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干酪中五种生物胺的HPLC快速分析技术研究
作 者: 孙宁
导 师: 赵新淮
学 校: 东北农业大学
专 业: 农产品加工及贮藏工程
关键词: 生物胺 干酪 提取溶剂 柱前衍生 高效液相色谱法
分类号: TS252.7
类 型: 硕士论文
年 份: 2008年
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内容摘要
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干酪在世界各国素有“乳制品之王”的美称,是一种营养价值丰富的产品。我国乳品工业在经历乳粉、液态乳加工阶段后,进入干酪阶段。在干酪的成熟过程中,会形成生物胺。高浓度的生物胺不仅影响食品风味,而且对人体有严重的危害,应引起足够重视。因此建立一种适用于干酪中生物胺的快速分析技术是十分必要的。本试验从分析样品前处理、衍生、检测器入手,建立了一个简便、快捷、灵敏、高效的液相色谱分析方法,得到了以下研究结果:1.以邻苯二甲醛(OPA)为衍生试剂,构建了一个生物胺柱前衍生HPLC分析条件。衍生条件:衍生2 min,乙酸乙酯萃取6 min后HPLC分析。色谱条件:大连依利特Hypersil ODS2(4.6 mm×250 mm,5μm)色谱柱;紫外检测波长为335 nm;荧光检测激发波长(Ex) 336nm,发射波长(Em)466 nm;流动相为KH2PO4-甲醇(体积比30:70),流速0.8 mL·min-1,进样量10μL,柱温35℃。2.分别运用HPLC-荧光检测器和HPLC-二极管陈列检测器,对五种生物胺进行检测。荧光检测在0.1~10 mg·L-1浓度范围内呈线性范围,组胺、酪胺最低检出限为0.010 mg·L-1,色胺最低检出限为0.005 mg·L-1,腐胺、尸胺最低检出限为0.015 mg·L-1。紫外检测在4~40 mg·L-1的浓度范围内呈线性范围,组胺最低检出限为2 mg·L-1,酪胺、尸胺最低检出限为0.8 mg·L-1,色胺、腐胺最低检出限为1 mg·L-1。3.采用三氯乙酸、无水乙醇、甲醇为提取溶剂,对干酪样品进行提取。样品匀浆提取2次、正己烷净化处理、衍生后,进行HPLC分析,采用外标法定量。(1)三氯乙酸提取:添加量为2.5 mg·L-1时,荧光测定回收率达到80.4%~107.1%,相对标准偏差小于7.8%。添加量为5.0 mg·L-1时,荧光测定回收率达到78.2%~101.3%,相对标准偏差小于6.1%;紫外测定回收率达到80.0%~110.7%,相对标准偏差小于6.7%。添加量为10 mg·L-1时,荧光测定回收率达到79.6%~106.6%,相对标准偏差小于6.0%;紫外测定回收率达到75.7%~103.1%,相对标准偏差小于7.6%。(2)无水乙醇提取:添加量为5.0 mg·L-1时,荧光测定回收率在37.8%~118.0%之间,相对标准偏差在5.1%~21.2%之间;紫外测定回收率在23.5%~115.2%之间,相对标准偏差在1.1%~15.2%之间。添加量为10 mg·L-1时,荧光测定回收率在39.5 %~150.9 %之间,相对标准偏差在2.9 %~19.5%之间;紫外测定回收率在38.3%~131.1%之间,相对标准偏差在1.6%~15.7%。(3)无水甲醇提取:添加量为5.0 mg·L-1时,荧光测定回收率在48.2%~127.7%之间,相对标准偏差在5.4%~28.0%之间;紫外测定回收率在63.2%~113.9%,相对标准偏差在4.0%~26.4%之间。添加量为10 mg·L-1时,荧光测定回收率在26.7%~148.4%之间,相对标准偏差在7.3%~27.2%之间;紫外测定回收率在31.3%~162.1%,相对标准偏差在5.5%~27.9%之间。通过三种提取方法的比较,确认三氯乙酸提取是快速、高效的提取方法,样品前处理时间约为30 min,整体分析时间约为100 min,适用于干酪中生物胺分析。
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全文目录
摘要 8-10 Abstract 10-12 1. 引言 12-25 1.1 生物胺概述 12-13 1.2 生物胺来源及产生生物胺的食品 13-14 1.2.1 生物胺的来源 13 1.2.2 产生生物胺的食品 13-14 1.3 生物胺与食品安全 14-15 1.4 干酪中的生物胺 15-18 1.4.1 影响干酪中生物胺形成的因素 15-17 1.4.2 干酪中生物胺的控制技术 17-18 1.5 食品中生物胺的研究进展 18-24 1.5.1 样品前处理 18-19 1.5.2 生物胺的分析方法 19-24 1.6 研究目的及意义 24-25 2. 材料与方法 25-30 2.1 材料 25-26 2.1.1 原料与化学试剂 25-26 2.1.2 主要仪器 26 2.2 方法 26-30 2.2.1 干酪的制作及保存 26 2.2.2 干酪中生物胺的HPLC 检测 26-30 3. 结果与分析 30-48 3.1 柱前衍生条件的选择 30-34 3.1.1 衍生剂的选择 30 3.1.2 衍生时间的选择 30-31 3.1.3 衍生物萃取剂的选择 31-33 3.1.4 萃取后静置时间的选择 33-34 3.2 色谱条件的选择 34-39 3.2.1 检测波长的选择 34-35 3.2.2 柱温的选择 35 3.2.3 流动相的选择 35-36 3.2.4 缓冲液pH 的选择 36 3.2.5 衍生反应缓冲液浓度的确定 36-38 3.2.6 检测器的选择 38-39 3.3 样品的前处理 39-41 3.3.1 生物胺提取溶剂的选择 39-41 3.3.2 净化方法的确定 41 3.4 标准曲线、线性范围及检测限 41-42 3.4.1 荧光检测的标准曲线、线性范围及检测限 41-42 3.4.2 紫外检测的标准曲线、线性范围及检测限 42 3.5 回收率及相对标准偏差的测定 42-46 3.5.1 三氯乙酸提取回收率及相对标准偏差 42-43 3.5.2 无水乙醇提取回收率及相对标准偏差 43-45 3.5.3 甲醇提取回收率及相对标准偏差 45-46 3.6 三种溶剂提取的比较 46-48 4. 讨论 48-52 4.1 柱前衍生优化 48-49 4.1.1 邻苯二甲醛的确定 48 4.1.2 衍生过程优化 48-49 4.2 色谱条件的确定 49-50 4.2.1 柱温的确定 49 4.2.2 流动相及pH 的确定 49 4.2.3 检测器的确定 49-50 4.3 样品的前处理方法 50-51 4.3.1 样品的提取 50-51 4.3.2 样品的净化 51 4.4 三种提取溶剂的比较分析 51-52 5. 结论 52-53 致谢 53-54 参考文献 54-58 攻读硕士学位期间发表的学术论文 58
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中图分类: > 工业技术 > 轻工业、手工业 > 食品工业 > 乳品加工工业 > 产品标准与检验
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