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湖羊BMP4基因克隆、表达与多态性分析
作 者: 韦涛
导 师: 石国庆;李齐发
学 校: 南京农业大学
专 业: 动物遗传育种与繁殖
关键词: 湖羊 BMP4 序列 表达水平 多态性
分类号: S826
类 型: 硕士论文
年 份: 2011年
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内容摘要
湖羊是我国特有的多胎绵羊品种,其高繁殖力遗传机制尚不明确。骨形态发生蛋白4(BMP4)是转化生长因子β超家族中骨形态发生蛋白亚家族成员,研究表明BMP4与哺乳动物生殖机能密切相关,可促进卵泡发育和卵母细胞成熟,增加排卵数。本研究采用PCR扩增和克隆测序技术获得湖羊BMP4基因DNA序列,利用生物信息学方法对其基因结构、序列和系统发育进行分析;分析了湖羊BMP4基因组织表达特征以及卵巢组织表达水平与湖羊繁殖性能(排卵数和产羔数)的关系;以BMP4作为湖羊高繁性状的候选基因,采用PCR-SSCP对湖羊BMP4基因多态性进行检测,并对不同基因型个体与产羔数进行关联分析,探讨BMP4与湖羊繁殖性能的潜在关系,筛选影响湖羊多胎性状的候选基因,为揭示湖羊高繁机理提供参考。全文结论如下:1.湖羊BMP4基因克隆与序列分析通过PCR扩增和克隆测序获得了湖羊BMP4基因DNA序列,序列全长4694bp。分析发现湖羊BMP4基因由4个外显子和3个内含子组成,其中第1、第2外显子为非编码外显子,编码区序列全长1230bp,由外显子3、4组成,编码409位氨基酸;三级结构预测显示BMP4蛋白存在4个α-螺旋及8个β-折叠结构;BMP4蛋白包含TGFβ-propeptide、TGFβ两个保守结构功能域,TGFβ-propeptide结构域在分布位置及氨基酸序列上高度保守,TGFβ结构域则完全相同;利用BMP4氨基酸序列构建哺乳动物NJ系统发育树,结论与经典分类学相吻合。研究结果表明湖羊BMP4基因与哺乳动物其他物种同源性较高,推测与其他哺乳动物类似,BMP4在湖羊卵泡发育过程中发挥着重要作用。2.湖羊卵巢组织BMP4基因表达水平与繁殖性能相关性分析采用RT-PCR对湖羊BMP4基因进行组织表达特征分析,结果显示BMP4基因在湖羊下丘脑、垂体、卵巢、输卵管、子宫、心脏、肝脏、脾脏、肺脏、肾脏和肌肉等组织中均有表达。采用real-time PCR对湖羊卵巢组织BMP4基因mRNA表达水平进行检测并分析其与繁殖性能(排卵数、产羔数)关系,结果显示湖羊卵巢组织BMP4基因mRNA表达水平与排卵数间呈极显著正相关(P<0.01),相关系数为0.8663,基因表达水平(Y)与排卵数(X)线性回归方程为:Y=-0.3213+0.2362X(R2=0.7505);基因表达水平与第一胎产羔数间呈极显著正相关(P<0.01),相关系数为0.8861,建立的线性回归方程为:Y=-0.3701+0.4734X(R2=0.7851);基因表达水平与第二胎产羔数间呈显著正相关(P<0.05),相关系数为0.7567,建立的线性回归方程为:Y=0.0291+0.1845X(R2=0.5726);基因表达水平与平均产羔数间呈极显著正相关(P<0.01),相关系数为0.8744,建立的线性回归方程为:Y=-0.1753+0.2862X(R2=0.7645)。研究结果表明BMP4基因与湖羊繁殖性能存在密切关系,可能是湖羊高繁性状的候选基因。3.湖羊BMP4基因多态性与产羔数关联分析采用PCR-SSCP对220头湖羊BMP4基因进行多态性检测,结果发现引物T2在湖羊群体中检测到AA、AB两种基因型,测序结果显示BMP4基因编码区第298位核苷酸发生了A→C碱基突变,并导致湖羊BMP4蛋白第100位氨基酸由异亮氨酸(Ile)转变为亮氨酸(Leu)。在湖羊群体中,AA型为优势基因型,频率为0.7758;A为优势等位基因,频率为0.8794。A298C位点多态性与产羔数关联分析发现,不同基因型间产羔数呈现AA>AB的趋势,其中AA型个体第三胎产羔数和经产平均产羔数分别比AB型个体多出0.86只和0.57只,存在显著性差异(P<0.05)。研究结果表明湖羊BMP4基因编码区A298C突变位点与湖羊产羔数存在密切关联,对湖羊新品系培育和标记辅助育种具有一定意义。
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全文目录
摘要 8-10ABSTRACT 10-12第一部分 文献综述 12-38 第一章 湖羊多胎性能研究进展 12-24 1 湖羊品种简介 12-13 1.1 来源与分布 12 1.2 体型外貌 12 1.3 肉用性能 12-13 1.4 皮毛性能 13 1.5 繁殖性能 13 2 湖羊多胎性能生理机制研究进展 13-15 2.1 生殖器官特点研究 13-14 2.2 发情排卵与生殖内分泌特点研究 14-15 3 湖羊多胎性能遗传机制研究进展 15-19 3.1 BMPR-IB 15-16 3.2 BMP15 16-17 3.3 GDF9 17-18 3.4 ESR、GnRHR、LHβ、BMPRIA 18-19 参考文献 19-24 第二章 BMP4基因研究进展 24-38 1 骨形态发生蛋白(BMP)简介 24-28 1.1 BMP成员 24-25 1.2 BMP基因结构 25-26 1.3 BMP信号传导 26-28 2 BMP4研究进展 28-33 2.1 BMP4基因及蛋白结构 28-29 2.2 BMP4作用机制 29-30 2.3 BMP4生物作用 30-32 2.4 BMP4基因多态性研究 32-33 参考文献 33-38第二部分 试验研究 38-92 第三章 湖羊BMP4基因克隆与序列分析 38-66 1 材料和方法 38-43 1.1 实验动物 38 1.2 主要试剂和仪器 38-39 1.3 组织样DNA提取 39-40 1.4 引物设计与合成 40 1.5 PCR扩增 40-41 1.6 PCR产物回收及测序 41 1.7 生物软件及在线分析工具 41-43 2 结果与分析 43-61 2.1 湖羊BMP4基因序列扩增 43-44 2.2 湖羊BMP4基因克隆与鉴定 44-45 2.3 湖羊BMP4基因基因组结构分析 45 2.4 湖羊BMP4基因5’端序列分析 45-47 2.5 湖羊BMP4氨基酸序列及理化性质分析 47-54 2.6 湖羊BMP4蛋白结构预测 54-55 2.7 哺乳动物BMP4进化及系统发育分析 55-61 3 讨论 61-63 3.1 湖羊BMP4基因序列特征 61-62 3.2 BMP4蛋白结构分析 62 3.3 BMP4基因序列变异及系统发育分析 62-63 参考文献 63-66 第四章 湖羊卵巢组织BMP4表达水平与繁殖性能关系 66-78 1 材料和方法 66-69 1.1 实验动物 66 1.2 主要试剂和仪器 66-67 1.3 组织样RNA提取及cDNA合成 67-68 1.4 引物设计与合成 68 1.5 PCR反应条件 68 1.6 荧光实时定量PCR 68-69 1.7 数据分析 69 2 结果与分析 69-74 2.1 湖羊组织RNA提取结果 69-70 2.2 湖羊BMP4及β-actin基因RT-PCR扩增结果 70 2.3 湖羊BMP4基因组织表达谱分析 70-71 2.4 湖羊卵巢组织BMP4表达水平与排卵数、产羔数相关分析 71-74 3 讨论 74-75 参考文献 75-78 第五章 湖羊BMP4基因多态性与产羔数关联性分析 78-92 1 材料和方法 78-83 1.1 实验动物 78 1.2 主要试剂和仪器 78-79 1.3 组织样DNA提取 79 1.4 引物设计与合成 79-80 1.5 PCR反应及扩增产物处理 80 1.6 PCR产物聚丙烯酰胺凝胶电泳 80-81 1.7 基因多态性指标统计分析方法 81-83 2 结果与分析 83-88 2.1 湖羊基因组DNA提取结果 83 2.2 PCR产物扩增 83-84 2.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳结果分析 84-86 2.4 湖羊BMP4基因编码区A298C位点多态性分析 86-87 2.5 湖羊BMP4基因编码区A298C位点多态性与产羔数关联分析 87-88 3 讨论 88-90 参考文献 90-92全文结论 92-94全文创新点 94-96附录 96-98致谢 98-100攻读学位期间发表的学术论文目录 100
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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 家畜 > 羊
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