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蝴蝶兰花序分生组织基因LFY表达载体构建及对蝴蝶兰的遗传转化

作 者: 武思
导 师: 崔波
学 校: 河南农业大学
专 业: 植物学
关键词: 蝴蝶兰LFY基因 表达载体的构建 再生体系的建立 遗传转化
分类号: S682.31
类 型: 硕士论文
年 份: 2011年
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内容摘要


LFY是花分生组织特性基因(floral meristem identity gene),广泛表达于植物的营养器官和生殖器官。LFY与调控植物开花时间的基因密切相关,调控开花时间的四条途径均表达于LFY基因的上游且在LFY基因处整合,LFY在花诱导后表达水平加强。通过对模式植物拟南芥LFY基因研究的深入,发现LFY基因是一个控制花序梢分生组织特征的基因,LFY参与促进花分生组织的形成和花分生组织属性的控制,参与维持花分生组织的正常功能、花启动、防止花分生组织的逆转。在花分生组织属性基因中LFY基因是首先表达的。LFY编码了一个发育开关,其活性足以将所有侧梢转变成单花芽,从而诱导植株提早开花。植物LFY基因表达量只有达到一定值时才能成花,同时其过量表达不影响花模式且能提前成花。生物技术的迅速发展启发人们用转基因的手段研究应用LFY基因,在转LFY基因杨树、烟草、菊花和水稻等植物中,LFY的超量表达均使花期提前。本实验在吸取前人经验的基础上,构建了适合植物的表达载体pRI101-LFY,并将其转化进入根癌农杆菌EHA105中,通过农杆菌介导法将LFY基因转入蝴蝶兰中,然后对转基因植株进行检测,借以初步探讨LFY基因在蝴蝶兰中的转化和表达情况,使LFY基因能够超量表达,从而获得能提前开花的蝴蝶兰品种。实验结果如下:(1)蝴蝶兰LFY基因的获取及克隆根据ncbi中已报道的蝴蝶兰LFY基因序列,运用RT-PCR法扩增出LFY基因,连接至克隆载体pMD19-T后转化E.coli DH5α,通过质粒PCR、双酶切、测序鉴定,得到重组质粒pMD19-T-LFY。(2)蝴蝶兰LFY基因植物表达载体pRI101-LFY的构建与鉴定利用DNA重组技术,将蝴蝶兰LFY基因克隆至植物表达载体pRI101中后转化E.coli DH5α,通过质粒PCR、双酶切、电泳鉴定证明蝴蝶兰LFY基因植物表达质粒pRI101-LFY成功构建。(3)pRI101-LFY质粒转化根癌农杆菌将重组质粒pRI101-LFY通过直接转化法导入根癌农杆菌EHA105中,用利福平(Rif)和卡那霉素(Kana)进行筛选得到阳性克隆,通过质粒PCR,双酶切鉴定证明重组质粒成功转化根癌农杆菌EHA105。(4)蝴蝶兰再生体系的建立采用无菌蝴蝶兰原球茎为外植体,以MS为基本培养基,筛选出播种培养基:1/4 MS+KT 0.5mg/l+AC 1g/l+蛋白胨1g/l+椰汁50%,成苗培养基:1/2 MS+NAA 5mg/l + IBA 5m g/l+AC 0.5%+土豆50g/l,分化培养基:1/2 MS +6-BA 10mg/L+椰汁20g/l,生根培养基:1/2 MS + 6-BA 0.3mg/l。(5)转化体筛选及植株再生将预培养3-4天的原球茎与农杆菌菌液浸染5-15分钟后,共培养2-3天,然后转化到含MLPN和Kana的选择培养基上进行分化筛选,转入外源基因的原球茎将会在这一系列筛选过程中发芽、生根,获得转基因植株。(6)转基因蝴蝶兰植株的PCR检测提取转基因蝴蝶兰植株基因组DNA后,PCR扩增蝴蝶兰LFY基因,证明LFY基因已导入蝴蝶兰中,转化率为25%。

全文目录


致谢  4-7摘要  7-91 文献综述  9-17  1.1 植物成花分子机理研究综述  9  1.2 植物成花分子机理研究进展  9-14    1.2.1 光周期影响植物成花分子机理  9-10    1.2.2 春化作用影响植物成花分子机理  10-12    1.2.3 基因调控植物成花分子机理  12-14  1.3 LFY 基因  14-17    1.3.1 LFY 基因研究进展  14-15    1.3.2 LFY 基因研究现状  15-172 引言  17-183 材料和方法  18-25  3.1 LFY 基因的设计与获取  18-19    3.1.1 实验材料  18    3.1.2 实验方法  18-19  3.2 蝴蝶兰LFY 基因的克隆  19-21    3.2.1 实验材料  19    3.2.2 试验方法  19-21  3.3 蝴蝶兰LFY 植物表达载体的构建及农杆菌转化  21-23    3.3.1 实验材料  21-22    3.3.2 试验方法  22-23  3.4 重组农杆菌E-pRI-LFY 对蝴蝶兰的遗传转化  23-25    3.4.1 实验材料  23    3.4.2 试验方法  23-254 结果分析  25-35  4.1 蝴蝶兰 LFY 基因的获取与检测  25-26    4.1.1 蝴蝶兰总RNA 检测  25-26    4.1.2 蝴蝶兰LFY 基因的合成  26  4.2 重组质粒pMD19-T LFY 的检测与序列分析  26-28    4.2.1 重组质粒pMD19-T LFY 的PCR 检测  26    4.2.2 重组质粒pMD19-T LFY 双酶切鉴定  26-27    4.2.3 重组质粒pMD19-T LFY 序列分析  27-28  4.3 蝴蝶兰植物表达质粒 pRI101-LFY 的鉴定  28-29    4.3.1 表达载体pR1101 的构建  28    4.3.2 重组表达质粒pR1101-LFY 双酶切鉴定  28-29  4.4 重组农杆菌的鉴定  29  4.5 重组农杆菌E-pRI-LFY 转化蝴蝶兰检测  29-35    4.5.1 蝴蝶兰组织快繁体系建立  29-30    4.5.2 抗性植株Kana 筛选压力的确定  30-31    4.5.3 侵染时间对转化的影响  31-32    4.5.4 乙酰丁香酮对农杆菌转化的影响  32-33    4.5.5 美罗培南对重组农杆菌侵染蝴蝶兰原球茎的影响  33    4.5.6 蝴蝶兰抗性植株的检测  33-355 结论与讨论  35-37  5.1 蝴蝶兰 LFY 基因的获取  35  5.2 植物表达载体 pRI101-LFY 的构建  35  5.3 农杆菌介导法转化蝴蝶兰  35-36  5.4 PCR 检测  36-37参考文献  37-47英文摘要  47-48

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中图分类: > 农业科学 > 园艺 > 观赏园艺(花卉和观赏树木) > 多年生花卉类 > 其他花卉类 > 兰科植物
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