学位论文 > 优秀研究生学位论文题录展示
重组AAV(rAAV)杆状病毒生产系统的研究
作 者: 雷求刚
导 师: 钱其军
学 校: 浙江理工大学
专 业: 生物化学与分子生物学
关键词: AAV载体 杆状病毒 rAAV2-EGFP 病毒生产
分类号: Q789
类 型: 硕士论文
年 份: 2010年
下 载: 77次
引 用: 0次
阅 读: 论文下载
内容摘要
|
腺相关病毒(Adeno-associated Viruses, AAV)感染人体后不会产生致病性,通过去除病毒基因仅保留两端ITR序列进一步增加了重组AAV载体的安全性,而且其携带的基因表达期比较长,因此在基因治疗领域越来越受到人们的关注。然而,传统的生产方式很难满足临床上对AAV载体高产量的需求,这成为AAV载体在临床应用上的一个重大瓶颈,探索一种高效、安全和可放大的生产方式以得到高产量的AAV载体是满足其临床需求的必要条件。除了腺病毒和单纯疱疹病毒外,杆状病毒也能为AAV的复制包装提供辅助功能,而且杆状病毒不会像腺病毒和单纯疱疹病毒一样对人体产生毒性,因此,利用杆状病毒携带AAV包装所需的顺式和反式作用元件,借助杆状病毒对昆虫细胞Sf9的感染性,在昆虫细胞中生产重组AAV载体,是一种较为理想且能满足临床需求的新型重组AAV生产方式。重组AAV的杆状病毒生产系统需要两类反式因子:一是AAV的复制蛋白Rep78和Rep52,另外一类是AAV的衣壳蛋白Cap1,Cap2和Cap3,可以由两个杆状病毒分别携带或者由单一的杆状病毒携带。该系统所需的另外一个顺式组分是携带AAV2的ITR及外源表达框(如EGFP)的重组杆状病毒。根据AAV2的Rep和Cap基因序列设计引物,PCR扩增Rep78、Rep52、Cap1及Cap2+3。Rep78和Cap2+3一组,Rep52和Cap1一组分别构建到pFastBacDual载体中。另外,我们借助一个能在昆虫细胞中起作用的内含子将Rep和Cap基因构建到一个同一载体中,借助内含子的作用,Rep表达框能同时表达Rep78和Rep52,而Cap表达框能同时表达Cap1和Cap2+3。将这几个载体分别转化DH10Bac?感受态通过转座重组得到重组Bacmid ,转染昆虫细胞得到重组杆状病毒Bac-AAV2Rep78Cap2+3、Bac-AAV2Rep52Cap1和Bac-AAV2RepiCapi。采用类似的方法得到重组杆状病毒Bac-AAV2EGFP。其中,Bac-AAV2Rep78Cap2+3, Bac-AAV2Rep52Cap1和Bac-AAV2EGFP共感染Sf9细胞构成三杆状病毒生产系统,Bac-AAV2RepiCapi和Bac-AAV2EGFP共感染Sf9细胞构成两杆状病毒生产系统,两套系统分别用来生产带EGFP的重组AAV2载体rAAV2-EGFP。经初步研究证明,三杆状病毒系统和二杆状病毒系统都能成功包装出rAAV2-EGFP病毒。生产出的病毒经AAV纯化试剂盒纯化,通过定量PCR检测病毒载体基因组产量,结果显示:三杆状病毒生产能力为每个Sf9细胞4.85×103VG(Virus vector genomes,病毒载体基因组),而二杆状病毒达到了每个Sf9细胞6.12×10~4VG。进一步转导HEK293细胞后经流式细胞仪检测:前者生产能力为每个Sf9细胞3TU (Transduction Unit,转导单位),后者则达到30TU左右,且感染HEK293细胞后都能看到较强的绿色荧光表达,说明病毒活力较强。从各项检测的结果来看,二杆状病毒系统的生产能力更强,如果将其放大到较大规模的悬浮培养生产方式,产量和生产效率将得到极大提高。因此,杆状病毒生产系统这种高效、安全、可放大的生产方式大大简化了生产过程,降低了生产成本,能够满足基因治疗和临床上对AAV产量的需求。
|
全文目录
摘要 8-10 Abstract 10-15 缩略词表 15-16 第一部分 文献综述与实验设计 16-34 第一章 腺相关病毒载体及其在基因治疗中的应用 17-22 1 腺相关病毒简介. 17-18 2 腺相关病毒载体及其在基因治疗中的应用 18-22 2.1 腺相关病毒载体 18-20 2.1.1 重组腺相关病毒(rAAV)制备的基本原理 18-19 2.1.2 腺相关病毒载体的特点 19-20 2.2 AAV 载体在基因治疗上的应用 20-22 第二章 腺相关病毒载体(rAAV)生产方式的进展 22-28 1 质粒转染加腺病毒感染的方式 22-23 2 完全采用质粒转染的方式 23 3 采用稳定细胞系的方式. 23-25 4 新型rAAV 生产系统:杆状病毒-昆虫细胞生产系统 25-28 第三章 实验设计方案及课题内容 28-34 1 本课题研究目的和意义 28 2 实验设计方案. 28-29 3 课题创新点. 29-30 4 实验内容及流程图. 30-34 第二部分 研究论文 34-82 第一章 重组pFastBacDual 载体的构建及菌内转座重组产生重组 Bacmid 35-60 1 实验器材 35-40 1.1 材料 35 1.2 仪器和设备. 35-36 1.3 试剂及试剂盒 36 1.4 主要试剂的配制 36-38 1.5 所用引物 38-39 1.6 所用LINKER 39-40 2 实验方法 40-51 2.1 重组pFBD 载体构建 40-50 2.1.1 pFBD-AAV2Rep78Cap2+3 及pFBD-AAV2Rep52Cap1 载体的构建 40-45 2.1.2 pFBD-AAV2RepiCapi 载体的构建 45-48 2.1.3 pFBD-AAV2EGFP 载体的构建 48-50 2.2 重组pFBD 载体在DH108ac?中的转座重组及重组Bacmid 的提取 50-51 2.2.1 重组pFBD 载体在DH108ac?中的转座重组 50 2.2.2 重组Bacmid 的大量抽提及PCR 鉴定 50-51 3 结果 51-58 3.1 相关基因或片段的PCR 结果 51-54 3.2 pFBD-AAV2Rep78 及pFBD-AAV2Rep52 的酶切鉴定 54-55 3.3 pFBD-AAV2Rep78Cap2+3 及pFBD-AAV2Rep52Cap1 载体的酶切鉴定 55 3.4 pFBD-AAV2Repi 载体的酶切鉴定 55-56 3.5 pFBD-AAV2RepiCapi 载体的酶切鉴定 56 3.6 pFBD-AAV2EGFP 的酶切鉴定 56 3.7 重组Bacmid 的PCR 鉴定. 56-58 4 讨论 58-60 第二章 重组杆状病毒的包装、扩增及滴度测定 60-69 1 实验器材 60-61 1.1 材料与试剂. 60 1.2 仪器和设备. 60 1.3 荧光定量PCR 引物 60-61 2 实验方法 61-64 2.1 Sf9 细胞的培养 61 2.2 重组杆状病毒的包装 61 2.3 重组杆状病毒的扩增 61-62 2.4 重组杆状病毒DNA 的提取 62 2.5 荧光定量PCR 测定重组杆状病毒的滴度 62-64 2.5.1 Bac-AAV2Rep52Cap1、Bac-AAV2Rep78Cap2+3 和Bac-AAV2RepiCapi 的滴度测定. 62-63 2.5.2 Bac-AAV2EGFP 的滴度测定 63-64 3 结果 64-67 3.1 重组Bacmid 的转染效果 64-65 3.2 重组杆状病毒的滴度测定 65-67 3.2.1 Bac-AAV2Rep52Cap1、Bac-AAV2Rep78Cap2+3 和Bac-AAV2RepiCapi 的滴度测定. 65-66 3.2.2 Bac-AAV2EGFP 的滴度测定 66-67 4 讨论 67-69 第三章 重组 AAV 的生产、纯化、滴度和活力测定 69-82 1 实验器材 69-72 1.1 材料与试剂. 69 1.2 仪器和设备. 69-70 1.3 试剂的配制 70-72 2 实验方法 72-76 2.1 Western Blot 检测Rep Cap 基因的表达 72-73 2.2 rAAV2-EGFP 的生产 73-74 2.2.1 rAAV2-EGFP 的三杆状病毒包装系统 73 2.2.2 rAAV2-EGFP 的二杆状病毒包装系统 73-74 2.3 rAAV2-EGFP 的纯化 74 2.4 滴度测定及生产能力的初步评估 74-75 2.4.1 病毒基因组滴度测定及生产能力评估 74-75 2.4.2 转导单位数滴度测定及生产能力评估 75 2.5 病毒活力的检测 75-76 3 结果 76-80 3.1 杆状病毒生产系统Rep Cap 基因表达的Western 检测 76 3.2 rAAV2-EGFP 病毒基因组滴度检测及生产能力的初步评估 76-77 3.3 rAAV2-EGFP 转导单位数滴度检测及生产能力的初步评估 77-79 3.4 病毒活力的检测 79-80 3.4.1 三杆状病毒生产系统 rAAV2-EGFP 病毒活力检测 79 3.4.2 二杆状病毒生产系统 rAAV2-EGFP 病毒活力检测 79-80 4 讨论 80-82 结论 82-84 参考文献 84-88 在学期间发表的文章 88-89 致谢 89
|
相似论文
- 磷酸化介导的UGT1A3代谢活性差异的初步研究,R346
- 鸡传染性法氏囊病毒颗粒疫苗的研制及其免疫效果的研究,S858.31
- 猪圆环病毒2型ORF2基因在昆虫杆状病毒表达系统的表达及亚单位疫苗的初步研究,S858.28
- 特异性siRNA在肺结核疾病核酸疫苗开发中的研究,Q789
- OPCML蛋白在杆状病毒—昆虫系统中的表达及其活性研究,R737.31
- 猪输血传播病毒流行病学调查与Cap蛋白表达及感染性克隆构建,S858.28
- 猪Mx1 cDNA分子的克隆、表达和鉴定,S828
- CYP3A4及其四种突变体与POR和Cyt b5三重共表达体系的建立与活性比较,Q78
- HPV16型重组表位疫苗的研制,Q789
- 抗菌肽Dermaseptin S4在杆状病毒表达系统中的表达与纯化,Q78
- 人Ⅱ型CD74及人源与疟原虫来源MIF在昆虫细胞中的表达研究,Q78
- 基于SFV复制子的重组杆状病毒的研究,Q78
- 淮南猪IL-2基因的克隆及在大肠杆菌和昆虫细胞中的表达,Q78
- 牛γ-干扰素和人溶菌酶共表达载体的构建和表达产物的纯化,Q78
- 重组杆状病毒高效筛选方法的建立,Q78
- 人内皮抑素在家蚕培养细胞和幼虫中表达的研究,Q786
- 对虾杆状病毒1197基因的表达和产物纯化的研究,Q786
- A群猪轮状病毒OSU株VP7基因的克隆及其在杆状病毒中的表达,S852.65
- hIL-4基因的克隆及在家蚕反应器上的表达,Q78
- 霍乱毒素B亚基和小麦小孢子特异表达β-expansin基因的表达研究,Q789
中图分类: > 生物科学 > 分子生物学 > 基因工程(遗传工程) > 基因工程的应用
© 2012 www.xueweilunwen.com
|