学
关键词: 尼帕病毒 融合蛋白 受体结合蛋白 重组杆状病毒 重组痘病毒 DNA免疫
分类号: S855.3
类 型: 硕士论文
年 份: 2005年
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内容摘要
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尼帕病毒性脑炎(Nipah virus Encephalitis,NiVE)是由尼帕病毒(Nipah virus,NiV)引起的一种新的烈性人兽共患传染病,也是国际上重要的生物武器研究对象及生物反 恐 防 范 对 象 。 NiV 为 副 粘 病 毒 科 ( Paramyxoviridae ) 副 粘 病 毒 亚 科(Paramyxovirinae)的 Henipavirus 属成员。融合蛋白 F 和受体结合蛋白 G 是 NiV的主要结构蛋白及免疫原。 本研究构建了分别表达 NiV 融合蛋白 F 和受体结合蛋白 G 的重组杆状病毒rBac-NF 和 rBac-NG。SDS-PAGE、Western-Blot 表明分子量分别为 61KD 和 66KD 左右的重组 F 蛋白(rNF)和 G 蛋白(rNG)在 rBac-NF 和 rBac-NG 感染的 sf9 昆虫细胞中获得表达,并具有特异免疫反应原性。以 rBac-NF 和 rBac-NG 感染的昆虫细胞裂解物稀释后直接包被 ELISA 板,检测兔抗灭活 NiV 全病毒高免血清中抗 F 蛋白、G蛋白特异抗体时,显示出高度敏感性和特异性。以 rBac-NF、rBac-NG 分别感染 sf9细胞和培养上清混合物为免疫原,按 250μl 剂量腹腔注射和 100μl 剂量肌肉注射免疫 BALB/c 小鼠。以 NiV F 蛋白和 G 蛋白囊膜嵌合水疱性口炎病毒(VSV)假病毒颗粒(表示为 VSV?G* GFP-NiV(F+G))替代 NiV 进行中和抗体检测,按病毒粒子感染率80%以上被抑制为判定标准,重组杆状病毒rBac-NF和rBac-NG表达蛋白rNF和 rNG 免疫小鼠诱导中和抗体滴度分别在 1:32 和 1:64 以上,rNG 免疫小鼠诱导中和抗体水平高于 rNF。结果表明,杆状病毒表达 rNF 和 rNG 具有替代 NiV 全病毒,作为非疫区安全、敏感和特异的诊断抗原的潜力;rNF 和 rNG 作为重组亚单位疫苗具有防制 NiVE 的应用潜力。 本研究进一步分别构建了表达 F 蛋白和 G 蛋白的重组 WR 株牛痘病毒 rVV-NF 和rVV-NG。SDS-PAGE、Western-Blot 证实,分子量分别为 61KD、66KD 左右的 F 蛋白和 G 蛋白分别在 rVV-NF 和 rVV-NG 感染的 Hela 细胞中获得表达。细胞融合试验结果显示 rVV-NF 和 rVV-NG 表达的重组 F 蛋白和 G 蛋白具有良好的生物学活性。为 NiV F蛋白和 G 蛋白结构与功能以及基因工程活载体疫苗的研究奠定了基础。 为探索 DNA 疫苗防制 NiVE 的有效性,本研究构建了表达 NiV 融合蛋白 F 和受体结合蛋白G的真核表达质粒pCAGG-NiV-F和pCAGG-NiV-G。两种质粒DNA分别按100μg剂量肌肉注射免疫 BALB/c 小鼠。两次加强免疫, 三周后以杆状病毒表达 F 蛋白、G蛋白为包被抗原,间接 ELISA 分别检测到免疫鼠血清产生显著的 NiV F 蛋白、G 蛋白特异抗体反应;同时,用 NiV F 蛋白、G 蛋白囊膜嵌合 VSV 假病毒颗粒 VSV?G* GFP-NiV(F+G)替代 NiV 进行中和抗体检测,按病毒粒子感染率 80%以上被抑制为判定标准,pCAGG-NiV-G DNA 免疫小鼠诱导中和抗体滴度(在 1:32 以上)高于pCAGG-NiV-F DNA 免疫小鼠诱导中和抗体滴度(在 1:2 以上)。研究结果证实 DNA 免
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全文目录
1 引言 9-19 1.1 尼帕病毒性脑炎概况 9-11 1.1.1 流行病学 9-10 1.1.2 临床表现 10-11 1.1.3 病理学变化 11 1.2 病原及其分子生物学特性 11-14 1.2.1 病原 11-12 1.2.2 尼帕病毒的基因组结构、结构蛋白及其功能 12-14 1.3 NiV与其它副粘病毒的关系 14-16 1.4 NiVE的诊断 16-17 1.5 预防与控制 17 1.6 本论文研究依据及意义 17-19 2 实验部分 19-53 2.1 试验一 尼帕病毒F蛋白和G蛋白DNA免疫原性的研究 19-25 2.1.1 材料与方法 19-22 2.1.1.1 病毒 19-20 2.1.1.2 基因材料与载体 20 2.1.1.3 主要试剂 20 2.1.1.4 细胞系与实验动物 20 2.1.1.5 一步法制备DH5α大肠杆菌感受态 20 2.1.1.6 真核表达质粒pCAGG-NiV-F和pCAGG-NiV-G的构建与鉴定 20-21 2.1.1.7 真核表达质粒pCAGG-NiV-F和pCAGG-NiV-G的大量制备 21 2.1.1.8 NiV-F和NiV-G基因表达蛋白的生物活性检测 21 2.1.1.9 DNA免疫小鼠实验 21 2.1.1.10 间接ELISA检测DNA免疫小鼠血清中的特异性抗体 21-22 2.1.1.11 中和试验检测DNA免疫小鼠血清中的特异性中和抗体 22 2.1.2 结果 22-24 2.1.2.1 真核表达质粒pCAGG-NiV-F和pCAGG-NiV-G的酶切鉴定 22 2.1.2.2 NiV F和G基因表达蛋白的生物活性检测 22-23 2.1.2.3 间接ELISA检测DNA免疫小鼠血清中的特异性抗体 23 2.1.2.4 中和试验检测DNA免疫小鼠血清中的特异性中和抗体 23-24 2.1.3 讨论 24-25 2.2 实验二 重组杆状病毒表达尼帕病毒F和G蛋白的研究 25-45 2.2.1 材料与方法 25-36 2.2.1.1 病毒、载体和受体菌 25-26 2.2.1.2 主要试剂 26 2.2.1.3 细菌培养基 26 2.2.1.4 实验动物、细胞系及其培养基 26 2.2.1.5 引物的设计与合成 26-27 2.2.1.6 利用Bac-To-Bac杆状病毒表达系统构建重组病毒 27-31 2.2.1.7 间接免疫荧光检测重组杆状病毒表达蛋白 31 2.2.1.8 原核表达F蛋白和G蛋白片段免疫小鼠制备血清 31-34 2.2.1.9 重组杆状病毒表达蛋白的Western Blot检测 34-35 2.2.1.10 重组杆状病毒表达蛋白免疫反应原性的检测 35 2.2.1.11 重组杆状病毒表达蛋白免疫原性的检测 35-36 2.2.2 结果 36-43 2.2.2.1 重组质粒pFastBac~(TM)1-NF和pFastBac~(TM)1-NG的鉴定 36-37 2.2.2.2 重组杆状病毒穿梭质粒rBacmid-NF和rBacmid-NG的鉴定 37 2.2.2.3 重组杆状病毒的PCR鉴定 37-38 2.2.2.4 间接免疫荧光(IFA)检测重组杆状病毒表达蛋白 38 2.2.2.5 PCR扩增F’和G’基因 38 2.2.2.6 序列测定 38-39 2.2.2.7 原核表达质粒的鉴定 39 2.2.2.8 原核表达F’和G’蛋白SDS-PAGE电泳分析 39-40 2.2.2.9 原核表达蛋白的纯化 40 2.2.2.10 重组杆状病毒表达蛋白的Western-Blot检测 40-41 2.2.2.11 重组杆状病毒表达蛋白免疫反应原性的检测 41 2.2.2.12 重组杆状病毒表达蛋白免疫原性的检测 41-43 2.2.3 讨论 43-45 2.3 实验三表达尼帕病毒F和G蛋白重组牛痘病毒的构建 45-53 2.3.1 材料与方法 45-48 2.3.1.1 病毒、基因材料 45 2.3.1.2 载体、菌株和试剂 45 2.3.1.3 引物设计 45 2.3.1.4 重组转移载体pSC11-NF和pSC11-NG的构建 45-46 2.3.1.5 转染 46-47 2.3.1.6 重组牛痘病毒的筛选 47 2.3.1.7 重组牛痘病毒的鉴定 47-48 2.3.1.8 重组牛痘病毒表达蛋白活性的检测 48 2.3.2 结果 48-52 2.3.2.1 重组转移载体pSC11-NF和pSC11-NG的鉴定 48-49 2.3.2.2 重组牛痘病毒的蚀斑纯化 49-50 2.3.2.3 重组牛痘病毒的PCR鉴定 50 2.3.2.4 重组牛痘病毒表达蛋白活性的检测 50-52 2.3.3 讨论 52-53 3 结论 53-54 致谢 54-55 参考文献 55-61 附录 61-63 作者简介 63
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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 动物医学(兽医学) > 兽医传染病学 > 病毒病
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