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北京鸭催乳素受体基因、雌激素受体α,β基因的克隆与分析
作 者: 王杰
导 师: 刘小林;侯水生
学 校: 西北农林科技大学
专 业: 遗传学
关键词: 北京鸭 催乳素受体基因 雌激素受体α,β基因 克隆 表达
分类号: S834
类 型: 硕士论文
年 份: 2007年
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内容摘要
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我国蛋鸭、肉鸭和鹅的饲养量均居世界之首。其中蛋鸭存栏量占亚洲的80%、世界的66%。这标志着我国需要更多地种鸭,选育优质高产的种鸭势在必行,而传统育种手段费力费时,分子辅助育种研究的开展为育种提供了新的思路。如果我们能找到一些与鸭繁殖性能相关的多态性位点,则能为我国种鸭分子辅助育种提供理论基础。催乳素受体(PRLR)作为催乳素(PRL)的特异性受体,可调节PRL的一系列生理学功能,PRLR基因位于鸡Z染色体上,与其繁殖性能有重要关系,可作为畜禽繁殖性能的一个候选基因。有研究表明雌激素受体(ESR)也可作为繁殖性能的候选基因。但是到目前为止,鸭催乳素受体基因和雌激素受体基因的序列还没有报道。本试验以北京鸭为材料克隆PRLR cDNA和ESR cDNA序列,分析其序列特征;使用半定量RT-PCR检测了PRLR mRNA和ESR mRNA在北京鸭各组织中的表达情况。为北京鸭的分子育种提供理论基础。通过本文的研究,获得以下进展:1.利用RT-PCR技术扩增获得了北京鸭催乳素受体(dPRLR) cDNA长为2499bp的全编码区(GenBank登录号EF205054),该序列包含ATG起始密码子和TAA终止密码子,可编码832个氨基酸。除去24个氨基酸残基的信号序列,成熟的dPRLR包含808个氨基酸残基,分子量约为91.5 kDa。成熟的dPRLR的可以分为三个域,胞外域、跨膜域和胞内域。胞外域(ECD)包含两个串联重复的单元,称为远膜单元和近膜单元,分别含有204和212个氨基酸。每个重复单元包含有两对保守的Cys残基和一个WS基序,两个WS基序均由WSEWS构成,两个重复单元间具有66.7%的相似性。位于蛋白中间的跨膜域有24个氨基酸残基。胞内域(ICD)位于C端包含368个氨基酸残基,在胞内域含有两个保守的区,分别称为Box1和Box2。所有这些特征同鸡以及哺乳动物PRLR一致,说明北京鸭PRLR的作用机制类似于其它物种。序列相似性分析表明北京鸭PRLR同其它物种相比在核酸水平上具有44.8%~96.5%的相似性,在氨基酸水平上具有29.6%~96.1%的相似性,同家鹅的相似性最高。进化分析表明北京鸭催乳素受体与家鹅、火鸡、鸡、鸽子的催乳素受体进化关系较近。半定量PCR结果显示PRLR mRNA在北京鸭肝脏、胸肌、肾脏、睾丸、卵巢均有表达,在肾脏中的表达量最高。2.利用RT-PCR技术扩增获得了北京鸭ESRα和ESRβ的部分cDNA序列。ESRα部分序列长1593bp,可编码531个氨基酸(GenBank登录号EF205052);ESRβ部分序列长1085bp,可编码361个氨基酸(GenBank登录号EF621308)。序列特征分析表明,两序列均可分为五个域A/B、C、D、E。比对分析显示ESRα和ESRβ各域的相似性分别为:A/B为11.5%,C为90%,D为30%,E为35%。可见C域在ESRα和ESRβ中高度保守,说明ESRα和ESRβ具有相似的目标作用基因。核定位信号预测结果表明,ESRα含有两个核定位信号区,一个位于C域,另一个位于D域;ESRβ只有一个核定位信号区位于C域。ESR mRNA表达分析表明不管ESRα还是ESRβ在母鸭中的表达量均高于公鸭。在肾脏中ESRα的表达量明显低于ESRβ;在睾丸和卵巢中均是ESRα的表达量明显高于ESRβ;在肝脏中两者几乎一样。3.获得PRLR基因由1325个碱基组成的部分DNA序列(GenBank登录号EF502053),该序列有一个长为635bp内含子。外显子部分可编码230个氨基酸。序列分析表明,该序列由第9外显子的一部分(57bp)、第9内含子(635bp)、以及第10外显子的一部分(633bp)组成。可为发掘催乳素受体多态性位点提供基础。
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全文目录
摘要 5-7 ABSTRACT 7-13 第一章 文献综述 13-25 1 催乳素与催乳素受体 13-20 1.1 催乳素的一般特征 13 1.2 催乳素的合成与分泌 13-14 1.3 催乳素受体(PRLR)的结构 14-15 1.4 PRLR 的表达分布 15-16 1.5 PRLR 基因的剪接多样性及组织特异性表达 16 1.6 PRLR 基因的定位 16-17 1.7 PRLR 介导的信号传导途径 17-19 1.7.1 PRLR 的激活 17-18 1.7.2 PRLR 所介导的信号传导 18-19 1.8 PRLR 基因的多态性研究 19-20 2 雌激素与雌激素受体 20-23 2.1 雌激素 20-21 2.2 雌激素受体(ESR)的类型 21 2.3 ESR 的结构 21 2.4 ESR 基因的定位 21-22 2.5 ESR 的表达调控 22 2.6 ESR 的作用机制 22-23 3 立题意义、依据及技术路线 23-25 3.1 立题意义、依据 23-24 3.2 技术路线 24-25 第二章 北京鸭催乳素受体(PRLR) CDNA 序列的克隆与分析 25-38 1 材料与方法 25-30 1.1 材料 25-27 1.1.1 动物组织 25 1.1.2 酶及化学试剂 25 1.1.3 主要仪器 25 1.1.4 引物及测序 25-27 1.2 方法 27-30 1.2.1 总 RNA 的提取 27 1.2.2 15t Strand cDNA 的合成 27-28 1.2.3 RT-PCR 扩增 PRLR cDNA 28 1.2.4 PCR 产物的纯化 28-29 1.2.5 PCR 产物的连接与转化 29 1.2.6 菌液 PCR 29 1.2.7 进化树的构建 29-30 1.2.8 分析软件 30 2 结果 30-35 2.1 北京鸭 PRLR cDNA 的扩增及序列特征分析 30-34 2.1.1 北京鸭各组织总 RNA 的提取 30-31 2.1.2 北京鸭 PRLR RT-PCR 扩增结果 31-32 2.1.3 北京鸭 PRLR 的序列特征 32-34 2.1.4 北京鸭 PRLR 的相似性分析 34 2.2 北京鸭 PRLR 进化分析 34 2.3 北京鸭 PRLR m RNA 表达分析 34-35 3 讨论 35-37 3.1 北京鸭 PRLR cDNA 的克隆 35-36 3.2 系统进化树的构建 36 3.3 北京鸭 PRLR m RNA 的表达 36-37 4 小结 37-38 第三章 北京鸭雌激素受体(ESR) CDNA 序列的克隆与分析 38-47 1 材料与方法 38-40 1.1 材料 38-39 1.1.1 动物组织 38 1.1.2 酶及化学试剂 38 1.1.3 主要仪器 38 1.1.4 引物及测序 38-39 1.2 方法 39-40 1.2.1 总 RNA 的提取 39 1.2.2 15t Strand cDNA 的合成 39 1.2.3 RT-PCR 扩增 ESR cDNA 39-40 1.2.4 PCR 产物的纯化 40 1.2.5 PCR 产物的连接与转化 40 1.2.6 菌液 PCR 40 1.2.7 分析软件 40 2 结果 40-45 2.1 北京鸭 ESR cDNA 的扩增 40-42 2.1.1 北京鸭 ESR αRT-PCR 扩增结果 40-41 2.1.2 北京鸭 ESR βRT-PCR 扩增结果 41-42 2.2 北京鸭 ESR cDNA 的序列分析 42-44 2.2.1 北京鸭 ESR αcDNA 的序列分析 42-44 2.2.2 北京鸭 ESR βcDNA 的序列分析 44 2.3 北京鸭 ESR 表达分析 44-45 3 讨论 45-46 3.1 北京鸭 ESR α、βcDNA 的克隆 45-46 3.2 北京鸭 ESR α、βm RNA 的表达 46 4 小结 46-47 第四章 北京鸭催乳素受体(PRLR) 部分 DNA 序列的克隆与分析 47-52 1 材料与方法 47-49 1.1 材料 47 1.1.1 样品 47 1.1.2 试剂及软件 47 1.1.3 主要仪器 47 1.1.4 引物及测序 47 1.2 方法 47-49 1.2.1 全血 DNA 的提取 47-48 1.2.2 PCR 扩增 PRLR DNA 片断 48-49 1.2.3 PCR 产物的纯化、连接与转化及菌液 PCR 49 2 结果 49-50 2.1 北京鸭 PRLR 基因部分序列 PCR 扩增结果 49 2.2 北京鸭 PRLR DNA 部分序列测序结果 49-50 3 讨论 50-51 4 小结 51-52 第五章 结论 52-53 参考文献 53-60 附录 60-75 致谢 75-76 个人简介 76
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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 家禽 > 鸭
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