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Lactobacillus Plantarum Lp6发酵大豆蛋白粉及其抗氧化肽的研究
作 者: Amadou Issoufou
导 师: 乐国伟
学 校: 江南大学
专 业: 食品科学
关键词: Lactobacillus plantarum LP6 发酵大豆蛋白粉 体外胰蛋白酶消化 水解度 营养属性 抗氧化活性 疏水性 分子量分布 肽段
分类号: TS201.2
类 型: 硕士论文
年 份: 2010年
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内容摘要
食物中的抗氧化物质如酚类化合物可以作为保健成分(抗癌及抗心血管疾病)、抗菌剂、风味物质、着色剂前体、胶体稳定剂以及螯合剂而发挥多种功效。发酵食品如大豆类产品已经存在数千年并被认为是许多有效抗氧化剂的来源。本文中,大豆蛋白粉分别在添加蛋白酶及不添加蛋白酶的情况下以Lactobacillus plant arum Lp6进行固态发酵。通过研究大豆蛋白粉(SPM)的Lactobacillus plantarum Lp6固态发酵评估可溶淀粉、酸性蛋白酶及时间对水解度(DH)和活细胞计数(VCC)的影响。为获得最大DH和VCC的发酵蛋白粉(FSPM),采用响应面法进行优化,得到最优试验条件为:可溶淀粉(0.4 g/g SPM)、酸性蛋白酶(0.1 g/g SPM)及时间(66h),最优条件下的结果为DH 22.58%和VCC 9.08(log CFU/g)。最优条件提高了发酵产物中低分子量肽(<20 kDa)的比例、蛋白含量(60.15%)。Lactobacillus plantarum Lp6和酸性蛋白酶的水解作用使产物中的游离氨基酸含量显著升高(从0.32提高到8.03g/100 g蛋白,P<0.01),也使蛋白溶解度显著提高(从29.33%提高到38.35%,P<0.01),另外,FSPM具有更高的体外胰岛素消化性。通过Sephadex G-15凝胶层析对发酵大豆蛋白水解物(FSPMH)进行分级,对各组分进行抗氧化活性、氨基酸组成和分子量分布的测定。结果显示:在凝胶层析得到的7各组分中,F2组分具有最高的DPPH自由基清除能力(59.43%)、OH自由基清除能力(72.80%)以及Cu2+螯合能力(44.47%) (P<0.01);与其他几个组分相比,F2组分的氨基酸组成中抗氧化氨基酸含量最高(组氨酸3.46,丝氨酸5.78,缬氨酸4.08,赖氨酸11.49g/100 g蛋白),其分子量分布为170-1500 Da。利用反相高效液相色谱(RP-HPLC)对F2组分进行纯化,收集各洗脱峰并测定其DPPH自由基清除能力及Cu2+螯合能力,并通过LC-MS鉴定其氨基酸序列。结果表明:RP-HPLC分离组分P1具有出较强的DPPH自由基清除能力及Cu2+螯合能力,氨基酸序列显示其含有组氨酸。
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全文目录
ACKNOWLEDGEMENT 6-7 LIST OF FIGURES 7-8 LIST OF TABLES 8-9 LIST OF ABBREVIATIONS 9-10 ABSTRACT 10-12 摘要 12-14 TABLE OF CONTENTS 14-17 CHAPTER Ⅰ INTRODUCTION AND REVIEW OF RELEVANT LITERATURE 17-29 1.1 General Introduction 18-20 1.2.Fermented Soybean Products:Some Methods,Antioxidants CompoundExtraction and their Scavenging Activity 20-25 1.2.1.Introduction 20-21 1.2.2.Methodologies of fermentation of soybean products 21-23 1.2.3.Procedures of fermented soybean antioxidant extraction 23-25 1.3.Antioxidant/Antiradical Activity of Fermented Soybean Extract 25-28 1.4.Conclusion 28-29 CHAPTER Ⅱ OPTIMIZED LACTOBACILLUS PLANTARUM LP6 SOLID-STATEFERMENTATION AND PROTEOLYTIC HYDROLYSIS IMPROVE SOMENUTRITIONAL ATTRIBUTES OF SOYBEAN PROTEIN MEAL 29-49 2.1.Introduction 31-32 2.2.Materials and Methods 32-37 2.2.1.Materials 32 2.2.2.Fermentation 32-33 2.2.3.Viable cell counts 33 2.2.4.Preparation of hydrolysate 33 2.2.5.Degree of hydrolysis 33-34 2.2.6.Sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis 34 2.2.7.Scanning electron microscopy 34-35 2.2.8.Chemical analysis 35 2.2.9.Amino acid analysis 35-36 2.2.10.In vitro trypsin digestibility 36 2.2.11.Experimental design for optimization 36 2.2.12.Statistical analysis 36-37 2.3.Results and Discussion 37-48 2.3.1.Fermentation conditions 37-39 2.3.2.Surface response data 39-42 2.3.3.Effect of fermentation and proteolysis on composition 42-46 2.3.4.Scanning electron microscopy 46-47 2.3.5.In vitro trypsin digestibility 47-48 2.4.Conclusion 48-49 CHAPTER Ⅲ REDUCING, RADICAL SCAVENGING, AND CHELATION PROPERTIESOF FERMENTED SOY PROTEIN MEAL HYDROLYSATE BYLACTOBACILLUS PLANTARUM LP6 49-62 3.1.Introduction 50-51 3.2.Materials and Methods 51-55 3.2.1.Materials 51 3.2.2.Fermentation 51 3.2.3.Preparation of fermented soy protein meal hydrolysate and determination ofits degree of hydrolysis 51-52 3.2.4.Gel filtration on Sephadex G-15 of FSPMH 52 3.2.5.Reducing power 52-53 3.2.6.DPPH radical-scavenging activity 53 3.2.7.Hydroxyl radical-scavenging activity 53-54 3.2.8.Metal chelating activity 54 3.2.9.Amino acid composition 54 3.2.10.Determination of molecular weight distribution 54-55 3.2.11.Statistical analysis 55 3.3.Results and Discussion 55-61 3.3.1.FSPMH fractionation 55-56 3.3.2.Reducing power 56 3.3.3.DPPH radical-scavenging activity 56-57 3.3.4.Hydroxyl radical-scavenging activity 57-58 3.3.5.Metal chelating activity 58 3.3.6.Amino acid composition 58-60 3.3.7.Molecular weight distribution 60-61 3.4.Conclusion 61-62 CHAPTER Ⅳ IDENTIFICATION OF ANTIOXIDATIVE PEPTIDES, LACTOBACILLUSPLANTARUM LP6 FERMENTED SOYBEAN PROTEIN MEAL 62-89 4.1.Introduction 64 4.2.Materials and Methods 64-67 4.2.1.Materials 65 4.2.3.Fermentation Method 65 4.2.4.Preparation of fermented soy protein meal hydrolysate extract 65 4.2.5.Isolation of antioxidant peptides 65-66 4.2.6.DPPH radical scavenging activity 66 4.2.7.Metal chelating activity 66-67 4.2.8.Peptide sequence analysis 67 4.2.9.Statistical analysis 67 4.3.Results and Discussions 67-72 4.3.1.Antioxidant activity 67-69 4.3.2.Isolation of antioxidant peptides and determination of amino acid sequences 69-72 4.4.Conclusion 72-73 5.General Conclusions and Recommendations 73-75 5.1.General conclusions 73-74 5.2.Recommendations 74-75 6.References 75-89 LIST OF PUBLICATIONS 89
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中图分类: > 工业技术 > 轻工业、手工业 > 食品工业 > 一般性问题 > 基础科学 > 食品化学
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