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杜仲叶水提物的抗氧化活性及其微胶囊化研究

作　者: 雷闪亮
导　师: 郁志芳；刘青梅
学　校: 南京农业大学
专　业: 食品科学
关键词: 杜仲叶提取总黄酮抗氧化微胶囊化
分类号: R285.5
类　型: 硕士论文
年　份: 2010年
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内容摘要

本文以杜仲叶为实验原料,分别采用体外、小鼠活体实验研究了杜仲叶水提物的抗氧化活性,在此基础上探索了杜仲叶水提物的微胶囊化技术。主要研究结果如下：1、采用水提法提取杜仲叶的总黄酮,获得杜仲叶水提物总黄酮含量为32.27%。运用体外模拟实验研究了杜仲叶黄酮提取物的抗氧化活性。实验结果表明,杜仲叶总黄酮提取物有较强的抗氧化活性,其总抗氧化能力大小与浓度呈显著的线性相关性,线性方程为y=37.924x+0.7928。杜仲叶总黄酮提取物可以有效清除超氧阴离子(O2·-)自由基、羟基自由基(·OH)、DPPH有机自由基,其半抑制浓度分别为0.474、0.414、0.357mg/mL;对卵磷脂体系的脂质过氧化、氧自由基引起的DNA损伤也有很好的保护作用,其半抑制浓度分别为0.413、0.124mg/mL。杜仲叶总黄酮提取物的总抗氧化能力强于银杏、弱于绿茶、葡萄籽。2、以杜仲叶提取物灌胃ICR小鼠,通过为期四周的动物体内实验,观察杜仲叶提取物对实验动物的影响。结果表明,低剂量杜仲叶黄酮提取物的实验小鼠在饲养的4周期间体重表现出了稳定增长的趋势,中、高剂量则作用不显著；小鼠心脏系数受到杜仲叶黄酮提取物的显著影响,而肝脏系数、肾脏系数和脾脏系数则无显著影响。饲喂杜仲叶黄酮提取物后小鼠血清和肝组织抗氧化能力各项指标的变化总体趋势一致,呈现剂量与效果依存关系,但效果有差别,以增强总抗氧化能力最显著,在血清和肝组织MDA代谢和SOD活力提高方面也有较显著的作用,而对GSH-Px和CAT的作用较小。3、以喷雾干燥法研究了阿拉伯胶和p-环糊精对杜仲叶水提取物的包埋作用和影响微胶囊化的工艺条件。单因素实验和正交实验结果表明阿拉伯胶和p-环糊精对杜仲叶提取物有很好的包埋作用,对包埋效果影响由大到小的顺序为：芯材与壁材比例>喷雾干燥进料速度>壁材组分比例>物料浓度。实验确定杜仲叶水提取物微胶囊化的工艺条件为：阿拉伯胶与β-糊精的比例1.5：1,芯材与壁材比例0.5：1,物料浓度15%,进料流量20ml/min。

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缩略语 7-8摘要 8-9ABSTRACT 9-11第1章文献综述 11-32 1 杜仲的研究现状 11-16 1.1 杜仲的成分 11-12 1.2 杜仲的功效 12-14 1.3 杜仲的应用 14-16 1.3.1 杜仲的应用现状 14-15 1.3.2 存在的问题 15-16 2 自由基学说 16-27 2.1 自由基的概念 16 2.2 自由基与人体健康 16-20 2.2.1 自由基的产生 17 2.2.2 自由基与疾病 17-20 2.2.3 动物体内内源性抗氧化系统 20 2.3 评价抗氧化物质抗氧化能力的方法 20-27 2.3.1 抗氧化物质抗脂类物质氧化评价方法 21-22 2.3.2 抗氧化物质清除自由基能力测定方法 22-26 2.3.3 抗氧化物质还原力评价方法 26-27 3 微胶囊技术的发展现状 27-30 3.1 微胶囊技术的起源 27-28 3.2 微胶囊技术现状 28-30 3.2.1 微胶囊制备的原理 28 3.2.2 微胶囊制备的方法 28-29 3.2.3 微胶囊技术的应用 29-30 4 课题研究的意义和主要内容 30-32第2章杜仲叶提取物的抗氧化能力研究 32-42 1 材料与方法 32-36 1.1 材料 32 1.2 主要试剂及仪器 32 1.2.1 主要试剂 32 1.2.2 主要仪器 32 1.3 实验内容和方法 32-35 1.3.1 杜仲纯粉提取 32 1.3.2 总黄酮含量测定 32-33 1.3.3 总抗氧化能力(TAC)测定 33-34 1.3.4 清除超氧阴离子(O_2~(·-)能力的检测 34 1.3.5 清除羟基自由基(·OH)能力的检测 34-35 1.3.6 清除有机自由基DPPH能力的检测 35 1.3.7 保护卵磷脂脂质过氧化能力的检测 35 1.3.8 保护DNA损伤能力的检测 35 1.4 数据处理 35-36 2 结果与分析 36-41 2.1 杜仲叶提取物总黄酮含量测定 36 2.2 总抗氧化能力 36-37 2.3 清除超氧阴离子(O_2~(·-))自由基能力 37-38 2.4 清除羟基自由基(·OH)能力 38-39 2.5 清除有机自由基DPPH能力的检测 39 2.6 保护卵磷脂脂质过氧化能力 39-40 2.7 保护DNA损伤能力 40-41 3 本章小结 41-42第3章杜仲叶提取物对ICR小鼠抗氧化能力影响研究 42-52 1 材料与方法 42-46 1.1 材料 42 1.2 实验动物与主要试剂 42 1.2.1 实验动物与饲料 42 1.2.2 主要试剂 42 1.2.3 主要仪器和设备 42 1.3 实验内容与方法 42-45 1.3.1 实验动物分组 42-43 1.3.2 测定指标及方法 43-45 1.4 数据处理和分析 45-46 2 结果分析 46-51 2.1 各组实验动物体重、脏器系数变化 46-47 2.1.1 各组实验动物体重变化 46 2.1.2 各组实验动物脏器系数比较 46-47 2.2 饲喂杜仲叶提取物后各组实验动物氧化—抗氧化水平 47-51 2.2.1 总抗氧化能力(TAC) 47-48 2.2.2 超氧化物歧化酶(SOD)活性 48-49 2.2.3 谷胱甘肽过氧化物酶(GSH—Px)活性 49 2.2.4 过氧化氢酶(CAT)活性 49-50 2.2.5 丙二醛(MDA)含量 50-51 3 本章小结 51-52第4章杜仲叶提取物的微胶囊化研究 52-59 1 材料与方法 52-54 1.1 材料 52 1.2 主要试剂及仪器 52 1.2.1 主要试剂 52 1.2.2 主要仪器 52 1.3 实验内容与方法 52-53 1.3.1 杜仲叶提取物微胶囊化方法 52 1.3.2 杜仲叶提取物微胶囊化工艺研究 52-53 1.3.3 微胶囊化效率测定 53 1.4 数据处理 53-54 2 结果与分析 54-58 2.1 不同的壁材比对微胶囊化效率的影响 54 2.2 不同芯材比例对微胶囊化效率的影响 54-55 2.3 不同喷雾干燥物料浓度对微胶囊化效果的影响 55-56 2.4 喷雾干燥进风温度对微胶囊化效果的影响 56 2.5 喷雾干燥进料流量对微胶囊化效果的影响 56-57 2.6 正交实验优化微胶囊化工艺条件 57-58 3 本章小结 58-59参考文献 59-65全文结论 65-67致谢 67

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