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β-Glucan Enhances Anti-Tumor Immune Responses by Regulating Suppressor and Effector Cells in Melanoma Mouse Model

作 者: Samuel Essien-Baidoo
导 师: 王胜军
学 校: 江苏大学
专 业: 临床检验诊断学
关键词: β-glucan GITRL MDSC Treg Th17 Dectin-1
分类号: R446.63
类 型: 博士论文
年 份: 2013年
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内容摘要


目的:(1)利用β-葡聚糖刺激树突状细胞(Dendritic cells, DCs)表面Dectin-1(DC-associated C-type lectin)受体,观察DC细胞表面糖皮质激素诱导的肿瘤坏死因子受体家族相关配体(glucocorticoid-induced TNFR-related protein ligand, GITRL)的表达情况;研究β-葡聚糖处理过的DC刺激Th17细胞反映的情况;建立小鼠黑色素瘤模型,观察β-葡聚糖对肿瘤发生发展的影响,并研究体内β-葡聚糖对Th17反应的影响。(2)利用Curdlan刺激MDSC细胞,观察MDSC细胞的数量以及精氨酸酶的变化情况;建立小鼠黑色素瘤模型,观察Curdlan对肿瘤发生发展的影响以及对荷瘤小鼠体内MDSC浸润情况的影响。(3)利用无花果多糖(FCPS)刺激DC细胞,研究FCPS对DC细胞成熟度以及免疫刺激能力的影响,并寻求其作用的信号通路。方法:1.1利用流式细胞术(FCM)检测BMDC细胞表面dectin-1受体的表达;1.2利用β-葡聚糖刺激BMDC细胞,采用FCM检测细胞表面GITRL的表达情况;1.3体外将β-葡聚糖刺激后的BMDC与效应性T细胞(Teff)、调节性T细胞(Treg)或仅与效应性T细胞共培养,采用[3H]TdR掺入试验检测β-葡聚糖刺激后的DC对Treg的抑制功能和对效应性T细胞增殖的影响。1.4采用FCM检测GITRL对Th17比例、数目以及相关细胞因子和转录因子的表达情况;1.5建立小鼠小鼠黑色素瘤模型,通过观察经β-葡聚糖处理后肿瘤的发展进程,采用流式细胞术和qRT-PCR检测小鼠体内GITRL, Th17细胞以及相关细胞因子的变化情况。2.1体外采用Curdlan刺激MDSC细胞,利用FCM检测MDSC细胞的比例,并检测精氨酸酶的活性;2.2建立小鼠黑色素瘤模型,观察肿瘤的发展进程,并通过FCM检测荷瘤小鼠体内浸润的MDSC细胞的比例。3.1采用无花果多糖(FCPS)刺激BMDC细胞,通过Western-blot检测FCPS激活的下游信号分子;3.2FCPS刺激BMDC,检测BMDC细胞表面分子CD40, CD80, CD86, MHCII的表达以及相关炎症因子的表达情况;3.3体外将FCPS刺激后的BMDC与效应性T细胞(Teff),采用[3H]TdR掺入试验检测FCPS刺激后的DC对效应性T细胞增殖的影响,从而反映DC的免疫刺激能力。结果:1.1经FCM检测,BMDC细胞表面表达dectin-1受体;1.2FCM结果显示,p-葡聚糖能够上调BMDC细胞表面的GITRL的表达;1.3体外增殖试验及Treg免疫抑制功能试验表明,β-葡聚糖刺激DC后表面上调的mGITRL能够通过GITR/GITRL系统促进效应性T细胞增殖,损害Treg的抑制功能;1.4通过FCM, qRT-PCR以及ELISA结果显示GITRL能够增加Th17细胞的数量以及RORyt和IL-17的表达;1.5肿瘤模型结果显示,β-葡聚糖能够延缓肿瘤的发展进程,上调体内DC表面GITRL的表达,从而增强体内Th17细胞的反应。2.1FCM结果显示,Curdlan能够显著降低MDSC细胞的数量以及精氨酸酶的表达;2.2通过小鼠肿瘤模型,我们发现,p-葡聚糖能够延缓黑色素瘤的发展进程,并显著降低小鼠体内MDSC细胞的浸润。3.1通过Western-blot检测发现,FCPS能够通过dectin-1途经活化BMDC细胞内Syk分子;3.2FCM以及qRT-PCR结果显示,FCPS能够促进BMDC细胞的活化与成熟,促进DC细胞IL-12,IFN-y,IL-6以及IL-23的mRNA表达水平;3.3体外共培养实验结果表明,FCPS能够增强DC细胞的免疫刺激能力,促进效应性T细胞的增殖。结论:(1)体内和体外实验表明,β-葡聚糖能够通过dectin-1途经上调DC表面GITRL的表达,从而增强Th17细胞的免疫应答,进而延缓肿瘤的发生发展。(2)体内和体外实验表明,Curdlan能够下调MDSC细胞的数量以及精氨酸的表达,从而延缓肿瘤的发生发展。(3)体外实验表明,FCPS能够通过dectin-1/Syk途经促进DC细胞的活化与成熟,增强DC细胞的免疫刺激能力,从而促进T细胞的增殖。

全文目录


Abstract  8-12
摘要  12-15
List of Abbreviations  15-18
Table of Contents  18-22
List of Figures  22-23
Chapter 1  23-55
  1.1  23-28
    1.1.0 General Review (Background)  23
    1.1.1 β-Glucan Sources and Structure  23-26
    1.1.2 Particulate β-Glucans  26
    1.1.3 Soluble β-Glucans  26-27
    1.1.4 Active Moiety of β-Glucans  27
    1.1.5 Effects of β-Glucans on the Immune System  27-28
  1.2  28-32
    1.2.0 Dectin-1  28-32
  1.3  32-35
    1.3.0 GITR and GITRL  32-33
    1.3.1 The GITR/GITRL System in APCs  33-35
  1.4  35-40
    1.4.0 Th17  35-37
    1.4.1 Th17 and Cancer  37-38
    1.4.2 Th17 and Treg Cells  38-40
  1.5  40-48
    1.5.0 Myeloid-Derived Suppressor Cell Biology  40-41
    1.5.1 Murine and Humans MDSCs  41-42
    1.5.2 Murine MDSC in Tumors  42-43
    1.5.3 Human MDSCs  43-44
    1.5.4 MDSC Generation and Expansion  44-47
    1.5.6 Suppressive Activity of MDSC  47-48
    1.5.7 Myeloid-Derived Suppressor Cell Modulation  48
  1.6  48-51
    1.6.0 Melanoma  48-49
    1.6.1 Melanoma Microenvironment and MDSC Immunosuppressivity  49-50
    1.6.2 Neutralization of Immunosuppression in Melanoma  50-51
  1.7  51-55
    1.7.0 Statement of Problem Hypothesis and Experimental Design  51-53
    1.7.1 Specific Aims and Objectives  53-55
Chapter 2 Up-Regulation of GITRL on Bone Marrow-derived Dendritic Cells by β-Glucans Improves Anti-Tumor Immunity via Enhancing the Expansion of Th17 Cells in Melanoma  55-78
  2.1.0 Introduction  55-58
  2.1.1 Materials and Methods  58-65
    2.1.1.1 β-Glucan  58
    2.1.1.2 Bone Marrow-derived DC (BMDC)  58-59
    2.1.1.3 In vitro Proliferation Assays  59-60
    2.1.1.4 Cell line, Mice and Tumor Models  60
    2.1.1.5 Recombinant GITRL Protein  60-61
    2.1.1.6 Preparation of Single Cell Suspension from Tumors  61
    2.1.1.7 Cell Culture  61-62
    2.1.1.8 Flow Cytometry  62-63
    2.1.1.9 Quantitative Real-Time PCR (qRT-PCR)  63-65
      2.1.1.9.1 Enzyme-linked Immunosorbent Assay (ELISA)  64
      2.1.1.9.2 Statistical analysis  64-65
  2.1.2 Results  65-74
    2.1.2.1 β-Glucan Induces the Up-Regulation of GITRL on BMDCs via Dectin-1  65-66
    2.1.2.2 Increased GITRL Expression on BMDCs by β-glucan Impairs Treg-mediated Suppressive Effect and Enhances Teff Proliferation  66-67
    2.1.2.3 Th17 Cell Generation is Enhanced in GITRL Treated Mice in vitro  67-68
    2.1.2.4 GITRL expression on BMDCs are markedly augmented and tumor progression is delayed after β-glucan treatment  68-69
    2.1.2.5 Augmented CD4+IL-17+Tcells Are Induced Following β-Glucan Treatment  69-72
    2.1.2.6 Expressions of Th17 Signature Molecules is Augmented after β-Glucan Treatment  72-74
  2.1.3 Discussion  74-78
Chapter 3 Curdlan Enhances Anti-Tumor Immune Responses by Regulating the Proportion and Function of Myeloid-Derived Suppressor Cells in Melanoma  78-89
  3.1.0 Introduction  78-81
  3.1.1 Materials and Methods  81-83
    3.1.1.1 Preparation of β-Glucan (Curdlan)  81
    3.1.1.2 Cell Line, Mice and Tumor Models  81-82
    3.1.1.3 Preparation of Single Cell Suspensions  82
    3.1.1.4 Isolation of MDSCs  82
    3.1.1.5 Flow Cytometry  82
    3.1.1.6 Detection of Arginase Activity  82-83
    3.1.1.7 In vitro Proliferation Assays  83
    3.1.1.8 Data Analysis  83
  3.1.2 Results  83-86
    3.1.2.1 Curdlan Reduces The Number and arginase level of MDSCs In Vitro  83-85
    3.1.2.2 Curdlan Treatment Reduces MDSC Proportions and Delays Tumor Growth  85-86
  3.1.3 Discussion  86-89
Chapter 4 FCPS Up-Regulate Dectin-1 on Bone Marrow-derived Dendritic Cells via Syk and Enhances DC Maturation and Proliferation of Effector T cells  89-102
  4.1.0 Introduction  89-91
  4.1.1 Materials and Methods  91-94
    4.1.1.1 FCPS (Ficus carica polysaccharide)  91
    4.1.1.2 Bone Marrow-derived DC (BMDC)  91-92
    4.1.1.3 Cell Culture  92
    4.1.1.4 Western blot analysis  92
    4.1.1.5 Flow Cytometry  92-93
    4.1.1.6 Quantitative Real-Time PCR (qRT- PCR)  93-94
    4.1.1.7 Statistical analysis  94
  4.1.2 Results  94-100
    4.1.2.1 Dectin-1 expression on BMDC  94-95
    4.1.2.2 FCPS induces Syk activation to bind Dectin-1 in BMDCs  95-96
    4.1.2.3 FCPS Stimulation of BMDCs Enhances Increased Expressions of Inflammatory Factors  96
    4.1.2.4 FCPS promotes DC maturation via Dectin-1  96-99
    4.1.2.5 FCPS Stimulated BMDCs Show Increased T Effector Cell Proliferation  99-100
  4.1.3 Discussion  100-102
Chapter 5  102-108
  5.1.0 Main Conclusions  102-105
  5.1.1 Main Innovations  105
  5.1.2 Research Prospects  105-108
References  108-130
Publications  130-132
Acknowledgments  132

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中图分类: > 医药、卫生 > 临床医学 > 诊断学 > 实验室诊断 > 免疫学检验 > 细胞免疫功能测定
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