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家蚕核型多角体病毒(BmNPV)Bm5的基因分析及利用基因芯片筛选抗BmNPV相关基因
作 者: 周阳
导 师: 陈克平
学 校: 江苏大学
专 业: 食品科学
关键词: 家蚕核型多角体病毒 Bm5 基因敲除 基因芯片 BmNPV抗性 差异表达基因 荧光定量PCR
分类号: S884.5
类 型: 博士论文
年 份: 2010年
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内容摘要
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家蚕是重要的经济昆虫,也是家蚕核型多角体病毒(Bombyx mori nucleopolyhedrovirus, BmNPV)的天然宿主。家蚕核型多角体病毒是引起家蚕病毒严重感染的关键病原之一,病毒与宿主的相互博弈一直是研究者们关注的问题。家蚕抗NPV机制至今尚未完全明确,但究其病因可归因于宿主与致病病毒两方面因素。本研究以BmNPV核心基因Bm5为研究对象,从基因的转录、表达、亚细胞定位、病毒结构定位和基因缺失等方面,研究基因的基本特性及其功能。同时使用家蚕高密度Oligo表达谱芯片所提供了相关基因的基因组学的证据,突破了以往单个基因孤立研究的局限,在全基因组范围内筛选家蚕抗NPV相关基因,对筛选出基因进行GO和Pathway分析,并进一步用半定量PCR和荧光定量PCR进行验证,探讨家蚕抗NPV的途径和机理。论文主要结论如下:1.BmNPV的orf5(Bm5)位于基因组4,605--5,600 nt,全长993 bp,编码一个含331个氨基酸残基的蛋白,预测分子量约为39.3 kDa,Bm5是AcMNPV orf13的同源序列。在Bm5基因ATG上游存在杆状病毒晚期转录基序ATAAG,在终止密码子TAA下游发现转录终止信号AATAAA,暗示了该基因是晚期表达基因。根据Bm5基因序列设计引物,分别以BmNP基因组DNA为模板进行PCR扩增,将得到的基因克隆至原核表达载体pET30a(+),在原核细胞中实现了基因的融合表达。纯化的蛋白免疫新西兰大白兔,制备了BM5蛋白的多克隆抗体。2. RT-PCR分析发现,Bm5在病毒感染宿主细胞12 h开始转录,直到72 h。利用抗体进行Western blot分析,发现Bm5的表达产物在病毒感染宿主细胞后24 h被检测出来,一直持续72 h都有表达,大小为39.3kDa,与预测的大小一致,说明Bm5是一个晚期表达基因,而且没有转录后修饰。Western blot方法检测分离出的BV、ODV粒子,表明BM5不是病毒粒子的结构蛋白。利用抗体检测发现BM5定位在细胞质中。3.利用Red重组系统在大肠杆菌中成功地对BmNPV的Bm5基因进行了快速定点敲除。并BmNPV/Bac-to-Bac系统和Red重组系统结合在一起,对敲除了Bm5基因的BmNPV:进行了拯救。分别构建了野生型病毒vBm5-Wt、Bm5基因缺失病毒vBm5-Ko和Bm5基因拯救病毒vBm5-Re。4.应用基因芯片技术在家蚕抗NPV品系BC8、感性品系306中筛查抗性相关基因,结果发现93个差异表达基因其中表达上调基因44个,下调基因49个。GO分析表明93个基因中51个其中24个上调基因、27个下调基因具有功能注释。GO分析结果显示分子功能方面主要有酶活性、氧化还原活性、酶绑定、结构成分、转运活性等;生物进程方面主要有新陈代谢、蛋白质水解、电子转移、蛋白质定位、转移、蛋白质生物等功能;细胞组分方面主要有细胞内、膜核糖体、胞外区等。Pathway分析表明有新陈代谢、果糖和甘露糖代谢、丙酸代谢、核糖体、氧化磷酸化、磷酸戊糖途径、糖酵解/糖异和柠檬酸循环(TCA循环)等通路。5.为了验证芯片筛选出差异表达基因,从93个差异基因挑选14个表达量差异大基因(9个上调基因、5个下调基因)进行RT-PCR,依据结果再从14个基因中挑选10个差异基因(7个上调基因、3个下调基因)进行荧光定量PCR。结果表明了7个上调基因中5个基因在NB、BC8各时间点的表达量高于306,鉴定为抗性相关上调基因,2个基因在BC8表达量高于NB、306。3个下调基因在306的表达量要高于NB、BC8,鉴定为抗性相关下调基因。表明荧光定量PCR试验结果与芯片结果具有良好的一致性,进一步证实了芯片结果的可靠性。
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全文目录
摘要 6-8 ABSTRACT 8-15 第一章 文献综述 15-59 1.1 杆状病毒概述 15-31 1.1.1 杆状病毒的分类 15 1.1.2 杆状病毒的形态和结构 15-17 1.1.3 杆状病毒的生活周期 17-18 1.1.4 杆状病毒基因组研究进展 18-31 1.2 昆虫和杆状病毒的相互关系 31-42 1.2.1 昆虫抗病毒研究 31 1.2.2 对病毒的遗传抗性 31-32 1.2.3 对病毒感染的物理和生理屏障 32-34 1.2.4 细胞免疫 34-36 1.2.5 细胞凋亡 36-38 1.2.6 体液免疫 38-42 1.3 家蚕抗NPV的研究 42-50 1.3.1 杆状病毒侵染昆虫的机理 42-43 1.3.2 BmNPV的增殖曲线及病毒增殖与蚕体生理代谢的变化 43-45 1.3.3 家蚕对BmNPV抵抗性的遗传规律研究 45 1.3.4 家蚕中肠在抗NPV的作用 45-46 1.3.5 家蚕抗BmNPV的相关基因 46-50 1.4 基因芯片研究进展及应用 50-54 1.4.1 芯片的发展及研究步骤 50-51 1.4.2 芯片分类 51-53 1.4.3 芯片的应用领域 53 1.4.4 基因芯片技术在家蚕中的应用 53-54 1.5 本研究的目的和意义 54-55 1.6 主要研究内容和研究路线 55-59 1.6.1 研究内容 55 1.6.2 研究路线 55-59 第二章 Bm5基因序列分析、原核表达和多克隆抗体制备 59-73 2.1 材料与方法 59-64 2.1.1 材料 59-61 2.1.2 方法 61-64 2.2 结果与分析 64-70 2.2.1 Bm5的核苷酸和其编码的氨基酸的序列特征 64-65 2.2.2 BM5的氨基酸同源性分析 65-67 2.2.3 Bm5的克隆 67-69 2.2.4 Bm5基因的原核表达及检测 69 2.2.5 BM5蛋白的纯化 69 2.2.6 融合蛋白6×His接头的鉴定 69-70 2.3 讨论 70-71 2.4 小结 71-73 第三章 Bm5基因的转录、表达研究及表达产物的定位 73-81 3.1 材料与方法 73-76 3.1.1 材料 73-74 3.1.2 方法 74-76 3.2 结果 76-80 3.2.1 Bm5的转录时相 76-77 3.2.2 Bm5的表达时相 77-78 3.2.3 BM5的亚细胞定位 78 3.2.4 BM5蛋白在病毒结构中的定位 78-80 3.3 讨论 80 3.4 小结 80-81 第四章 家蚕核型多角体病毒Bm5的缺失和拯救 81-93 4.1 材料和方法 81-87 4.1.1 材料 81-82 4.1.2 方法 82-87 4.2 结果 87-92 4.2.1 大肠杆菌菌株BW25113-Bac的获得 87 4.2.2 Bm5基因打靶线性化片断的鉴定 87 4.2.3 重组质粒pUC-US-Cm-DS的酶切鉴定 87-88 4.2.4 Bm5缺失重组Bacmid的构建和验证 88-89 4.2.5 vBm-wt、vBm5-ko和vBm5-re三种Bacmid的获得 89-92 4.3 讨论 92 4.4 小结 92-93 第五章 基因芯片的筛选抗BmNPV相关基因 93-111 5.1 材料和方法 93-96 5.1.1 材料 93 5.1.2 试验方法 93-96 5.2 结果 96-108 5.2.1 RNA提取的浓度和纯度鉴定 96 5.2.2 高密度家蚕Oligo芯片杂交结果 96 5.2.3 芯片的图像处理及数据采集结果 96-99 5.2.4 筛选差异基因 99-102 5.2.5 GO分析结果 102-107 5.2.6 Pathway分析 107-108 5.3 讨论 108-109 5.4 结论 109-111 第六章 部分差异基因的验证 111-129 6.1 材料与方法 111-113 6.1.1 实验材料 111-113 6.1.2 实验方法 113 6.2 结果与分析 113-122 6.2.1 RT-PCR检测抗性相关基因 113-114 6.2.2 QRT-PCR检测相关抗性基因 114-122 6.3 讨论 122-128 6.3.1 实时相对定量荧光RT-PCR技术 122-123 6.3.2 验证材料的特异性 123 6.3.3 验证差异基因的时间、空间特异性 123-124 6.3.4 验证方法的特异性 124-125 6.3.5 鉴定的基因功能分析 125-128 6.4 结论 128-129 总结和展望 129-131 总结 129 展望 129-131 本研究创新点 131-133 参考文献 133-154 博士期间发表的研究论文和参加的课题 154-155 致谢 155
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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 蚕桑 > 蚕的病虫害及其防治 > 病毒病(脓病)
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