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聚乙烯亚胺修饰糖脂共聚物介导基因治疗研究

作 者: 陈万威
导 师: 胡富强
学 校: 浙江大学
专 业: 药剂学
关键词: 壳寡糖硬脂酸嫁接物 聚乙烯亚胺 聚合物胶束 基因传递系统 基因转染 基因治疗 非病毒基因载体
分类号: R450
类 型: 硕士论文
年 份: 2011年
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内容摘要


中文摘要本研究选择具有低毒性、可生物降解和生物相容性的壳聚糖作为主要材料,构建壳聚糖衍生物/DNA复合物纳米粒基因给药系统,以期实现体内外高效的基因转染和体内有效抗肿瘤基因治疗。采用生物酶降解法制备得到分子量为17.5 KDa的壳寡糖,以碳二亚胺为偶合剂合成壳寡糖硬脂酸嫁接物(chitosan oligosaccharide grafted stearic acid, CSOSA)。硬脂酸修饰比例为3.46%和20.7%的嫁接物,其在水中的临界胶束浓度分别为0.120 g/L和0.091 g/L。以荧光质粒DNA(pEGFP-C1)为报告基因,考察CSOSA胶束密接DNA前后粒径与表面电位的变化、对DNA密接能力和保护DNA免受核酶降解的能力。以LipofectamineTM2000为对照,CSOSA/pDNA复合物基因转染研究表明,嫁接物介导的细胞转染效率受血清、精氨酸等因素的影响。细胞毒性研究表明,CSOSA嫁接物的细胞毒性明显小于脂质体。采用高碘酸法,合成的小分子量PEI修饰共聚物(Polyethylenimine conjugated stearic acid-g-chitosan oligosaccharide, CSOSA-g-PEI),其离子缓冲能力显著提高,与质粒DNA复合形成的纳米粒粒经为100-200 nm。凝胶电泳阻滞分析显示,共聚物具有密接、压缩质粒DNA的能力,同时共聚物可以保护DNA不被核酶降解。共聚物在MCF-7和HeLa细胞系的IC50分别为400μg/ml和450μg/ml,细胞毒性均明显小于LipofectamineTM 2000。体外细胞转染实验发现,共聚物载GFP质粒于转染后48h有大量绿色荧光蛋白表达(转染率达到30.6%),且72h有所增加。随着共聚物/DNA的复合比例的增加,细胞转染水平呈现先升后降现象,且在质量比80左右达到最大值。在血清和精氨酸存在条件下,CSOSA-g-PEI/pDNA复合物的细胞转染水平有显著的提高,与LipofectamineTM 2000阳性对照相当。体内抗肿瘤动物实验结果表明,共聚物介导的治疗基因给药系统可有效地抑制肿瘤地生长(抑瘤率为62.34%)。治疗期间,观察动物体重,发现共聚物/PEDF质粒给药组的体重和阴性对照组没有显著性差别。而化疗药组的抑瘤率为79.73%,但显示了较强的毒性。

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致谢  4-5中文摘要  5-7Abstract  7-12引言  12-141 壳寡糖硬脂酸嫁接物的制备及理化性质评价  14-24  1.1 试剂与仪器  14    1.1.1 试剂  14    1.1.2 仪器  14  1.2 实验方法  14-16    1.2.1 壳寡糖的制备及分子量的测定  14-15    1.2.2 壳寡糖硬脂酸嫁接物的制备  15    1.2.3 嫁接物的结构鉴定  15    1.2.4 嫁接物氨基取代度的测定  15-16    1.2.5 嫁接物临界胶束浓度的测定  16    1.2.6 嫁接物胶束粒径与表面电位的测定  16    1.2.7 细胞摄取实验  16  1.3 结果与讨论  16-22    1.3.1 壳寡糖硬脂酸嫁接物的合成及结构鉴定  16-17    1.3.2 嫁接物的氨基取代度  17-18    1.3.3 嫁接物的临界胶束浓度  18-19    1.3.4 嫁接物胶束的粒径与表面电位  19-20    1.3.5 嫁接物细胞摄取能力  20-22  1.4 小结  22-242 壳寡糖硬脂酸嫁接物胶束/pDNA基因给药系统研究  24-36  2.1 试剂与仪器  24-25    2.1.1 试剂  24    2.1.2 仪器  24-25  2.2 实验方法  25-26    2.2.1 嫁接物胶束/pDNA纳米粒的制备  25    2.2.2 嫁接物胶束/pDNA纳米粒粒径与表面电位的测定  25    2.2.3 嫁接物胶束/pDNA纳米粒的原子力显微观察  25    2.2.4 嫁接物胶束/pDNA纳米粒凝胶阻滞分析  25    2.2.5 嫁接物胶束/pDNA纳米粒核酶稳定性考察  25-26    2.2.6 胞培养与细胞毒性实验  26    2.2.7 嫁接物胶束/pDNA纳米粒体外细胞转染  26    2.2.8 嫁接物胶束/pDNA纳米粒体外细胞转染率的测定  26  2.3 结果与讨论  26-33    2.3.1 嫁接物胶束/pDNA纳米粒的粒径与表面电位  26-27    2.3.2 嫁接物胶束/pDNA纳米粒的形态  27-29    2.3.3 嫁接物胶束密接质粒DNA能力  29    2.3.4 嫁接物胶束/pDNA纳米粒对核酶的稳定性  29-30    2.3.5 嫁接物胶束/pDNA纳米粒对不同细胞系的细胞毒性  30-31    2.3.6 嫁接物胶束/pDNA纳米粒的体外转染  31-32    2.3.7 精氨酸对基因载体体外转染的影响  32-33  2.4 小结  33-363 PEI修饰糖脂共聚物胶束/pDNA纳米粒制备及其理化性质研究  36-50  3.1 试剂与仪器  36    3.1.1 试剂  36    3.1.2 仪器  36  3.2 实验方法  36-39    3.2.1 PEI修饰共聚物的合成  37    3.2.2 PEI修饰共聚物结构鉴定  37    3.2.3 细胞摄取实验  37    3.2.4 PEI修饰共聚物胶束/pDNA纳米粒制备  37    3.2.5 PEI修饰共聚物胶束/pDNA纳米粒粒径与表面电位的测定  37    3.2.6 PEI修饰共聚物离子缓冲能力的考察  37-38    3.2.7 PEI修饰共聚物胶束/DNA纳米粒凝胶阻滞分析  38    3.2.8 PEI修饰共聚物胶束/pDNA纳米粒核酶稳定性考察  38    3.2.9 细胞培养与细胞毒性实验  38-39  3.3 结果与讨论  39-47    3.3.1 PEI修饰嫁接物的合成及结构  39-41    3.3.2 共聚物细胞摄取能力  41-43    3.3.3 PEI修饰共聚物胶束/pDNA纳米粒的粒径与表面电位  43-44    3.3.4 PEI修饰共聚物离子缓冲能力  44    3.3.5 PEI修饰嫁接物胶束密接DNA能力  44-45    3.3.6 PEI修饰共聚物胶束/pDNA纳米粒的稳定性  45-46    3.3.7 细胞毒性  46-47  3.4 小结  47-504 PEI修饰糖脂共聚物胶束介导基因转染及体内抗肿瘤治疗研究  50-60  4.1 试剂与仪器  50    4.1.1 试剂  50    4.1.2 仪器  50  4.2 实验方法  50-52    4.2.1 细胞培养  50-51    4.2.3 共聚物胶束/DNA纳米粒体外细胞转染  51    4.2.4 细胞转染率的测定  51    4.2.5 共聚物胶束/pDNA纳米粒体外细胞转染水平的测定  51-52    4.2.6 共聚物胶束/DNA基因给药系统体内治疗评价  52  4.3 结果与讨论  52-58    4.3.1 荧光倒置显微镜观察细胞转染及体外转染效率测定  52-54    4.3.2 PEI修饰共聚物胶束/pDNA纳米粒的体外转染  54-55    4.3.3 血清对基因载体体外转染的影响  55-56    4.3.4 精氨酸对基因载体体外转染的影响  56-57    4.3.5 共聚物胶束/pDNA基因给药系统体内治疗评价  57-58  4.4 小结  58-60结论  60-62参考文献  62-66综述  66-82  参考文献  78-82

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中图分类: > 医药、卫生 > 临床医学 > 治疗学
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