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AM真菌孢子萌发及其与紫云英转化根双重培养体系建立的研究
作 者: 曹玲
导 师: 赵斌
学 校: 华中农业大学
专 业: 微生物学
关键词: 转化根 AM真菌 双重培养 发根农杆菌
分类号: S551.9
类 型: 硕士论文
年 份: 2009年
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内容摘要
丛枝菌根(AM)在自然界中广泛分布,能够与自然生态系统中80%以上的维管属植物共生,形成丛枝菌根。AM真菌能够促进宿主植物矿质营养吸收,增强抗逆抗病能力,对维持陆生生态系统及植物多样性有重要作用。由于AM真菌具有专性共生的特性,离体纯培养至今尚未实现。因此,AM真菌的单菌培养是40余年来人们一直探索的关键技术,也是AM真菌研究的重点和热点。世界各国都在积极开展AM真菌单菌培养的研究工作。本论文研究了在离体培养条件下培养基质、金属离子等环境因素对AM真菌孢子萌发和芽管菌丝生长发育的影响;利用发根农杆菌(Agrobacterium rhizogenes)转化的豆科植物紫云英Ri T-DNA转化根与AM真菌Glomus intraradices、Gigaspora margarita、Gigaspora rosea建立了双重培养体系。该双重培养体系是研究AM真菌形态学、生理学、生物与非生物胁迫应答、根际生物(PGPR、病原菌、线虫)相互作用、分类系统进化等方面的理想模式,更是目前公认的唯一能够提供纯净AM真菌材料的方法。采用此双重培养体系能够进行AM真菌与豆科植物相互识别信号和共生机制的研究。同时此双重培养体系也为构建AM真菌、豆科植物与根瘤菌离体三重培养体系提供了一些借鉴。论文取得主要结果如下:Gig. margarita、G. intraradices孢子在水琼脂、MSR、M、MS培养基上均能萌发,以水琼脂上萌发及菌丝生长状况最好。低浓度Zn2+、La3+促进Gig. margarita、Glomus intraradices孢子萌发,随浓度上升,孢子萌发及菌丝生长受抑制。以发根农杆菌k599转化划伤处理的大豆子叶,并获得大豆转化根,但其不能在低离子浓度的人工培养基上生长,故没有用其与AM真菌构建双重培养体系。以发根农杆菌k599转化紫云英下胚轴,研究不同卡那霉素浓度对转化根诱导率的影响,其结果为:适当的Km浓度(40μg/ml)会提高紫云英Ri T-DNA转化根形成的效率,而过高的Km浓度(60μg/ml)抑制转化根形成。在MSR培养基上尝试以Gig. margarita、Gig. rosea、Glomus intraradices建立双重培养体系,且三菌种均与紫云英转化根成功建立双重培养体系。但是巨孢囊霉属的Gig. rosea未能产生新生孢子。原因可能是巨孢囊霉属的菌种侵染宿主后菌丝生长存在迟滞期,而次生孢子的产生又受到外生菌丝生物量及辅助细胞数量的影响。
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全文目录
摘要 7-8 Abstract 8-10 缩略词表 10-11 第一章 文献综述 11-22 1.1 丛枝菌根 11-15 1.1.1 丛枝菌根简介 11 1.1.2 丛枝菌根结构 11-13 1.1.3 丛枝菌根真菌生活史 13 1.1.4 丛枝菌根功能 13-15 1.2 AM真菌培养方法 15-19 1.2.1 活体培养 15-16 1.2.2 离体纯培养 16-17 1.2.3 离体双重培养 17-19 1.3 发根农杆菌介导的遗传转化 19-20 1.3.1 发根农杆菌转化植物研究现状 19 1.3.2 发根农杆菌特性 19 1.3.3 发根农杆菌基因转化的方法 19-20 1.3.4 Ri质粒基因转化的影响因素 20 1.4 研究目的和意义 20-22 第二章 培养基质对孢子萌发影响 22-29 2.1 引言 22 2.2 材料与方法 22-27 2.2.1 材料 22-25 2.2.1.1 培养基及试剂 22-25 2.2.1.2 供试菌种 25 2.2.2 方法 25-27 2.3 结果与分析 27-28 2.3.1 培养基质对孢子萌发率的影响 27-28 2.3.2 培养基质对孢子萌发率和菌丝生长的影响 28 2.4 讨论 28-29 第三章 重金属对孢子萌发的影响 29-35 3.1 引言 29 3.2 材料与方法 29-30 3.2.1 材料 29 3.2.2 方法 29-30 3.3 结果与分析 30-34 3.3.1 Zn~(2+)对孢子萌发率的影响 30-31 3.3.2 Zn~(2+)对孢子菌丝生长影响 31-32 3.3.3 La~(3+)对孢子萌发的影响 32-33 3.3.4 La~(3+)对AM真菌芽管菌丝生长的影响 33-34 3.4 讨论 34-35 第四章 离体条件下AM真菌芽管的发育 35-39 4.1 引言 35 4.2 材料与方法 35-36 4.2.1 材料 35-36 4.2.2 方法 36 4.3 结果与分析 36-37 4.3.1 SDH酶活染色 36-37 4.3.2 菌丝形成隔 37 4.3.3 分枝吸收结构(BAS) 37 4.4 讨论 37-39 第五章 转化根的诱导及G. intraradices双重培养体系建立 39-48 5.1 引言 39 5.2 材料与方法 39-43 5.2.1 材料 39-40 5.2.1.1 生物材料 39-40 5.2.1.2 培养基及试剂 40 5.2.1.3 主要仪器 40 5.2.2 方法 40-43 5.2.2.1 活化菌株 40-41 5.2.2.2 植物材料准备 41 5.2.2.3 发根农杆菌转化植物材料 41 5.2.2.4 转化根鉴定 41-42 5.2.2.5 转化根培养 42 5.2.2.6 紫云英转化根与G. intraradices双重培养体系建立 42-43 5.3 结果与分析 43-46 5.3.1 Km对紫云英转化根筛选的影响 43-44 5.3.2 转化根检测 44-45 5.3.2.1 GUS染色检测 44 5.3.2.2 转化根rol C基因PCR扩增检测 44-45 5.3.3 紫云英转化根生长状况 45 5.3.4 G. intraradices的萌发状况及对紫云英转化根的侵染 45-46 5.4 讨论 46-48 第六章 转化根与Gig. margarita、Gig. rosea双重培养体系建立 48-54 6.1 材料与方法 48-49 6.1.1 材料 48 6.1.2 方法 48-49 6.2 结果与分析 49-52 6.2.1 Gig. margarita、Gig. rosea萌发及菌丝生长状况 49-51 6.2.2 Gig. margarita、Gig. rosea对紫云英转化根的侵染 51-52 6.3 讨论 52-54 参考文献 54-61 致谢 61
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中图分类: > 农业科学 > 农作物 > 绿肥作物 > 豆科绿肥 > 其他
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