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应用基因组改组技术选育真菌α-淀粉酶高产菌株
作 者: 刘源慧
导 师: 郑毅
学 校: 福建师范大学
专 业: 微生物学
关键词: α-淀粉酶 米曲霉 诱变 基因组改组 发酵优化
分类号: TQ925
类 型: 硕士论文
年 份: 2011年
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内容摘要
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以实验室保藏的米曲霉FS-16为原始出发菌株,通过传统诱变方法构建正突变库。通过致死曲线的测定,确定紫外诱变照射剂量为160s,微波诱变辐射剂量为25s。出发菌株分别经紫外诱变、微波诱变,采用淀粉平板透明圈初筛、液体发酵复筛,最终从2000多个突变株中筛选到α-淀粉酶产量较高稳定性较好的突变株FU-8、FU-26、FW-111及FW-130。通过单因素实验获得米曲霉原生质体制备和再生的最佳条件:菌龄15h,酶解温度28℃、裂解时间2.5h、0.6mol/L NaCl作为渗透压稳定剂,含0.6mol/L NaCl的PDA培养基为再生培养基。通过响应面分析法对破壁酶系统进行研究,获得最佳酶系组成为:蜗牛酶0.8%、纤维素酶0.8%、溶菌酶0.5%。通过米曲霉原生质体灭活实验得出,用紫外线处理180S或热处理12min,米曲霉原生质体即可达到100%灭活;原生质体融合条件研究表明最适融合条件为:PEG30%,Ca2+0.02mol/L,融合时间10min,融合温度30℃。以原始菌株FS-16和诱变筛选出的突变株FU-8、FU-26、FW-111及FW-130作为亲本,采用基因组改组技术,经过三轮递推式融合后筛选得到一株能够稳定遗传的改组菌株F3-542,其酶活较原始菌株提高了61.5%,发酵周期也相对缩短了24h,达到了选育高产菌株的目的。对改组菌株F3-542的发酵条件进行优化,首先通过单因素实验可知最佳碳源为玉米粉,最佳有机氮源为牛肉膏,最佳无机氮源为硝酸钠。最适培养条件为:初始pH值为6;接种量为10%;装液量为50mL/250mL三角瓶。通过均匀设计法对培养基配方进行进一步优化,获得它们的最佳组合(g/L):玉米粉56,牛肉膏26,NaNO34.5,K2HP041.4,MgS041.5,FeS040.005。整体优化后,改组菌F3-542从最初酶活力为3920U/mL提高至5147.5U/mL,比最初酶活力提高了31.3%。
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全文目录
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摘要 2-3Abstract 3-5中文文摘 5-7目录 7-12绪论 12-28 1 α-淀粉酶的概述 12-18 1.1 淀粉及淀粉酶 12-13 1.1.1 淀粉 12 1.1.2 淀粉酶 12-13 1.2 α-淀粉酶 13-18 1.2.1 α-淀粉酶的应用 14-15 1.2.2 α-淀粉酶的活性测定方法 15 1.2.3 α-淀粉酶的来源与生产 15-16 1.2.4 α-淀粉酶菌种的选育进展 16-18 2 基因组改组育种技术 18-24 2.1 基因组改组技术的原理 18-19 2.2 基因组改组技术的优点 19-20 2.3 基因组改组技术的应用实例 20-21 2.4 基因组改组技术的方法 21-24 2.4.1 原生质体制备和再生 21-22 2.4.2 原生质体融合 22-23 2.4.3 融合子的检出 23-24 3 发酵条件的优化研究 24-26 3.1 发酵培养基的研究 24 3.2 发酵培养条件的研究 24-25 3.3 试验设计与优化 25-26 4 本论文的目的意义及研究内容 26-28第一章 米曲霉传统诱变的研究 28-40 1 材料与方法 28-31 1.1 实验材料 28-30 1.1.1 菌种 28 1.1.2 主要药品与试剂 28-29 1.1.3 主要仪器 29 1.1.4 培养基 29-30 1.2 实验方法 30-31 1.2.1 α-淀粉酶活力的测定 30 1.2.2 葡萄糖对米曲霉α-淀粉酶合成的影响 30 1.2.3 诱变处理过程 30-31 1.2.3.1 单孢子悬液的制备 30-31 1.2.3.2 紫外线处理 31 1.2.3.3 微波处理 31 1.2.4 突变株筛选 31 1.2.4.1 突变株初筛 31 1.2.4.2 突变株复筛 31 2 结果与分析 31-37 2.1 葡萄糖对米曲霉α-淀粉酶合成的影响 31-33 2.1.1 摇瓶培养中葡萄糖对米曲霉α-淀粉酶合成的影响 32-33 2.1.2 平板培养中葡萄糖对米曲霉α-淀粉酶合成的影响 33 2.2 紫外诱变构建正突变库 33-35 2.2.1 紫外诱变剂量的选择 33-34 2.2.2 紫外诱变菌株的筛选结果 34-35 2.3 微波诱变构建正突变库 35-37 2.3.1 微波诱变剂的选择 35 2.3.2 微波诱变菌株的筛选结果 35-37 3 讨论与小结 37-40 3.1 不同诱变方法对构建正突变库的影响 37 3.2 不同初筛方案对筛选正突变株的影响 37-38 3.3 小结 38-40第二章 米曲霉原生质体制备与再生条件研究 40-52 1 材料与方法 40-41 1.1 实验材料 40-41 1.1.1 菌种 40 1.1.2 主要药品与试剂 40 1.1.3 主要仪器 40 1.1.4 培养基 40-41 1.2 实验方法 41 1.2.1 菌丝体培养 41 1.2.2 酶液的配制 41 1.2.3 原生质体的制备与再生 41 2. 结果和分析 41-50 2.1 菌龄的选择 41-42 2.2 酶液组成的选择 42-46 2.2.1 单一酶液对原生质体形成量的影响 42-43 2.2.2 响应面分析实验 43-46 2.3 酶解时间的选择 46 2.4 酶解温度的选择 46-47 2.5 渗透压稳定剂的选择 47-48 2.6 再生培养基的选择 48-49 2.7 米曲霉原生质体形态观察 49-50 3 讨论与小结 50-52第三章 基因组改组选育α-淀粉酶高产菌株 52-66 1 材料与方法 52-55 1.1 实验材料 52-53 1.1.1 菌种 52 1.1.2 主要药品与试剂 52-53 1.1.3 主要仪器 53 1.1.4 培养基 53 1.2 实验方法 53-55 1.2.1 米曲霉原生质体灭活标记 53-54 1.2.2 米曲霉原生质体融合 54 1.2.3 米曲霉基因组改组 54-55 2 结果与分析 55-63 2.1 米曲霉原生质体灭活实验 55-56 2.1.1 紫外灭活 55 2.1.2 热灭活 55-56 2.2 米曲霉原生质体融合条件的选择 56-59 2.2.1 PEG浓度的选择 56-57 2.2.2 融合时间的选择 57 2.2.3 融合温度的选择 57-58 2.2.4 Ca~(2+)浓度的选择 58-59 2.3 米曲霉基因组改组 59-63 2.3.1 出发菌株的确定 59 2.3.2 第一轮基因组改组 59-60 2.3.3 第二轮基因组改组 60 2.3.4 第三轮基因组改组 60-61 2.3.5 改组菌F3-542与原始菌株FS-16的性状比较 61-63 2.3.6 改组菌F3-542的稳定性实验 63 3 讨论与小结 63-66第四章 米曲霉F3-542产α-淀粉酶发酵优化 66-76 1 材料与方法 66-68 1.1 实验材料 66 1.1.1 菌种 66 1.1.2 主要药品与仪器 66 1.1.3 培养基 66 1.2 实验方法 66-68 1.2.1 培养方法 66-67 1.2.2 α-淀粉酶活力的测定 67 1.2.3 单因素实验 67 1.2.4 均匀设计法优化培养基配方试验 67-68 2 结果与分析 68-74 2.1 单因素实验 68-71 2.1.1 碳源对产酶的影响 68 2.1.2 氮源对产酶的影响 68-69 2.1.3 培养基初始pH值对产酶的影响 69-70 2.1.4 装液量对产酶的影响 70-71 2.1.5 接种量对产酶的影响 71 2.2 均匀设计法优化培养基配方试验 71-74 3 小结 74-76第五章 结论与展望 76-78 1 研究结论 76-77 1.1 米曲霉传统诱变育种构建正突变库 76 1.2 米曲霉原生质体制备和再生的研究 76 1.3 米曲霉基因组改组育种 76 1.4 突变株F3-542发酵优化 76-77 1.5 米曲霉α-淀粉酶高产菌株总结图 77 2 展望 77-78参考文献 78-84攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 84-86致谢 86-88个人简历 88-90
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中图分类: > 工业技术 > 化学工业 > 其他化学工业 > 发酵工业 > 酶制剂(酵素)
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